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Dieses Protokoll beschreibt die detaillierten Schritte zur Vorbereitung von Netzhautproben für die Volumenelektronenmikroskopie, wobei der Schwerpunkt auf den strukturellen Merkmalen retinaler Photorezeptorterminalien liegt.
Die Volumenelektronenmikroskopie (Volume EM) hat sich zu einem leistungsfähigen Werkzeug entwickelt, um die 3D-Struktur von Zellen und Geweben mit Präzision im Nanometerbereich zu visualisieren. Innerhalb der Netzhaut bauen verschiedene Arten von Neuronen synaptische Verbindungen in den inneren und äußeren plexiformen Schichten auf. Während herkömmliche EM-Techniken wertvolle Einblicke in subzelluläre Organellen der Netzhaut geliefert haben, liegt ihre Einschränkung in der Bereitstellung von 2D-Bilddaten, die genaue Messungen behindern können. Zum Beispiel ist die Quantifizierung der Größe von drei verschiedenen synaptischen Vesikelpools, die für die synaptische Übertragung entscheidend sind, in 2D eine Herausforderung. Volume EM bietet eine Lösung, indem es großflächige, hochauflösende 3D-Daten bereitstellt. Es ist erwähnenswert, dass die Probenvorbereitung ein kritischer Schritt bei der Volumen-EM ist, der sich erheblich auf die Bildschärfe und den Kontrast auswirkt. In diesem Zusammenhang skizzieren wir ein Probenvorbereitungsprotokoll für die 3D-Rekonstruktion von Photorezeptor-Axonendigungen in der Netzhaut. Dieses Protokoll umfasst drei wichtige Schritte: Netzhautdissektion und -fixierung, Probeneinbettungsprozesse und Auswahl des interessierenden Bereichs.
Die Netzhaut ist dicht gepackt mit ineinander verschlungenen neuronalen Axonen und Dendriten, die Synapsen zwischen ihnen bilden1. Die Mikroskopie ist ein unverzichtbares Werkzeug für die Untersuchung der Netzhautanatomie, da sie feine, komplizierte und kleine Strukturen aufweist. Obwohl die Elektronenmikroskopie (EM) eine beispiellose Leistung bietet, um die Ultrastruktur subzellulärer Organellen und die genaue Lokalisierung spezifischer Proteine auf Nanometerebene2 zu untersuchen, erzeugt sie Bilder, die auf die zweidimensionale (2D) Ebene beschränkt sind, was zu einem potenziellen Ver....
Die Pflege- und Verwendungsprotokolle der Tiere wurden von der Ethikkommission der Medizinischen Universität Wenzhou genehmigt und folgten den Richtlinien der Association for Research in Vision and Ophthalmology (ARVO). Alle Mäuse wurden in einem 12-stündigen Licht- und 12-stündigen Dunkelzyklus gehalten und mit einer Standard-Chow-Diät versorgt.
1. Netzhautdissektion und -fixation
Abbildung 1A zeigt das Bild von retinalen Photorezeptorenden, die mit der traditionellen chemischen Doppelfixationsmethode präpariert wurden, und Abbildung 1B zeigt das Bild von retinalen Photorezeptorterminals, die mit der OTO-Methode präpariert wurden. Beide wurden mit dem FIB-SEM beprobt. Es ist deutlich zu erkennen, dass die Zellmembranstruktur mit der OTO-Methode so weit wie möglich erhalten bleiben kann, und sogar der U.......
Wir implementierten das OTO-Protokoll zur Probenvorbereitung Volume EM, um die terminale Struktur der Photorezeptoren im Netzhautgewebe zu analysieren. Der Schwerpunkt lag auf der Detaillierung des gesamten Verfahrens, beginnend mit der Ablösung und Fixierung der Netzhaut bis hin zur Präsentation der Ergebnisse der 3D-Rekonstruktion der Photorezeptor-Axonendigungen.
Die Besonderheit des Netzhautgewebes liegt im Gegensatz zum Hirngewebe darin, dass es keine r.......
Die Autoren machen keine Angaben.
Diese Arbeit wurde teilweise durch Zuschüsse des National Key Research and Development Program of China (2022YFA1105503), des State Key Laboratory of Neuroscience (SKLN-202103) und der Zhejiang Natural Science Foundation of China (Y21H120019) unterstützt.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
2,2,2-Tribromoethanol | Sigma-Aldrich | T48402 | |
Acetone | Electron Microscopy Science | 10000 | |
Amira 6.8 | Thermo Fisher Scientific | ||
CaCl2 | Sigma | C-2661 | |
Embedding mold | Beijing Zhongjingkeyi Technology | GP10590 | |
Epon resin | Electron Microscopy Science | 14900 | |
Ethanol | Sigma | 64-17-5 | |
Glutaraldehyde | Electron Microscopy Science | 16020 | |
Helios NanoLab 600i dual-beam SEM | FEI | ||
L-aspartic acid | Sigma | 56-84-8 | |
Lead nitrate | Sigma | 10099-74-8 | |
Na2HPO4.12H2O | Sigma | 71650 | A component of phosphate buffer |
NaH2PO4.H2O | Sigma | 71507 | A component of phosphate buffer |
OsO4 | TED PELLA | 4008-160501 | |
Paraformaldehyde | Electron Microscopy Science | 157-8 | |
Potassium ferrocyanide | Sigma | 14459-95-1 | |
Sodium cacodylate | Sigma | 6131-99-3 | |
Sputter coater | Leica | ACE200 | |
Thiocarbohydrazide | Sigma | 2231-57-4 | |
Uranyl acetate | TED PELLA | CA96049 |
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