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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Repräsentative Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

Dieses Protokoll beschreibt die detaillierten Schritte zur Vorbereitung von Netzhautproben für die Volumenelektronenmikroskopie, wobei der Schwerpunkt auf den strukturellen Merkmalen retinaler Photorezeptorterminalien liegt.

Zusammenfassung

Die Volumenelektronenmikroskopie (Volume EM) hat sich zu einem leistungsfähigen Werkzeug entwickelt, um die 3D-Struktur von Zellen und Geweben mit Präzision im Nanometerbereich zu visualisieren. Innerhalb der Netzhaut bauen verschiedene Arten von Neuronen synaptische Verbindungen in den inneren und äußeren plexiformen Schichten auf. Während herkömmliche EM-Techniken wertvolle Einblicke in subzelluläre Organellen der Netzhaut geliefert haben, liegt ihre Einschränkung in der Bereitstellung von 2D-Bilddaten, die genaue Messungen behindern können. Zum Beispiel ist die Quantifizierung der Größe von drei verschiedenen synaptischen Vesikelpools, die für die synaptische Übertragung entscheidend sind, in 2D eine Herausforderung. Volume EM bietet eine Lösung, indem es großflächige, hochauflösende 3D-Daten bereitstellt. Es ist erwähnenswert, dass die Probenvorbereitung ein kritischer Schritt bei der Volumen-EM ist, der sich erheblich auf die Bildschärfe und den Kontrast auswirkt. In diesem Zusammenhang skizzieren wir ein Probenvorbereitungsprotokoll für die 3D-Rekonstruktion von Photorezeptor-Axonendigungen in der Netzhaut. Dieses Protokoll umfasst drei wichtige Schritte: Netzhautdissektion und -fixierung, Probeneinbettungsprozesse und Auswahl des interessierenden Bereichs.

Einleitung

Die Netzhaut ist dicht gepackt mit ineinander verschlungenen neuronalen Axonen und Dendriten, die Synapsen zwischen ihnen bilden1. Die Mikroskopie ist ein unverzichtbares Werkzeug für die Untersuchung der Netzhautanatomie, da sie feine, komplizierte und kleine Strukturen aufweist. Obwohl die Elektronenmikroskopie (EM) eine beispiellose Leistung bietet, um die Ultrastruktur subzellulärer Organellen und die genaue Lokalisierung spezifischer Proteine auf Nanometerebene2 zu untersuchen, erzeugt sie Bilder, die auf die zweidimensionale (2D) Ebene beschränkt sind, was zu einem potenziellen Ver....

Protokoll

Die Pflege- und Verwendungsprotokolle der Tiere wurden von der Ethikkommission der Medizinischen Universität Wenzhou genehmigt und folgten den Richtlinien der Association for Research in Vision and Ophthalmology (ARVO). Alle Mäuse wurden in einem 12-stündigen Licht- und 12-stündigen Dunkelzyklus gehalten und mit einer Standard-Chow-Diät versorgt.

1. Netzhautdissektion und -fixation

  1. Die Mäuse (C57BL/6J, männlich, 8 Wochen alt, 20-25 g) werden durch intraperitoneale Injektion von 2,2,2-Tribromethanol (0,25 mg/g Körpergewicht) anästhesiert. Bestätigen Sie die Narkosetiefe durch kein ....

Repräsentative Ergebnisse

Abbildung 1A zeigt das Bild von retinalen Photorezeptorenden, die mit der traditionellen chemischen Doppelfixationsmethode präpariert wurden, und Abbildung 1B zeigt das Bild von retinalen Photorezeptorterminals, die mit der OTO-Methode präpariert wurden. Beide wurden mit dem FIB-SEM beprobt. Es ist deutlich zu erkennen, dass die Zellmembranstruktur mit der OTO-Methode so weit wie möglich erhalten bleiben kann, und sogar der U.......

Diskussion

Wir implementierten das OTO-Protokoll zur Probenvorbereitung Volume EM, um die terminale Struktur der Photorezeptoren im Netzhautgewebe zu analysieren. Der Schwerpunkt lag auf der Detaillierung des gesamten Verfahrens, beginnend mit der Ablösung und Fixierung der Netzhaut bis hin zur Präsentation der Ergebnisse der 3D-Rekonstruktion der Photorezeptor-Axonendigungen.

Die Besonderheit des Netzhautgewebes liegt im Gegensatz zum Hirngewebe darin, dass es keine r.......

Offenlegungen

Die Autoren machen keine Angaben.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde teilweise durch Zuschüsse des National Key Research and Development Program of China (2022YFA1105503), des State Key Laboratory of Neuroscience (SKLN-202103) und der Zhejiang Natural Science Foundation of China (Y21H120019) unterstützt.

....

Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
2,2,2-TribromoethanolSigma-AldrichT48402
AcetoneElectron Microscopy Science10000
Amira 6.8Thermo Fisher Scientific
CaCl2SigmaC-2661
Embedding moldBeijing Zhongjingkeyi TechnologyGP10590
Epon resinElectron Microscopy Science14900
EthanolSigma64-17-5
GlutaraldehydeElectron Microscopy Science16020
Helios NanoLab 600i dual-beam SEMFEI
L-aspartic acidSigma56-84-8
Lead nitrateSigma10099-74-8
Na2HPO4.12H2OSigma71650A component of phosphate buffer
NaH2PO4.H2OSigma71507A component of phosphate buffer
OsO4TED PELLA4008-160501
ParaformaldehydeElectron Microscopy Science157-8
Potassium ferrocyanideSigma14459-95-1
Sodium cacodylateSigma6131-99-3
Sputter coaterLeicaACE200
ThiocarbohydrazideSigma2231-57-4
Uranyl acetateTED PELLACA96049

Referenzen

Nachdrucke und Genehmigungen

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