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Hier beschreiben wir experimentelle Protokolle zur Erstellung eines Tiermodells für blasteninduzierte Cochlea-Verletzungen mittels laserinduzierter Stoßwelle (LISW). Die Exposition des Schläfenbeins gegenüber LISW ermöglicht die Reproduktion der Blast-induzierten Cochlea-Pathophysiologie. Dieses Tiermodell könnte eine Plattform für die Aufklärung der Cochlea-Pathologie und die Erforschung möglicher Behandlungen für Explosionsverletzungen sein.
Das Ohr ist das Organ, das am anfälligsten für Explosionsüberdruck ist, und Cochlea-Verletzungen treten häufig nach Explosionsbelastung auf. Eine Explosionsbelastung kann zu Schallempfindungsschwerhörigkeit (SNHL) führen, einem irreversiblen Hörverlust, der sich negativ auf die Lebensqualität auswirkt. Detaillierte Blasten-induzierte Cochlea-Pathologien, wie z. B. der Verlust von Haarzellen, Spiralganglienneuronen, Cochlea-Synapsen und Störungen der Stereozilien, wurden bereits dokumentiert. Die Bestimmung der sensorineuralen Verschlechterung der Cochlea-Cochlea nach einer Explosionsverletzung ist jedoch eine Herausforderung, da Tiere, die einem Explosionsüberdruck ausgesetzt sind, in der Regel eine Trommelfellperforation (TMP) erleiden, die gleichzeitig zu Schallleitungsschwerhörigkeit führt. Um die reine sensorineurale Cochlea-Dysfunktion zu bewerten, haben wir ein experimentelles Tiermodell der blasteninduzierten Cochlea-Schädigung unter Verwendung einer laserinduzierten Stoßwelle entwickelt. Diese Methode vermeidet TMP und begleitende systemische Verletzungen und reproduziert den Funktionsabfall der SNHL-Komponente energieabhängig nach LISW-Exposition. Dieses Tiermodell könnte eine Plattform sein, um die pathologischen Mechanismen aufzuklären und mögliche Behandlungen für die blasteninduzierte Cochlea-Dysfunktion zu erforschen.
Hörverlust und Tinnitus gehören zu den häufigsten Behinderungen, die bei bis zu 62 % der Veteranen gemeldetwerden 1. Mehrere durch Explosionen induzierte auditive Komplikationen, einschließlich Schallempfindungsschwerhörigkeit (SNHL) und Trommelfellperforation (TMP), wurden bei Personen berichtet, die einem Explosionsüberdruck ausgesetzt waren2. Darüber hinaus deuten Untersuchungen an Personen, die Explosionen ausgesetzt waren, darauf hin, dass die Exposition gegenüber Explosionen häufig zu Defekten in der auditiven zeitlichen Auflösung führt, selbst wenn die Hörschwellen im normalen Ber....
Alle experimentellen Verfahren wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee des National Defense Medical College (Genehmigung #18050) genehmigt und in Übereinstimmung mit den Richtlinien der National Institutes of Health und des japanischen Ministeriums für Bildung, Kultur, Sport, Wissenschaft und Technologie durchgeführt. Es wurden alle Anstrengungen unternommen, um die Anzahl der Tiere und ihr Leid zu minimieren.
1. Tiere
LISW-Wellenform
Die Reproduzierbarkeit der LISW-Druckwellenform wurde 5x bei 2,0 J/cm2 wie folgt gemessen. Die Wellenformen waren im Allgemeinen ähnlich und stabil und zeigten einen starken Anstieg mit Zeitbreite, Spitzendruck und Impuls von 0,43±0,4 μs, 92,1 ± 6,8 MPa und 14,1 ± 1,9 Pa∙s (Median ± SD), was den SW-Eigenschaften entspricht (Abbildung 1B). LISWs zeichnen sich durch eine schnelle Anstiegszeit, einen hohen .......
Ziel dieser Studie war es, ein Mausmodell für blasteninduzierte Cochlea-Schäden mit LISW zu validieren. Unsere Ergebnisse zeigten, dass das exponierte Ohr der Maus nach der LISW-Applikation durch das Schläfenbein einen konsistenten pathologischen und physiologischen Rückgang der Cochlea aufwies, der mit einem Anstieg des LISW-Überdrucks einherging. Diese Ergebnisse deuten darauf hin, dass dieses Mausmodell geeignet ist, verschiedene Cochlea-Pathologien durch Anpassung der LISW-Ausga.......
Die Autoren erklären, dass sie keine Interessenkonflikte haben.
Diese Arbeit wurde durch zwei Zuschüsse von JSPS KAKENHI unterstützt (Fördernummern 21K09573 (K.M.) und 23K15901 (T.K.)).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
532 nm Q-switched Nd:YAG laser | Quantel | Brilliant b | |
ABR peak analysis software | Mass Eye and Ear | N/A | EPL Cochlear Function Test Suite |
Acrylic resin welding adhesive | Acrysunday Co., Ltd | N/A | |
confocal fluorescence microscopy | Leica | TCS SP8 | |
cryosectioning compound | Sakura | Tissue-Tek O.C.T | |
CtBP2 antibody | BD Transduction | #612044 | |
Dielectric multilayer mirrors | SIGMAKOKI CO.,LTD | TFMHP-50C08-532 | M1-M3 |
Digital oscilloscope | Tektronix | DPO4104B | |
Earphone | CUI | CDMG15008-03A | |
Hydrophone | RP acoustics e.K. | FOPH2000 | |
Image J software plug-in | NIH | measurement line | https://myfiles.meei.harvard.edu/xythoswfs/webui/_xy-e693768_1-t_wC4oKeBD |
Light microscope | Keyence Corporation | BZ-X700 | |
Myosin 7A antibody | Proteus Biosciences | #25–6790 | |
Neurofilament antibody | Sigma | #AB5539 | |
Plano-convex lens | SIGMAKOKI CO.,LTD | SLSQ-30-200PM | |
Prism software | GraphPad | N/A | ver.8.2.1 |
Scanning electron microscope | JEOL Ltd | JSM-6340F | |
Small digital endoscope | AVS Co. Ltd | AE-C1 | |
Ultrasonic jelly | Hitachi Aloka Medical | N/A | |
Variable attenuator | Showa Optronics Co. | N/A | Currenly avaiable successor: KYOCERA SOC Corporation, RWH-532HP II |
Water-soluble encapsulant | Dako | #S1964 |
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