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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Repräsentative Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

Forscher, die neu auf dem Gebiet der Epigenetik sind, werden in CUT&Tag eine deutlich einfachere Alternative zu ChIP-Assays finden. CUT&Tag hat die epigenetischen Studien an seltenen und primären Zellpopulationen enorm begünstigt und qualitativ hochwertige Daten von sehr wenigen Zellen generiert. Dieses Protokoll beschreibt die Durchführung von H3K4me1 CUT&Tag-Assays an Mausmyoblasten, die aus den Hintergliedmaßenmuskeln der Maus isoliert wurden.

Zusammenfassung

Dieses Protokollpapier soll den neuen Forschern alle Einzelheiten zur Verwendung von Cleavage Under Targets and Tagmentation (CUT&Tag) zur Erstellung eines Profils der genomischen Positionen von Chromatinbindungsfaktoren, Histonmarkierungen und Histonvarianten liefern. CUT&Tag-Protokolle funktionieren sehr gut mit Maus-Myoblasten und frisch isolierten Muskelstammzellen (MuSCs). Sie können problemlos auf viele andere Zelltypen angewendet werden, solange die Zellen durch Concanavalin-A-Kügelchen immobilisiert werden können. Im Vergleich zu CUT&Tag sind Chromatin-Immunpräzipitations-Assays (ChIP) zeitaufwändige Experimente. ChIP-Assays erfordern eine Vorbehandlung des Chromatins, bevor das chromatische Material für die Immunpräzipitation verwendet werden kann. Bei der Vernetzung von ChIP (X-ChIP) umfasst die Vorbehandlung des Chromatins die Vernetzung und Beschallung, um das Chromatin zu fragmentieren. Im Falle von nativem ChIP (N-ChIP) werden die fragmentierten Chromatine normalerweise durch den Verdau der Mikrokokken-Nuklease (MNase) erreicht. Sowohl die Beschallung als auch der MNase-Aufschluss führen zu einer gewissen Verzerrung der ChIP-Experimente. CUT&Tag-Assays können in weniger Schritten abgeschlossen werden und benötigen im Vergleich zu ChIPs viel weniger Zellen, liefern aber unvoreingenommenere Informationen über Transkriptionsfaktoren oder Histonmarkierungen an verschiedenen genomischen Stellen. CUT&Tag kann mit nur 5.000 Zellen auskommen. Aufgrund der höheren Empfindlichkeit und des geringeren Hintergrundsignals als bei ChIPs können Forscher nach der Sequenzierung mit zuverlässigen Spitzendaten von nur wenigen Millionen Reads rechnen.

Einleitung

Der CUT&Tag-Assay wurde entwickelt, um einige offensichtliche Fehler von ChIPs1 zu kompensieren. Die beiden Hauptnachteile von ChIPs sind 1) die Verzerrung bei der Fragmentierung des Chromatins und 2) die Inkompetenz, mit niedrigen Zellzahlen zu arbeiten. X-ChIP-Assays beruhen entweder auf Ultraschall oder MNase-Verdau, um Chromatinfragmente zu erhalten, während N-ChIP hauptsächlich den MNase-Verdau verwendet, um Nukleosomen zu gewinnen. Die Beschallung zeigt eine Tendenz zu entspannten Chromatinstellen wie den Promotorregionen2, und anscheinend funktioniert der MNase-Verdau auch auf entspannten Chromatinfasern effizient....

Protokoll

Die in diesem Manuskript vorgestellten Methoden sind alle vom Institutional Animal Care and Use Committee des Guangzhou Laboratory genehmigt. Mäuse, die zur Erstellung der repräsentativen Ergebnisse dieses Manuskripts verwendet wurden, wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien des Institutional Animal Care and Use Committee des Guangzhou Laboratory untergebracht und gepflegt.

1. Myoblastenisolierung aus den Muskeln der Hintergliedmaßen der Maus (Beispiel für die Verwendung von 1 Maus)

  1. Eisessig mit ddH2O auf 0,02 M verdünnen und autoklavieren.
  2. Verdünnen Sie Kollagen (aus dem Rattenschwanz) ....

Repräsentative Ergebnisse

Bevor Sie Zellen an Concanavalin-A-Kügelchen binden, überprüfen Sie die Zellsuspension unter dem Mikroskop. Dementsprechend werden nach der Inkubation der Zellen mit Concanavalin-A-Kügelchen die Probenröhrchen auf das Magnetgestell gestellt, und der Überstand sollte erneut mit einem Mikroskop beobachtet werden. Damit soll beurteilt werden, wie effizient die Zellen von Concanavalin-A-Kügelchen eingefangen wurden. Ein Waschpuffer mit 7 x 105 Zellen/ml sollte unter dem Mikroskop wie in.......

Diskussion

Die spezifische Zellzahl, die für eine bestimmte CUT&Tag-Reaktion erforderlich ist, hängt vollständig von der Anreicherung der Histonmarkierungen/-varianten oder Chromatin-bindenden Proteine ab, die getestet werden sollen. Normalerweise sind für sehr angereicherte Histonmarkierungen wie H3K4me1, H3K4me3 und H3K27ac usw. 25.000-50.000 Myoblasten für eine CUT&Tag-Reaktion völlig ausreichend. Einige seltene Chromatin-bindende Proteine könnten jedoch bis zu 250.000 Zellen benötigen. Die in CUT&Tag-Assays verwendete Z.......

Offenlegungen

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde unterstützt durch das Strategic Priority Research Program der Chinesischen Akademie der Wissenschaften (XDA16020400 bis PH); die National Natural Science Foundation of China (32170804 bis PH).

....

Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
bFGFR&D Systems233-FB-025
CollagenCorning354236
Collagenase IIWorthingtonLS004177
Concanavalin-ASigma-AldrichC5275
Concanavalin-A beadsBangs LaboratoriesBP531
DigitoninSigma-Aldrich300410
Dispase IIThermo Fisher Scientific17105041
Fetal bovine serumHycloneSH30396.03
H3K4me1 antibody abcamab8895
Ham's F10 mediaThermo Fisher Scientific11550043
Hyperactive Universal CUT&Tag Assay Kit for Illumina VazymeTD903This kit has been tested by us to function well
Magnetic rack for 1.5 mL EP tubesQualityardQYM06
Magnetic rack for 8-PCR tube stripesAnosun MagneticCLJ16/21-021
NEBNext High-Fidelity 2x PCR Master MixNEBM0541LFor library-making PCR reaction
pA-Tn5VazymeS603-01Needs to be mounted with adaptors before use
Protease inhibitor cocktailSigma-Aldrich5056489001
Proteinase KBeyotimeST535-100mg
RPMI-1640 mediaThermo Fisher ScientificC11875500BT
Secondary antibody (Guinea Pig anti-rabbit IgG)Antibodies-onlineABIN101961
SpermidineSigma-AldrichS2626
TruePrep Index Kit V2 for Illumina VazymeTD202This kit provide Illumina N7XX and N5XX primers 
VAHTS DNA Clean Beads VazymeN411Can substitute Ampure XP beads. Can purify CUT&Tag libraries and select DNA fragments by size

Referenzen

  1. Kaya-Okur, H. S., et al. CUT&Tag for efficient epigenomic profiling of small samples and single cells. Nat Commun. 10 (1), 1930 (2019).
  2. Skene, P. J., Henikoff, S. A simple method for generating....

Nachdrucke und Genehmigungen

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