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Ici, nous décrivons la procédure d’analyse de la progression de la réplication à travers des répétitions pathogènes et sujettes à la structure à l’aide de l’électrophorèse sur gel bidimensionnelle.
L’électrophorèse bidimensionnelle sur gel neutre/neutre (2DGE) est apparue comme une technique de référence pour analyser la réplication de l’ADN à travers des obstacles naturels. Ce protocole décrit comment analyser la progression de la fourche de réplication à travers des répétitions d’ADN expansibles et susceptibles de structuration dans l’épisome basé sur le virus simien 40 (SV40) dans les cellules humaines. En bref, lors de la transfection du plasmide dans des cellules humaines, les intermédiaires de réplication sont isolés par le protocole Hirt modifié et traités avec l’enzyme de restriction DpnI pour éliminer l’ADN non répliqué. Les intermédiaires sont ensuite digérés par des enzymes de restriction appropriées pour placer la répétition d’intérêt dans la moitié distale d’origine d’un fragment d’ADN de 3 à 5 kb de long. Les intermédiaires de réplication sont séparés en deux dimensions perpendiculaires, d’abord par la taille, puis par la forme. Après l’hybridation par transfert de Southern, cette approche permet aux chercheurs d’observer le décrochage de la fourche à diverses répétitions structurelles sur la moitié descendante de l’arc Y de réplication. De plus, ce positionnement du site de décrochage permet de visualiser divers résultats du décrochage à médiation répétée, tels que l’inversion de la fourche, l’avènement d’une fourche convergente et le redémarrage de la fourche recombinatoire.
Les courtes répétitions en tandem (STR) sont de petites paires de 2 à 9 paires de bases (pb), des séquences répétitives d’ADN qui constituent environ 3 % du génome humain1. Les STR jouent un rôle important dans la régulation des gènes2 ; cependant, leur composition répétitive les rend sujets à la formation d’une structure secondaire de l’ADN non canonique et à l’instabilité génétique ultérieure 3,4. Des hélices gauches aux épingles à cheveux/cruciformes, en passant par les hélices à trois et quatre brins, ces structures d’ADN alt....
REMARQUE : Le plasmide conçu pour notre analyse 2DGE décrite dans les cellules de mammifères doit contenir une origine SV40 de réplication plusieurs kb en amont des répétitions sujettes à la structure (Figure 2). Les synthèses en amont et en aval doivent être gardées à l’esprit lors du choix de l’orientation par rapport à l’origine des répétitions à cloner dans le plasmide.
Figure 2 <....
En cas de succès, lors de la visualisation, on peut observer un arc aigu de fourches de réplication s’étendant vers le haut et vers l’extérieur à partir de l’énorme point 1n (Figure 5A). La taille d’un fragment, ou le pourcentage de réplication, détermine la mobilité du fragment dans la première dimension. Au fur et à mesure que les intermédiaires développent une structure plus articulée, ils commenceront à se déplacer plus lentement .......
2DGE fournit une image semi-quantitative et complète des populations relatives d’intermédiaires qui apparaissent lors de la réplication d’une séquence particulière. Étant donné que les structures moléculaires fragiles des fourches de réplication doivent être maintenues tout au long de cette procédure, une grande prudence doit être mise en œuvre pour éviter le cisaillement physique et la dénaturation chimique. Par conséquent, il est fortement recommandé d’éviter to.......
Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.
Nous remercions Jorge Cebrian et Anastasia Rastokina qui ont commencé à développer cette approche dans notre laboratoire, Massimo Lopes pour nous avoir fourni le plasmide pML113 et des conseils inestimables, Ylli Doksani pour les discussions perspicaces, et les membres du laboratoire Mirkin pour leur soutien. Les travaux du laboratoire Mirkin sont soutenus par le National Institute of General Medical Sciences [R35GM130322] et la NSF-BSF [2153071].
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
10x TBE Buffer | Bio Rad | 1610733 | |
20x SSC Buffer | Fisher Scientific | BP1325-1 | |
293T cells | ATCC | CRL-3216 | |
a-32P dATP, 3000 Ci/mmol | Revvity | BLU512H250UC | |
Agarose | Fisher Scientific | BP160-500 | |
Amersham Hybond-N+ | Fisher Scientific | RPN303B | |
BAS Storage Phosphor Screens | Fisher Scientific | 28956482 | |
Church and Gibert's hybriddization buffer | Fisher Scientific | 50-103-5408 | |
DecaLabel DNA labeling kit | ThermoFisher Scientific | K0622 | |
DMEM, high gluctose, GltaMAX Supplement, pyruvate | ThermoFisher Scientific | 10569010 | |
DpnI | New England Biolabs | R0176S | Additional restriction enzymes will need to be purchased as well |
EDTA 0.5 M, pH 8 | Fisher Scientific | BP2482500 | |
Ethanol, 70% | Fisher Scientific | BP82031GAL | |
Fetal Bovine Serum | VWR | 97068-085 | |
Hydrochloric acid solution, 12 M | Millipore Sigma | 13-1683 | |
Isopropanol | Fisher Scientific | BP26184 | |
jetPRIME DNA and siRNA Transfection Reagent with Buffer | VWR | 101000027 | |
MycoZap Plus-CL | VWR | 75870-448 | |
NaCl | Millipore Sigma | 746398-500G | |
Nalgene Oak Ridge High-Speed Centrifuge Tubes | ThermoFisher Scientific | 3139-0050 | |
Phosphate Buffer Saline, pH 7.4 | ThermoFisher Scientific | 10010023 | |
Phosphate Buffer Saline, pH 7.5 | ThermoFisher Scientific | 10010024 | |
Proteinase K | ThermoFisher Scientific | EO0491 | |
Proteinase K | ThermoFisher Scientific | EO0492 | |
Pure Cellulose Chromatography Paper | Fisher Scientific | 05-714-4 | |
Pure Cellulose Chromatography Paper | Fisher Scientific | 05-714-5 | |
Ruler | Fisher Scientific | 09-016 | |
Scalpel | Fisher Scientific | 12-460-451 | |
Sodium dodecyl sulfate | Millipore Sigma | 436143-25G | |
Sodium hydroxide | Fisher Scientific | S25548 | |
Sorval LYNX 4000 Superspeed Centrifuge | ThermoFisher Scientific | 75006580 | |
Sub-cell Horizontal Electrophoresis System | Bio Rad | 1704401 | |
TH13-6 x 50 Swinging Bucket Rotor | ThermoFisher Scientific | 75003010 | |
Tris-HCl 1 M, pH 7.5 | Fisher Scientific | BP1757-500 | |
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red | ThermoFisher Scientific | 25200056 |
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