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Los investigadores nuevos en el campo de la epigenética encontrarán en CUT&Tag una alternativa significativamente más fácil que los ensayos ChIP. CUT&Tag ha beneficiado enormemente a los estudios epigenéticos en poblaciones de células raras y primarias, generando datos de alta calidad a partir de muy pocas células. Este protocolo describe la realización de ensayos H3K4me1 CUT&Tag en mioblastos de ratón aislados de músculos de las extremidades posteriores de ratón.
Este documento de protocolo tiene como objetivo proporcionar a los nuevos investigadores todos los detalles sobre el uso de Cleavage Under Targets and Tagmentation (CUT&Tag) para perfilar las ubicaciones genómicas de los factores de unión a la cromatina, las marcas de histonas y las variantes de histonas. Los protocolos CUT&Tag funcionan muy bien con mioblastos de ratón y células madre musculares (MuSC) recién aisladas. Se pueden aplicar fácilmente a muchos otros tipos de células, siempre y cuando las células puedan ser inmovilizadas por perlas de concanavalina-A. En comparación con CUT&Tag, los ensayos de inmunoprecipitación de cromatina (ChIP) son experimentos que requieren mucho tiempo. Los ensayos ChIP requieren el tratamiento previo de la cromatina antes de que el material cromático pueda utilizarse para la inmunoprecipitación. En la reticulación de la ChIP (X-ChIP), el pretratamiento de la cromatina implica la reticulación y la sonicación para fragmentar la cromatina. En el caso de la ChIP nativa (N-ChIP), las cromatinas fragmentadas se logran normalmente por digestión de nucleasa microcócica (MNasa). Tanto la sonicación como la digestión con MNasa introducen cierto sesgo en los experimentos de ChIP. Los ensayos CUT&Tag se pueden completar en menos pasos y requieren muchas menos células en comparación con los ChIP, pero proporcionan información más imparcial sobre los factores de transcripción o las marcas de histonas en varias ubicaciones genómicas. CUT&Tag puede funcionar con tan solo 5.000 celdas. Debido a su mayor sensibilidad y menor señal de fondo que los ChIPs, los investigadores pueden esperar obtener datos de picos confiables a partir de solo varios millones de lecturas después de la secuenciación.
El ensayo CUT&Tag se inventó para compensar algunos defectos evidentes de las ChIPs1. Las dos principales desventajas de los ChIP son 1) el sesgo introducido al fragmentar la cromatina y 2) la incompetencia para trabajar con un número bajo de células. Los ensayos X-ChIP se basan en la sonicación o en la digestión de MNasa para obtener fragmentos de cromatina, mientras que los N-ChIP utilizan principalmente la digestión de MNasa para obtener nucleosomas. La sonicación muestra un sesgo hacia las ubicaciones relajadas de la cromatina, como las regiones promotoras2, y aparentemente, la digestión de la MNasa también funciona ....
Los métodos presentados en este manuscrito están todos aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales del Laboratorio de Guangzhou. Los ratones utilizados para generar los resultados representativos de este manuscrito se alojaron y mantuvieron de acuerdo con las directrices del Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales del Laboratorio de Guangzhou.
1. Aislamiento de mioblastos de los músculos de las extremidades traseras del ratón (Ejemplo de uso de 1 ratón)
Antes de unir las células a las perlas de concanavalina-A, verifique la suspensión celular bajo el microscopio. En consecuencia, después de incubar las células con perlas de concanavalina-A, coloque los tubos de muestra en el estante magnético y el sobrenadante debe observarse nuevamente con un microscopio. Esto es para evaluar la eficiencia con la que las células han sido capturadas por las perlas de Concanavalin-A. El tampón de lavado que contiene 7 x 105 células/mL debe verse como la
El número de células específico requerido en una determinada reacción CUT&Tag depende completamente del enriquecimiento de las marcas/variantes de histonas o proteínas de unión a la cromatina que se van a analizar. Normalmente, para marcas de histonas muy enriquecidas como H3K4me1, H3K4me3 y H3K27ac, etcétera, 25.000-50.000 mioblastos son suficientes para una reacción CUT&Tag. Sin embargo, algunas proteínas raras de unión a la cromatina pueden requerir hasta 250.000 células. El número de células utilizado en.......
Los autores no tienen nada que revelar.
Este trabajo fue apoyado por el Programa de Investigación Prioritaria Estratégica de la Academia China de Ciencias (XDA16020400 a PH); la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (32170804 a PH).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
bFGF | R&D Systems | 233-FB-025 | |
Collagen | Corning | 354236 | |
Collagenase II | Worthington | LS004177 | |
Concanavalin-A | Sigma-Aldrich | C5275 | |
Concanavalin-A beads | Bangs Laboratories | BP531 | |
Digitonin | Sigma-Aldrich | 300410 | |
Dispase II | Thermo Fisher Scientific | 17105041 | |
Fetal bovine serum | Hyclone | SH30396.03 | |
H3K4me1 antibody | abcam | ab8895 | |
Ham's F10 media | Thermo Fisher Scientific | 11550043 | |
Hyperactive Universal CUT&Tag Assay Kit for Illumina | Vazyme | TD903 | This kit has been tested by us to function well |
Magnetic rack for 1.5 mL EP tubes | Qualityard | QYM06 | |
Magnetic rack for 8-PCR tube stripes | Anosun Magnetic | CLJ16/21-021 | |
NEBNext High-Fidelity 2x PCR Master Mix | NEB | M0541L | For library-making PCR reaction |
pA-Tn5 | Vazyme | S603-01 | Needs to be mounted with adaptors before use |
Protease inhibitor cocktail | Sigma-Aldrich | 5056489001 | |
Proteinase K | Beyotime | ST535-100mg | |
RPMI-1640 media | Thermo Fisher Scientific | C11875500BT | |
Secondary antibody (Guinea Pig anti-rabbit IgG) | Antibodies-online | ABIN101961 | |
Spermidine | Sigma-Aldrich | S2626 | |
TruePrep Index Kit V2 for Illumina | Vazyme | TD202 | This kit provide Illumina N7XX and N5XX primers |
VAHTS DNA Clean Beads | Vazyme | N411 | Can substitute Ampure XP beads. Can purify CUT&Tag libraries and select DNA fragments by size |
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