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Hier stellen wir eine Methode zur Untersuchung der Neuritenmorphogenese in postnatalen Maus-Netzhautexplantationen mittels konfokaler Zeitraffinalmikroskopie vor. Wir beschreiben einen Ansatz zur spärlichen Markierung und Erfassung von retinalen Zelltypen und deren Feinprozessen unter Verwendung rekombinanter adenoassoziierter Virusvektoren, die membrangerichtete fluoreszierende Proteine in einer Cre-abhängigen Weise exprimieren.
Die Entdeckung von Mechanismen, die dendritische Dornen strukturieren, erfordert Methoden zur Visualisierung, Abbildung und Analyse von Dendriten während der Entwicklung. Die Mausnetzhaut ist ein leistungsfähiges Modellsystem zur Untersuchung zelltypspezifischer Mechanismen der neuronalen Morphogenese und Konnektivität. Die Organisation und Zusammensetzung der retinalen Subtypen ist klar definiert, und genetische Werkzeuge stehen zur Verfügung, um während der Entwicklung auf bestimmte Typen zuzugreifen. Viele retinale Zelltypen beschränken ihre Dendriten und / oder Axone auch auf schmale Schichten, was die Zeitrafferbildgebung erleichtert. Maus-Retina-Explantationskulturen eignen sich gut für die Lebendzellbildgebung mittels konfokaler oder Multiphotonenmikroskopie, aber es fehlen Methoden, die für die Bildgebung der Dendritendynamik mit zeitlicher und struktureller Auflösung optimiert sind. Hier wird eine Methode vorgestellt, um die Entwicklung spezifischer Netzhautpopulationen, die durch das Cre-Lox-System gekennzeichnet sind, spärlich zu markieren und abzubilden. Kommerziell erhältliche Adeno-assoziierte Viren (AAVs), die hier verwendet werden, exprimierten membranzielgerichtete fluoreszierende Proteine in einer Cre-abhängigen Weise. Die intraokulare Verabreichung von AAVs bei neonatalen Mäusen führt zu einer fluoreszierenden Markierung der Zielzelltypen durch 4-5 Tage nach der Injektion (dpi). Die Membranfluoreszenzsignale sind durch konfokale Bildgebung detektierbar und lösen feine Aststrukturen und -dynamiken auf. Hochwertige Videos von 2-4 h werden von bildgebenden retinalen Flatmounts aufgenommen, die mit sauerstoffreicher künstlicher Zerebrospinalflüssigkeit (aCSF) durchblutet sind. Ebenfalls enthalten ist eine Bildnachbearbeitungspipeline zur Dekonvolution und dreidimensionalen (3D) Driftkorrektur. Dieses Protokoll kann verwendet werden, um mehrere zelluläre Verhaltensweisen in der intakten Netzhaut zu erfassen und neue Faktoren zu identifizieren, die die Morphogenese der Neuriten steuern. Viele Entwicklungsstrategien, die in der Netzhaut erlernt werden, werden für das Verständnis der Bildung neuronaler Schaltkreise an anderer Stelle im zentralen Nervensystem relevant sein.
Dendriten von Netzhautneuronen bilden komplizierte, aber spezifische Muster, die ihre Funktion innerhalb neuronaler Schaltkreise beeinflussen. In der Netzhaut von Wirbeltieren tragen verschiedene Arten von retinalen Ganglienzellen (RGCs) und Amacrinzell-Interneuronen einzigartige dendritische Morphologien, die sich in Baumgröße, Lage, Astlänge und Dichte unterscheiden1. Während der postnatalen Entwicklung verlängern RGCs und Amacrinzellen überschwängliche dendritische Prozesse in einen Neuropil, der als innere plexiforme Schicht (IPL) bezeichnet wird, wo sie bipolare Zelleingänge empfangen, die Photorezeptorsignale übertragen2....
HINWEIS: Dieses Protokoll erstreckt sich über 2 Tage mit einem Mindestzeitraum von 4-5 Tagen für die Virustransduktion zwischen den Versuchstagen (Abbildung 1A). Tierversuche werden in Übereinstimmung mit den Richtlinien des Canadian Council on Animal Care für die Verwendung von Tieren in der Forschung und Labortierpflege gemäß Protokollen durchgeführt, die vom Laboratory of Animal Services Animal Use and Care Committee am Hospital for Sick Children (Toronto, Kanada) genehmigt wurden.
1. Vorbereitungen für die neugeborenen AAV-Injektionen und bildgebenden Versuche
Mit dem obigen Protokoll wurde ein hochauflösendes 3D-Video der Entwicklung von Starburst-Zelldendriten aufgenommen, dekonvolviert und für die 3D-Drift korrigiert. Es wurden maximale Projektionen der Z-Ebene erstellt, um 2D-Videos für die Analyse zu erstellen (Ergänzendes Video 1, Abbildung 5A). Die 3D-Dekonvolution jedes Zeitpunkts erhöhte die Auflösung von feinen Filopodienprojektionen (Abbildung 5B,C). Feine Filopodienv.......
Dieses Video zeigt eine experimentelle Pipeline, die vorhandene genetische Werkzeuge nutzt, um die Dendritendynamik der sich entwickelnden Netzhautneuronen mit konfokaler Live-Bildgebung abzubilden. Gezeigt werden auch intraokulare Injektionen von Cre-abhängigen AAVs, die membrangerichtete fluoreszierende Proteine in neonatale Mäuse kodieren. Einzelzellen genetisch zielgerichteter Populationen sind bereits mit 4-5 dpi hell markiert. Retinale flache Montierungen wurden für Standard-Bildgebungskammern vorbereitet, um ko.......
Die Autoren haben nichts offenzulegen.
Wir danken Madison Gray, dass sie mir geholfen hat, als ich keine hatte. Diese Forschung wurde durch einen NSERC Discovery Grant (RGPIN-2016-06128), ein Sloan Fellowship in Neuroscience und einen Canada Research Chair Tier 2 (an J.L.L.) unterstützt. S. Ing-Esteves wurde durch das Vision Science Research Program und NSERC Postgraduate Scholarships-Doctoral unterstützt.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Addgene viral prep #45185-AAV9 | |||
Addgene viral prep #45186-AAV9 | |||
Dissection tools | |||
Cellulose filter paper | Whatman | 1001-070 | |
Dumont #5 fine forceps | FST | 11252-20 | Two Dumont #5 forceps are required for retinal micro-dissection |
Dumont forceps | VWR | 82027-426 | |
Fine Scissors | FST | 14058-09 | |
Mixed cellulose ester membrane (MCE) filter papers, hydrophilic, 0.45 µm pore size | Millipore | HABG01 300 | |
Petri Dish, 50 × 15 mm | VWR | 470313-352 | |
Polyethylene disposable transfer pipette | VWR | 470225-034 | |
Round tip paint brush, size 3/0 | Conventional art supply store | Two size 3/0 paint brushes (or smaller) are required for retinal flat-mounting | |
Surgical Scissors | FST | 14007-14 | |
Vannas Spring Scissors - 2.5 mm Cutting Edge | FST | 15000-08 | |
Live-imaging incubation system | |||
Chamber polyethylene tubing, PE-160 10' | Warner Instruments | 64-0755 | |
Dual channel heater controller, Model TC-344C | Warner Instruments | 64-2401 | |
HC FLUOTAR L 25x/0.95 W VISIR dipping objective | Leica | 15506374 | |
Heater controller cable | Warner Instruments | CC-28 | |
Large bath incubation chamber with slice support | Warner Instruments | RC-27L | |
MPII Mini-Peristaltic Pump | Harvard Apparatus | 70-2027 | |
PM-6D Magnetic Heated Platform (incubation chamber heater) | Warner Instruments | PM-6D | |
Pump Head Tubing Pieces For MPII Mini-Peristaltic Pump | Harvard Apparatus | 55-4148 | |
Sample anchor (Harps) | Warner Instruments | 64-0260 | Sample anchor must be compatible with incubation chamber |
Sloflo In-line Solution Heater | Warner Instruments | SF-28 | |
Neonatal Injections | |||
10 µL Microliter Syringe Series 700, Removable Needle | Hamilton Company | 80314 | |
30 G Hypodermic Needles (0.5 inch) | BD PrecisionGlide | 305106 | |
4 inch thinwall glass capillary, no filament (1.0 mm outer diameter/0.75 mm) | WPI World Precision Instruments | TW100-4 | |
Ethanol 99.8% (to dilute to 70% with double-distilled water [ddH2O]) | Sigma-Aldrich | V001229 | |
AAV9.hEF1a.lox.TagBFP. lox.eYFP.lox.WPRE.hGH-InvBYF | Penn Vector Core | AV-9-PV2453 | Addgene Plasmid #45185 |
AAV9.hEF1a.lox.mCherry.lox.mTFP 1.lox.WPRE.hGH-InvCheTF | Penn Vector Core | AV-9-PV2454 | Addgene Plasmid #45186 |
ChAT-IRES-Cre knock-in transgenic mouse line | The Jackson Laboratory | 6410 | |
Fast Green FCF Dye content ≥85 % | Sigma-Aldrich | F7252-25G | |
Flaming/Brown Micropipette Puller, model P-97 | Sutter Instrument Co. | P-97 | |
Green tattoo paste | Ketchum MFG Co | 329A | |
Phosphate-Buffered Saline, pH 7.4, liquid, sterile-filtered, suitable for cell culture | Sigma-Aldrich | 806552 | |
Pneumatic PicoPump | WPI World Precision Instruments | PV-820 | |
Oxygenated artifiial cerebrospinal fluid (aCSF) Reagents | |||
Calcium chloride dihydrate (CaCl2·2H2O) | Sigma-Aldrich | C7902 | |
Carbogen (5% CO2, 95% O2) | AirGas | X02OX95C2003102 | Supplier may vary depending on region |
D-(+)-Glucose | Sigma-Aldrich | G7021 | |
HEPES, Free Acid | Bio Basic | HB0264 | |
Hydrochloric acid solution, 1 N | Sigma-Aldrich | H9892 | |
Magnesium chloride hexahydrate (MgCl2·6H2O) | Sigma-Aldrich | M2670 | |
pH-Test strips (6.0-7.7) | VWR | BDH35317.604 | |
Potassium chloride (KCl) | Sigma-Aldrich | P9541 | |
Sodium chloride (NaCl) | Bio Basic | DB0483 | |
Sodium phosphate monobasic (NaH2PO4) | Sigma-Aldrich | RDD007 | |
Software | |||
ImageJ | National Institutes of Health (NIH) | Open source |
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