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ここでは、2次元ゲル電気泳動を使用して、病原性の構造が取りやすいリピートによる複製進行を解析する手順について概説します。
二次元中性/中性ゲル電気泳動(2DGE)は、自然障害を介したDNA複製を解析するためのベンチマーク技術として登場しました。このプロトコルでは、ヒト細胞内のサルウイルス40(SV40)ベースのエピソーム内で、構造が形成しやすく拡張可能なDNAリピートを介した複製フォークの進行を解析する方法について説明します。簡単に言うと、ヒト細胞へのプラスミドトランスフェクションでは、複製中間体を改良Hirtプロトコルで単離し、DpnI制限酵素で処理して非複製DNAを除去します。次に、中間体を適切な制限酵素によって消化し、目的のリピートを3〜5 kb長のDNAフラグメントの起源-遠位半分内に配置します。複製中間体は、最初にサイズによって、次に形状によって、2つの垂直な次元に分割されます。サザンブロットハイブリダイゼーションに続いて、このアプローチにより、研究者はレプリケーションY弧の下降する半分のさまざまな構造形成リピートでのフォークストールを観察することができます。さらに、このストールサイトの配置により、フォークの反転、収束フォークの出現、リコンビネーションフォークの再起動など、反復媒介フォークストールのさまざまな結果を視覚化できます。
ショートタンデムリピート(STR)は小さく、通常は2〜9塩基対(bp)のDNAの反復配列で、ヒトゲノムの約3%を占めています1。STRは遺伝子調節において重要な役割を果たします2;しかし、それらの反復的な組成は、非標準的なDNA二次構造の形成とそれに続く遺伝的不安定性を引き起こしやすい3,4。左巻きヘリックスからヘアピン/十字形、3本鎖および4本鎖ヘリックスまで、これらの代替DNA構造はレプリソームに固有の課題を引き起こします。二次構造形成の自然な前提条件は、DNA複製の前提条件であるDNAの巻き戻しです。これは、これらの構造の多くが複製中に形成され、レプリソームの進行を妨げ、最終的に複製フォークのストール5,6,7を引き起こし、深刻な場合にはフォークの崩壊とDNAの切断8,9を引き起こす可能性があるため、ゲノム機能にとってユニークな難問を示しています。....
注:哺乳類細胞における2DGE分析のために設計されたプラスミドは、構造が起こりやすいリピートの数kb上流にSV40の複製起点を含んでいる必要があります(図2)。リード合成と遅延合成は、リピートをプラスミドにクローニングする原点に対する向きを選択する際に留意する必要があります。
図2:2DGE分析のためのリピート含有プラスミドの消化。 構造が不安定なリピートは、右に移動するレプリケーションフォークから数kb下流に描かれています。独自のカッター 1 と 2 による分解では、分解されたフラグメントの中間点を超えるシーケンスが与えられ、リピート シーケンスが Y アークの下降アームに配置されます。略語:2DGE = 二次元中性/中性ゲル電気泳動。
成功した場合、視覚化すると、レプリケーションフォークの鋭い弧が巨大な1nスポットから上下に伸びていることが観察できます(図5A)。フラグメントのサイズ、またはレプリケートされる割合によって、最初の次元でのフラグメントの移動性が決まります。中間体がより接合された構造を発達させると、中間体は2次元でよりゆっくりと移動し?.......
2DGEは、特定の配列の複製中に生じる中間体の相対的な集団の半定量的かつ包括的なイメージを提供します。複製フォークの壊れやすい分子構造は、この手順全体を通して維持する必要があることを考えると、物理的なせん断と化学的変性を防ぐために細心の注意を払う必要があります。したがって、プラスミド単離中はアルカリ性処理を避けることを強くお勧めし?.......
著者には、開示すべき利益相反はありません。
私たちの研究室でこのアプローチの開発を始めたJorge Cebrian氏とAnastasia Rastokina氏、pML113プラスミドと貴重なアドバイスを提供してくださったMassimo Lopes氏、洞察に満ちた議論をしてくださったYlli Doksani氏、そしてサポートしてくださったMirkin研究室のメンバーに感謝します。Mirkin研究室での研究は、National Institute of General Medical Sciences[R35GM130322]およびNSF-BSF[2153071]の支援を受けています。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
10x TBE Buffer | Bio Rad | 1610733 | |
20x SSC Buffer | Fisher Scientific | BP1325-1 | |
293T cells | ATCC | CRL-3216 | |
a-32P dATP, 3000 Ci/mmol | Revvity | BLU512H250UC | |
Agarose | Fisher Scientific | BP160-500 | |
Amersham Hybond-N+ | Fisher Scientific | RPN303B | |
BAS Storage Phosphor Screens | Fisher Scientific | 28956482 | |
Church and Gibert's hybriddization buffer | Fisher Scientific | 50-103-5408 | |
DecaLabel DNA labeling kit | ThermoFisher Scientific | K0622 | |
DMEM, high gluctose, GltaMAX Supplement, pyruvate | ThermoFisher Scientific | 10569010 | |
DpnI | New England Biolabs | R0176S | Additional restriction enzymes will need to be purchased as well |
EDTA 0.5 M, pH 8 | Fisher Scientific | BP2482500 | |
Ethanol, 70% | Fisher Scientific | BP82031GAL | |
Fetal Bovine Serum | VWR | 97068-085 | |
Hydrochloric acid solution, 12 M | Millipore Sigma | 13-1683 | |
Isopropanol | Fisher Scientific | BP26184 | |
jetPRIME DNA and siRNA Transfection Reagent with Buffer | VWR | 101000027 | |
MycoZap Plus-CL | VWR | 75870-448 | |
NaCl | Millipore Sigma | 746398-500G | |
Nalgene Oak Ridge High-Speed Centrifuge Tubes | ThermoFisher Scientific | 3139-0050 | |
Phosphate Buffer Saline, pH 7.4 | ThermoFisher Scientific | 10010023 | |
Phosphate Buffer Saline, pH 7.5 | ThermoFisher Scientific | 10010024 | |
Proteinase K | ThermoFisher Scientific | EO0491 | |
Proteinase K | ThermoFisher Scientific | EO0492 | |
Pure Cellulose Chromatography Paper | Fisher Scientific | 05-714-4 | |
Pure Cellulose Chromatography Paper | Fisher Scientific | 05-714-5 | |
Ruler | Fisher Scientific | 09-016 | |
Scalpel | Fisher Scientific | 12-460-451 | |
Sodium dodecyl sulfate | Millipore Sigma | 436143-25G | |
Sodium hydroxide | Fisher Scientific | S25548 | |
Sorval LYNX 4000 Superspeed Centrifuge | ThermoFisher Scientific | 75006580 | |
Sub-cell Horizontal Electrophoresis System | Bio Rad | 1704401 | |
TH13-6 x 50 Swinging Bucket Rotor | ThermoFisher Scientific | 75003010 | |
Tris-HCl 1 M, pH 7.5 | Fisher Scientific | BP1757-500 | |
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red | ThermoFisher Scientific | 25200056 |
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