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Aqui, descrevemos o procedimento para analisar a progressão da replicação por meio de repetições patogênicas e propensas à estrutura usando eletroforese em gel bidimensional.
A eletroforese em gel bidimensional neutra/neutra (2DGE) surgiu como uma técnica de referência para analisar a replicação do DNA por meio de impedimentos naturais. Este protocolo descreve como analisar a progressão do garfo de replicação por meio de repetições de DNA expansíveis e propensas à estrutura dentro do epissoma baseado no vírus símio 40 (SV40) em células humanas. Em resumo, após a transfecção do plasmídeo em células humanas, os intermediários de replicação são isolados pelo protocolo Hirt modificado e tratados com a enzima de restrição DpnI para remover o DNA não replicado. Os intermediários são então digeridos por enzimas de restrição apropriadas para colocar a repetição de interesse dentro da metade distal de origem de um fragmento de DNA de 3-5 kb de comprimento. Os intermediários de replicação são separados em duas dimensões perpendiculares, primeiro por tamanho e depois por forma. Após a hibridização Southern blot, essa abordagem permite que os pesquisadores observem o travamento do garfo em várias repetições de formação de estrutura na metade descendente do arco Y de replicação. Além disso, esse posicionamento do local de parada permite a visualização de vários resultados da parada do garfo mediada por repetição, como reversão do garfo, o advento de um garfo convergente e a reinicialização do garfo recombinacional.
As repetições curtas em tandem (STR) são pequenas, normalmente de 2 a 9 pares de bases (pb), sequências repetitivas de DNA que constituem cerca de 3% do genoma humano1. STR desempenham um papel importante na regulação gênica2; no entanto, sua composição repetitiva os deixa propensos à formação de estruturas secundárias de DNA não canônicas e subsequente instabilidade genética 3,4. De hélices canhotas a grampos de cabelo / cruciformes, a hélices de três e quatro fitas, essas estruturas alternativas de DNA causam desafios intrínsec....
NOTA: O plasmídeo projetado para nossa análise 2DGE delineada em células de mamíferos deve conter uma origem de replicação SV40 vários kb a montante de repetições propensas à estrutura (Figura 2). A síntese principal e atrasada deve ser mantida em mente ao escolher a orientação em relação à origem em que as repetições devem ser clonadas no plasmídeo.
Figura 2: Digestão de plas....
Se for bem-sucedido, após a visualização, um arco agudo de garfos de replicação pode ser observado estendendo-se para cima e para fora do ponto maciço 1n (Figura 5A). O tamanho de um fragmento, ou porcentagem que é replicada, determina a mobilidade do fragmento na primeira dimensão. À medida que os intermediários desenvolvem uma estrutura mais articulada, eles começarão a viajar mais lentamente na segunda dimensão. Portanto, se um intermediário.......
O 2DGE fornece uma imagem semiquantitativa e abrangente das populações relativas de intermediários que surgem durante a replicação de uma sequência específica. Dado que as frágeis estruturas moleculares dos garfos de replicação devem ser mantidas durante todo este procedimento, deve-se tomar muito cuidado para evitar cisalhamento físico e desnaturação química. Portanto, é altamente recomendável que qualquer tratamento alcalino seja evitado durante o isolamento do plasmíd.......
Os autores não têm conflitos de interesse a divulgar.
Agradecemos a Jorge Cebrian e Anastasia Rastokina que começaram a desenvolver essa abordagem em nosso laboratório, Massimo Lopes por nos fornecer o plasmídeo pML113 e conselhos inestimáveis, Ylli Doksani por discussões perspicazes e membros do laboratório Mirkin por seu apoio. O trabalho no laboratório de Mirkin é apoiado pelo Instituto Nacional de Ciências Médicas Gerais [R35GM130322] e NSF-BSF [2153071].
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
10x TBE Buffer | Bio Rad | 1610733 | |
20x SSC Buffer | Fisher Scientific | BP1325-1 | |
293T cells | ATCC | CRL-3216 | |
a-32P dATP, 3000 Ci/mmol | Revvity | BLU512H250UC | |
Agarose | Fisher Scientific | BP160-500 | |
Amersham Hybond-N+ | Fisher Scientific | RPN303B | |
BAS Storage Phosphor Screens | Fisher Scientific | 28956482 | |
Church and Gibert's hybriddization buffer | Fisher Scientific | 50-103-5408 | |
DecaLabel DNA labeling kit | ThermoFisher Scientific | K0622 | |
DMEM, high gluctose, GltaMAX Supplement, pyruvate | ThermoFisher Scientific | 10569010 | |
DpnI | New England Biolabs | R0176S | Additional restriction enzymes will need to be purchased as well |
EDTA 0.5 M, pH 8 | Fisher Scientific | BP2482500 | |
Ethanol, 70% | Fisher Scientific | BP82031GAL | |
Fetal Bovine Serum | VWR | 97068-085 | |
Hydrochloric acid solution, 12 M | Millipore Sigma | 13-1683 | |
Isopropanol | Fisher Scientific | BP26184 | |
jetPRIME DNA and siRNA Transfection Reagent with Buffer | VWR | 101000027 | |
MycoZap Plus-CL | VWR | 75870-448 | |
NaCl | Millipore Sigma | 746398-500G | |
Nalgene Oak Ridge High-Speed Centrifuge Tubes | ThermoFisher Scientific | 3139-0050 | |
Phosphate Buffer Saline, pH 7.4 | ThermoFisher Scientific | 10010023 | |
Phosphate Buffer Saline, pH 7.5 | ThermoFisher Scientific | 10010024 | |
Proteinase K | ThermoFisher Scientific | EO0491 | |
Proteinase K | ThermoFisher Scientific | EO0492 | |
Pure Cellulose Chromatography Paper | Fisher Scientific | 05-714-4 | |
Pure Cellulose Chromatography Paper | Fisher Scientific | 05-714-5 | |
Ruler | Fisher Scientific | 09-016 | |
Scalpel | Fisher Scientific | 12-460-451 | |
Sodium dodecyl sulfate | Millipore Sigma | 436143-25G | |
Sodium hydroxide | Fisher Scientific | S25548 | |
Sorval LYNX 4000 Superspeed Centrifuge | ThermoFisher Scientific | 75006580 | |
Sub-cell Horizontal Electrophoresis System | Bio Rad | 1704401 | |
TH13-6 x 50 Swinging Bucket Rotor | ThermoFisher Scientific | 75003010 | |
Tris-HCl 1 M, pH 7.5 | Fisher Scientific | BP1757-500 | |
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red | ThermoFisher Scientific | 25200056 |
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