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在这里,我们概述了使用 2 维凝胶电泳通过致病性、易结构重复分析复制进程的程序。
二维中性/中性凝胶电泳 (2DGE) 成为分析通过自然障碍进行 DNA 复制的基准技术。该方案描述了如何通过人类细胞中基于猿猴病毒 40 (SV40) 的附加体内易结构、可扩增的 DNA 重复序列分析复制叉进程。简而言之,在质粒转染到人细胞中后,通过改良的 Hirt 方案分离复制中间体,并用 DpnI 限制性内切酶处理以去除未复制的 DNA。然后用适当的限制性内切酶消化中间体,将目标重复序列置于 3-5 kb 长的 DNA 片段的起点远端半部分内。复制中间体分为两个垂直维度,首先按大小,然后按形状。在 Southern 印迹杂交之后,这种方法允许研究人员在复制 Y 弧的下半部分观察到各种结构形成重复的叉停滞。此外,stall 站点的这种定位允许可视化重复介导的 fork stalling 的各种结果,例如分叉反转、收敛分叉的出现和重组分叉重启。
短串联重复序列 (STR) 是小的、通常为 2-9 个碱基对 (bp) 的重复 DNA 序列,约占人类基因组的 3%1。STR 在基因调控中起重要作用2;然而,它们的重复组成使它们容易形成非经典 DNA 二级结构并随后出现遗传不稳定性 3,4。从左旋螺旋到发夹/十字形,再到三链和四链螺旋,这些替代 DNA 结构对复制体造成了内在挑战。二级结构形成的自然先决条件是 DNA 解旋,这是 DNA 复制的先决条件。这给基因组功能带来了一个独特的难题,因为许多这些结构会在复制过程中形成,阻碍复制体的进展,并最终导致复制叉停滞 5,6,7,或者在严重的情况下,导致叉崩溃和 DNA 断裂 8,9。停滞分叉的重新启动和 DNA 修复途径已被证明都会导致重复不稳定性,例如重复扩增10,11
注意:为我们在哺乳动物细胞中概述的 2DGE 分析而设计的质粒应包含易结构重复序列上游几 kb 的 SV40 复制起点(图 2)。在选择相对于起始点的方向时,应牢记先导合成和滞后合成,重复序列应克隆到质粒中。
图 2:用于 2DGE 分析的含重复序列质粒的消化。 结构易重复序列描绘在右移动复制叉下游几 kb 处。使用独特的切割器 1 和 2 进行消化会将重复序列放在 Y 弧的下降臂上,因为序列超出了消化片段的中点。缩写:2DGE = 二维中性/中性凝胶电泳。 请单击此处查看此图的较大版本。
如果成功,在可视化时,可以观察到复制叉的尖弧从巨大的 1n 点向上和向外延伸(图 5A)。片段的大小或复制的百分比决定了片段在第一维中的移动性。随着中间体发展出更紧密的结构,它们将开始在第二维度中更缓慢地移动。因此,如果中间体在两个维度上都缓慢移动,则可以断言它是一个高度复制的分子,与传统复制叉具有显着的连接变化。?.......
2DGE 提供了特定序列复制过程中出现的中间体相对群体的半定量和综合图像。鉴于在整个过程中必须保持复制叉的脆弱分子结构,因此应非常小心地防止物理剪切和化学变性。因此,强烈建议在质粒分离过程中避免任何碱性处理。为避免这种情况,我们和其他人实施了 Hirt 于 1967 年建立的 Hirt DNA 分离的改良形式33。在这里,通过在 4 °C 下用 1 M NaCl 处理?.......
作者没有需要披露的利益冲突。
我们感谢 Jorge Cebrian 和 Anastasia Rastokina 在我们的实验室开始开发这种方法,感谢 Massimo Lopes 为我们提供 pML113 质粒和宝贵的建议,感谢 Ylli Doksani 的深入讨论,以及 Mirkin 实验室成员的支持。Mirkin 实验室的工作得到了美国国家普通医学科学研究所 [R35GM130322] 和 NSF-BSF [2153071] 的支持。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
10x TBE Buffer | Bio Rad | 1610733 | |
20x SSC Buffer | Fisher Scientific | BP1325-1 | |
293T cells | ATCC | CRL-3216 | |
a-32P dATP, 3000 Ci/mmol | Revvity | BLU512H250UC | |
Agarose | Fisher Scientific | BP160-500 | |
Amersham Hybond-N+ | Fisher Scientific | RPN303B | |
BAS Storage Phosphor Screens | Fisher Scientific | 28956482 | |
Church and Gibert's hybriddization buffer | Fisher Scientific | 50-103-5408 | |
DecaLabel DNA labeling kit | ThermoFisher Scientific | K0622 | |
DMEM, high gluctose, GltaMAX Supplement, pyruvate | ThermoFisher Scientific | 10569010 | |
DpnI | New England Biolabs | R0176S | Additional restriction enzymes will need to be purchased as well |
EDTA 0.5 M, pH 8 | Fisher Scientific | BP2482500 | |
Ethanol, 70% | Fisher Scientific | BP82031GAL | |
Fetal Bovine Serum | VWR | 97068-085 | |
Hydrochloric acid solution, 12 M | Millipore Sigma | 13-1683 | |
Isopropanol | Fisher Scientific | BP26184 | |
jetPRIME DNA and siRNA Transfection Reagent with Buffer | VWR | 101000027 | |
MycoZap Plus-CL | VWR | 75870-448 | |
NaCl | Millipore Sigma | 746398-500G | |
Nalgene Oak Ridge High-Speed Centrifuge Tubes | ThermoFisher Scientific | 3139-0050 | |
Phosphate Buffer Saline, pH 7.4 | ThermoFisher Scientific | 10010023 | |
Phosphate Buffer Saline, pH 7.5 | ThermoFisher Scientific | 10010024 | |
Proteinase K | ThermoFisher Scientific | EO0491 | |
Proteinase K | ThermoFisher Scientific | EO0492 | |
Pure Cellulose Chromatography Paper | Fisher Scientific | 05-714-4 | |
Pure Cellulose Chromatography Paper | Fisher Scientific | 05-714-5 | |
Ruler | Fisher Scientific | 09-016 | |
Scalpel | Fisher Scientific | 12-460-451 | |
Sodium dodecyl sulfate | Millipore Sigma | 436143-25G | |
Sodium hydroxide | Fisher Scientific | S25548 | |
Sorval LYNX 4000 Superspeed Centrifuge | ThermoFisher Scientific | 75006580 | |
Sub-cell Horizontal Electrophoresis System | Bio Rad | 1704401 | |
TH13-6 x 50 Swinging Bucket Rotor | ThermoFisher Scientific | 75003010 | |
Tris-HCl 1 M, pH 7.5 | Fisher Scientific | BP1757-500 | |
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red | ThermoFisher Scientific | 25200056 |
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