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Forscher, die neu auf dem Gebiet der Epigenetik sind, werden in CUT&Tag eine deutlich einfachere Alternative zu ChIP-Assays finden. CUT&Tag hat die epigenetischen Studien an seltenen und primären Zellpopulationen enorm begünstigt und qualitativ hochwertige Daten von sehr wenigen Zellen generiert. Dieses Protokoll beschreibt die Durchführung von H3K4me1 CUT&Tag-Assays an Mausmyoblasten, die aus den Hintergliedmaßenmuskeln der Maus isoliert wurden.
Dieses Protokollpapier soll den neuen Forschern alle Einzelheiten zur Verwendung von Cleavage Under Targets and Tagmentation (CUT&Tag) zur Erstellung eines Profils der genomischen Positionen von Chromatinbindungsfaktoren, Histonmarkierungen und Histonvarianten liefern. CUT&Tag-Protokolle funktionieren sehr gut mit Maus-Myoblasten und frisch isolierten Muskelstammzellen (MuSCs). Sie können problemlos auf viele andere Zelltypen angewendet werden, solange die Zellen durch Concanavalin-A-Kügelchen immobilisiert werden können. Im Vergleich zu CUT&Tag sind Chromatin-Immunpräzipitations-Assays (ChIP) zeitaufwändige Experimente. ChIP-Assays erfordern eine Vorbehandlung des Chromatins, bevor das chromatische Material für die Immunpräzipitation verwendet werden kann. Bei der Vernetzung von ChIP (X-ChIP) umfasst die Vorbehandlung des Chromatins die Vernetzung und Beschallung, um das Chromatin zu fragmentieren. Im Falle von nativem ChIP (N-ChIP) werden die fragmentierten Chromatine normalerweise durch den Verdau der Mikrokokken-Nuklease (MNase) erreicht. Sowohl die Beschallung als auch der MNase-Aufschluss führen zu einer gewissen Verzerrung der ChIP-Experimente. CUT&Tag-Assays können in weniger Schritten abgeschlossen werden und benötigen im Vergleich zu ChIPs viel weniger Zellen, liefern aber unvoreingenommenere Informationen über Transkriptionsfaktoren oder Histonmarkierungen an verschiedenen genomischen Stellen. CUT&Tag kann mit nur 5.000 Zellen auskommen. Aufgrund der höheren Empfindlichkeit und des geringeren Hintergrundsignals als bei ChIPs können Forscher nach der Sequenzierung mit zuverlässigen Spitzendaten von nur wenigen Millionen Reads rechnen.
Der CUT&Tag-Assay wurde entwickelt, um einige offensichtliche Fehler von ChIPs1 zu kompensieren. Die beiden Hauptnachteile von ChIPs sind 1) die Verzerrung bei der Fragmentierung des Chromatins und 2) die Inkompetenz, mit niedrigen Zellzahlen zu arbeiten. X-ChIP-Assays beruhen entweder auf Ultraschall oder MNase-Verdau, um Chromatinfragmente zu erhalten, während N-ChIP hauptsächlich den MNase-Verdau verwendet, um Nukleosomen zu gewinnen. Die Beschallung zeigt eine Tendenz zu entspannten Chromatinstellen wie den Promotorregionen2, und anscheinend funktioniert der MNase-Verdau auch auf entspannten Chromatinfasern effizient....
Die in diesem Manuskript vorgestellten Methoden sind alle vom Institutional Animal Care and Use Committee des Guangzhou Laboratory genehmigt. Mäuse, die zur Erstellung der repräsentativen Ergebnisse dieses Manuskripts verwendet wurden, wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien des Institutional Animal Care and Use Committee des Guangzhou Laboratory untergebracht und gepflegt.
1. Myoblastenisolierung aus den Muskeln der Hintergliedmaßen der Maus (Beispiel für die Verwendung von 1 Maus)
Bevor Sie Zellen an Concanavalin-A-Kügelchen binden, überprüfen Sie die Zellsuspension unter dem Mikroskop. Dementsprechend werden nach der Inkubation der Zellen mit Concanavalin-A-Kügelchen die Probenröhrchen auf das Magnetgestell gestellt, und der Überstand sollte erneut mit einem Mikroskop beobachtet werden. Damit soll beurteilt werden, wie effizient die Zellen von Concanavalin-A-Kügelchen eingefangen wurden. Ein Waschpuffer mit 7 x 105 Zellen/ml sollte unter dem Mikroskop wie in.......
Die spezifische Zellzahl, die für eine bestimmte CUT&Tag-Reaktion erforderlich ist, hängt vollständig von der Anreicherung der Histonmarkierungen/-varianten oder Chromatin-bindenden Proteine ab, die getestet werden sollen. Normalerweise sind für sehr angereicherte Histonmarkierungen wie H3K4me1, H3K4me3 und H3K27ac usw. 25.000-50.000 Myoblasten für eine CUT&Tag-Reaktion völlig ausreichend. Einige seltene Chromatin-bindende Proteine könnten jedoch bis zu 250.000 Zellen benötigen. Die in CUT&Tag-Assays verwendete Z.......
Die Autoren haben nichts offenzulegen.
Diese Arbeit wurde unterstützt durch das Strategic Priority Research Program der Chinesischen Akademie der Wissenschaften (XDA16020400 bis PH); die National Natural Science Foundation of China (32170804 bis PH).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
bFGF | R&D Systems | 233-FB-025 | |
Collagen | Corning | 354236 | |
Collagenase II | Worthington | LS004177 | |
Concanavalin-A | Sigma-Aldrich | C5275 | |
Concanavalin-A beads | Bangs Laboratories | BP531 | |
Digitonin | Sigma-Aldrich | 300410 | |
Dispase II | Thermo Fisher Scientific | 17105041 | |
Fetal bovine serum | Hyclone | SH30396.03 | |
H3K4me1 antibody | abcam | ab8895 | |
Ham's F10 media | Thermo Fisher Scientific | 11550043 | |
Hyperactive Universal CUT&Tag Assay Kit for Illumina | Vazyme | TD903 | This kit has been tested by us to function well |
Magnetic rack for 1.5 mL EP tubes | Qualityard | QYM06 | |
Magnetic rack for 8-PCR tube stripes | Anosun Magnetic | CLJ16/21-021 | |
NEBNext High-Fidelity 2x PCR Master Mix | NEB | M0541L | For library-making PCR reaction |
pA-Tn5 | Vazyme | S603-01 | Needs to be mounted with adaptors before use |
Protease inhibitor cocktail | Sigma-Aldrich | 5056489001 | |
Proteinase K | Beyotime | ST535-100mg | |
RPMI-1640 media | Thermo Fisher Scientific | C11875500BT | |
Secondary antibody (Guinea Pig anti-rabbit IgG) | Antibodies-online | ABIN101961 | |
Spermidine | Sigma-Aldrich | S2626 | |
TruePrep Index Kit V2 for Illumina | Vazyme | TD202 | This kit provide Illumina N7XX and N5XX primers |
VAHTS DNA Clean Beads | Vazyme | N411 | Can substitute Ampure XP beads. Can purify CUT&Tag libraries and select DNA fragments by size |
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