Research in Bragonzi Labor wurde von der italienischen Cystic Fibrosis Foundation (CFaCore) und der EU-F7-2009-223670 finanziert. Ein Teil dieser Arbeit wurde in Alembic, einem fortgeschrittenen Mikroskopie Labor durchgeführt, Histopathologie und Maus wurde in der Abteilung für Pathologische Anatomie (San Raffaele Scientific Institute) durchgeführt.

1. Vorbereiten Bakterien für chronische Infektion (drei und zwei Tage vor der Challenge-Maus) <ol><li> Wählen Sie die entsprechende P. aeruginosa-Stamm getestet werden. </li><li> Impfen eine Öse P. aeruginosa von einer -80 ° C lager Kultur zu einer Trypticase Soy Agar (TSA) Platte und bei 37 ° C über Nacht. </li><li> Wählen Sie eine einzelne Kolonie und impfen zu 5 ml Trypticasesojabrühe (TSB) in einem 15 ml-Snap-Röhrchen und bei 37 ° C über Nacht in einem Schüttelinkubator bei 200 Umdrehungen pro Minute. </li></ol> 2. Einbetten Bakterien in Agar-Perlen für chronische Infektion (einen Tag vor der Infektion) <ol><li> Einen kleinen Aliquot der bakteriellen Übernachtkultur, verdünnt 1:50 phosphatgepufferter Salzlösung (PBS) und Messen der optischen Dichte (OD) bei 600 nm auf. </li><li> Verdünnt das Nacht-Bakterienkultur durch Zugabe von 2 OD in einer neuen Rast Röhrchen mit 20 ml frischem TSB. </li><li> Inkubieren bei 37 ° C für ca. 3 -4 h auf Phase in einem Schüttelinkubator bei 200 UpM einloggen, bis insgesamt 10-15 OD erreicht wird. </li><li> In der Zwischenzeit bereiten die TSA, TSB mit 1,5% Agar, Autoklaven und ins Gleichgewicht bei 50 ° C in einem Wasserbad. Ins Gleichgewicht 150 ml preautoclaved schweres Mineralöl in einem Erlenmeyerkolben bei 50 ° C in einem Wasserbad. </li><li> Nachdem P. aeruginosa erreicht die Log-Phase, sammeln die Bakterienzellen durch Zentrifugation bei 2.700 g für 15 min bei 4 ° C und den Überstand verwerfen. </li><li> Resuspendieren Sie das Bakterienpellet in 1 ml steriler PBS und gründlich vortexen, um das Pellet vollständig zu suspendieren. </li><li> Mischen 1 ml Bakteriensuspension mit 9 ml flüssiger TSA bei 50 º C voräquilibriert </li><li> Fügen Sie die 10 ml TSA-P. aeruginosa Mischung auf schweres Mineralöl (bei ​​50 ° C vorgewärmt) und sofort rühren für 6 min bei Raumtemperatur. Die Bewegung muss einen sichtbaren Wirbel in der Öl zu produzieren. </li><li> Die Mischung wurde auf 4 ° C, Rühren bei minimalen spEED für 35 min (Abbildung 1). </li><li> Legen Sie das Agar-Perlen-Öl-Gemisch in Eis für weitere 20 min. </li><li> Übertragen Sie die Agar-Perlen in 50 ml Falcon-Röhrchen und-Zentrifuge bei 2700 g für 15 min bei 4 ° C </li><li> Genau zu entfernen Mineralöl und Waschen mit sterilem PBS sechsmal, wie in Schritt 2.11 beschrieben. Nach drei Waschschritten, können die Kügelchen durch Schwerkraft statt der Verwendung der Zentrifuge pelletiert werden. Nach dem letzten Wasch, resuspendieren Agar-Perlen in 20-30 ml PBS. </li><li> Einen aliquoten der Perlen (ca. 0,5 ml) und aseptisch homogenisieren. </li><li> Nehmen Sie 100 ul der homogenisierten Perlen und in 900 ul sterilem PBS verdünnen. Serienmäßig 1:10 verdünnen auf 10 -6. </li><li> Plattenverdünnungs auf TSA-Platten, einschließlich unverdünnten Probe auf 10 -6 und Inkubation Platten bei 37 ° C </li><li> Messen Sie den Kugeldurchmesser mit einem inversen Lichtmikroskop in mehreren Bereichen. Der Kugeldurchmesser muss zwischen 100-200 um sein ( <strong&gt; Abbildung 1). </li><li> Bewahren Sie die Perlen über Nacht bei 4 ° C </li></ol><img alt="Figur 1" fo:content-width="6in" fo:src="/files/ftp_upload/51019/51019fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51019/51019fig1.jpg" width="500px" /> Fig. 1 ist. Übersicht der Agar Perlen Vorbereitung und Maus-Infektion. P. aeruginosa-Zellen werden in 1 ml PBS resuspendiert und zu 9 ml Flüssigkeit TSA (50 ° C). Diese Mischung wird auf 150 ml schweres Mineralöl bei 50 ° C in einen Kolben gegeben und bei hoher Geschwindigkeit für 6 min bei Raumtemperatur gerührt. Wenn der Kolben wird auf 4 ° C mit einer langsamen Rühren für 35 min abgekühlt, verfestigt sich das Agar Schaffung Perlen, und in der Mischung vorhandenen Bakterien werden in den Agar-Kügelchen eingebettet. Detail einer Agar Wulst enthält Bakterienzellen (A) gezeigt. Nach Entfernen des Mineralöls mit mehrmaligem Waschen mit sterilem PBS, bereit f die Agar-Kügelchen-Suspensionoder Impfung in den Lungen von Mäusen eine intratracheale Injektion (B). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51019/51019fig1highres.jpg" target="_blank">Klicken Sie hier für eine größere Ansicht</a> . 3. Mäuse Herausforderung mit Agar-Perlen Ethikerklärung: Dieses Protokoll und Experimentieren an die Richtlinien von der Tierpflege und-Ethik-Kommission von San Raffaele Scientific Institute. <ol><li> Die Anzahl der Kolonie bildenden Einheiten (CFU) auf die TSA-Platten, die Anzahl der CFU / ml in dem Agar-Kügelchen-Suspension zu bestimmen. Verdünnen Sie die Agar-Perlen mit sterilem PBS auf 2-4 x 10 7 CFU / ml, um eine optimale Inokulum von 1-2 x 10 6 in 50 ul erreichen. </li><li> Betäuben C57Bl/6NCr (20-22 g, 6-8 Wochen alt) männliche Mäuse mit Ketamin (50 mg / ml) und Xylazin (5 mg / ml) in 0,9% NaCl zu einem Volumen von 0,002 ml / g Körpergewicht verabreicht intraperitoneale Injektion. HINWEIS: Anästhesie wird als ADEQUate, wenn das Tier bleibt immer noch ruhig, reagiert nicht auf äußere Reize, und eine konstant Herz-und Atemfrequenz. </li><li> Platzieren Sie die Maus in Rückenlage. Desinfizieren Sie den Mantel der Maus mit 70% Ethanol. </li><li> Setzen Sie die Luftröhre durch einen vertikalen Schnitt der Haut und Intubation der Luftröhre mit einer sterilen, flexible 22 G 0,9 mm x 25 mm IV-Katheter, halten die Aufmerksamkeit auf das Stilett entfernen während der Bewegung nach unten in die Luftröhre. Legen Sie den Katheter nicht zu tief in die Luftröhre. Stopp vor dem Erreichen der carina (Bifurkation). </li><li> Nehmen Sie sofort ein Volumen von 50 ul Agar-Bead-Suspension mit einer 1-ml-Spritze und befestigen es an dem Katheter. Schieben Sie den Kolben der Spritze, so dass die Perlen in die Lunge implantiert werden. Schließen Sie den Schnitt mit Wundklammern. </li><li> Legen Sie das Tier auf einem Heizkissen, bis ganz wach. </li></ol> 4. Mäuse Bewertung <ol><li> Beachten Sie die Mäuse täglich auf klinische Zeichen einschließlich der Fellqualität, Körperhaltung,Gehfähigkeit und Flüssigkeitsstatus. Überwachung der täglichen Körpergewicht. Mäuse, die ≥ 20% des Körpergewichts verlieren, müssen eingeschläfert werden. </li><li> Folgen Sie Punkt 5 für die Sammlung der bronchoalveolären Lavage (BAL) und 6 oder 7 Punkte für die Sammlung der Lunge und der Analyse der Gesamt CFU, histologische Analyse, entzündliche Reaktion im Bereich der Gesamt-und Differential-Zellzahl in der BAL, Zytokin-Analyse und Myeloperoxidase (MPO)-Aktivität. </li></ol> 5. BAL Fluid-Sammlung und Analyse <ol><li> Euthanize die Mäuse durch CO 2-Inhalation. </li><li> Platzieren Sie die Maus in der Rückenlage. Desinfizieren Sie den Mantel der Maus mit 70% Ethanol. </li><li> Aussetzen sowie die Trachea Brustkorbs durch einen vertikalen Schnitt der Haut. Expose der Lunge durch Schneiden der Membran. </li><li> Setzen Sie einen Faden unter der Luftröhre mit einer Pinzette und Intubation der Luftröhre mit einer sterilen, flexible 22 g 0,9 mm x 25 mm IV-Katheter. Ziehen Sie die beiden Enden des Fadens Thread, um die ca. bindentheter zu der Trachea und verknoten den Faden um die Luftröhre. </li><li> Nehmen Sie ein Volumen von 1 ml RPMI 1640 mit einer 1-ml-Spritze und befestigen es an dem Katheter. Drücken Sie den Kolben der Spritze, um die Lungen zu waschen und sofort wieder die Flüssigkeit, Speichern in einer 15 ml Tube. HINWEIS: Wenn Zytokine analysiert werden sollen, fügen Sie Protease-Inhibitoren zu RPMI 1640. </li><li> Wiederholen Sie diesen Schritt dreimal mit insgesamt 3 ml RPMI. Von nun an, speichern Sie die BAL-Flüssigkeit auf Eis. Zum für die Sammlung und Analyse von Lungen Schritt 6 weiter. HINWEIS: Bitte beachten Sie, dass nicht alle der Flüssigkeit abgerufen werden (2,8 ml Maximum). </li><li> Zur Quantifizierung der in der BAL-Flüssigkeit Bakterien, probieren Sie eine kleine Teilmenge (300 ul) seriell verdünnt 1:10 in sterilem PBS, Platte auf TSA-Platten und Inkubation bei 37 ° C über Nacht. </li><li> Graf gesamten Zellen mit einem inversen Lichtmikroskop Verdünnung einen aliquoten Teil der BAL-Flüssigkeit 1:2 mit Tuerk Lösung in einer Burker Zellzahl Kammer. </li><li> Zentrifugieren Sie die remaining BAL-Flüssigkeit bei 330 × g für 8 min bei 4 ° C. Mit der Überstand für ELISA Zytokin-Analyse, Lagerung bei -80 ° C. Folgen Sie den Schritten von 5,10 bis 5,13 für Differential-Zellzahl von Zytospin. </li><li> Wenn die Pellets ist rot, lysieren die Erythrozyten Resuspendieren des Pellets in 250 bis 300 ul von RBC Lyse-Puffer 1:10 verdünnt in ultra-reinem destilliertem Wasser für 3 min. Neutralisiert mit 2 ml PBS und Zentrifugation bei 330 g für 8 min bei 4 ° C. </li><li> Überstand verwerfen und das Pellet in RPMI 10% fetales Rinderserum (FBS). Verwenden ein Volumen, das 1 x 10 6 Zellen / ml, bezogen auf die Gesamtzellzahl zur Verfügung stellt. </li><li> Zeigen Mikroskop-Objektträger und Filter in entsprechende Schlitze in der Zytospin Karton mit den Filter vor der Mitte des Zytospin. Pipettieren Sie 150 ul jeder Probe in die entsprechenden Wells der Zytospin und in einer Zentrifuge Zytozentrifuge bei 300 g für 5 min. </li><li> Stain Dias von Romanowsky Färbung mit einem kommerziellen Kit nach der masteller Anweisungen und 12, wie zuvor beschrieben. Folgen Sie den Schritten von 5,14 bis 5,17 für die MPO-Aktivität Analyse. </li><li> Zentrifugieren des verbleibenden Volumens der BAL bei 380 × g für 5 min bei 4 ° C. Überstand verwerfen und das Pellet in 250 ul 0,5% Hexadecyltrimethylammoniumchlorid in ultra-reinem destilliertem Wasser, um die Zellen zu lysieren. Die Suspension kann bei -20 ° C für mehrere Tage vor dem Test eingefroren. </li><li> Zentrifuge bei 16.000 × g für 30 min bei 4 ° C lagern und den Überstand zu MPO-Assay in 96-Well-Platten durchzuführen, indem die Probe in Doppelbestimmung in jedes Loch und, wenn nötig, auch die richtige Verdünnungen der Probe. </li><li> In den jeder Probe in die Vertiefungen ein gleiches Volumen von 3,3 &#39;, 5,5&#39;-Tetramethylbenzidin (TMB) als Substrat für Peroxidase. Die Reaktion kann im Dunkeln für mindestens 5 Minuten dauern, und, bis keine weitere Entwicklung in der Farbe. </li><li> Stoppen der Reaktion durch Zugabe von 2 MH 2 SO 4 and messen die OD bei 450 nm auf. Der OD-Wert wird direkt proportional zur Peroxidase-Aktivität. </li></ol> 6. Messung der bakterielle Belastung in Lungen-und Zytokin-Analyse <ol><li> Unmittelbar nach der BAL-Flüssigkeit Sammlung, Verbrauch Lungen von der Maus, spülen Sie sie in sterilem PBS, separate Lappen, legte sie in einem Rundrohr mit 2 ml sterilem PBS und Lagerung auf Eis. HINWEIS: Wenn Cytokine untersucht werden sollen, hinzuzufügen Proteaseinhibitoren PBS zu den Rohren. </li><li> Aseptisch homogenisiert Lunge, nehmen Sie eine kleine Teilmenge (300 ul) aus dem Homogenat, seriell verdünnt 1:10 in PBS, Platte auf TSA-Platten und bei 37 ° C über Nacht. Bitte beachten Sie, dass die Gesamtatemwege bakterielle Belastung wird die Summe der KBE in BAL und Lunge sein. </li><li> Zentrifugieren des verbleibenden Homogenat bei 16.000 × g für 30 min bei 4 ° C. Nehmen Sie den Überstand für ELISA Zytokin-Analyse und bei -80 ° C </li></ol> 7. Die histologische Untersuchung &lt;ol&gt; <li> Führen Sie die histologische Analyse nur auf die Lunge, in der BAL-Flüssigkeit wurde nicht gesammelt wurden, an Lungenkrebs zu Aspekt und Eigenschaften zu bewahren. </li><li> Euthanize der Maus durch CO 2-Inhalation. </li><li> Expose der Brustkorb durch einen vertikalen Schnitt der Haut, die Lunge aussetzen, indem das Zwerchfell. </li><li> Verbrauch Lunge, spülen Sie sie in PBS, trennen Sie die Lappen, legte sie in ein Röhrchen mit 5-10 ml 10% neutral gepuffertem Formalin (4% Formaldehyd) und bei 4 ° C vor Licht geschützt. </li><li> Einbettung in Paraffin Lunge, Verwendung von Standardverfahren. </li><li> Cut 5 um dicke Schnitte mit einem Mikrotom. </li><li> Stain Folien mit Hämatoxylin und Eosin und decken die Objektträger mit einem Deckglas, nach Standardverfahren. </li><li> Untersuchen Sie gleitet mit einem inversen Mikroskop-Hell und Bilder zu erwerben, indem Sie das Mikroskop mit einer Kamera. </li></ol>

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Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessen konkurrieren.

Die kritischen Schritte in der P. aeruginosa-Perlen Vorbereitung und Maus Herausforderung sind nachstehend angegeben. Die P. aeruginosa Stamm für Mäuse verwendet Herausforderung ist kritisch. Sterblichkeit, chronische Infektion oder Freiraum kann, abhängig von der Bakterienstamm für die Herausforderung unterscheiden. Die P. aeruginosa RP73 klinischen Stamm wurde über die PAO1 Referenzlaborstamm bevorzugt, da es zu einer vergleichsweise niedrigeren Sterblichkei...

Cystische Fibrose (CF) ist eine genetische Erkrankung, die durch Mutationen in der Mukoviszidose-Transmembran-Leitfähigkeitsregulator (CFTR)-Gen verursacht. Dieses Gen kodiert für ein Chlorid-Kanal auf der Membran der meisten Epithelzellen exprimiert. Bronchiektasen, Schleim-Plugging und Parenchymdestruktion hauptsächlich verursacht durch Pseudomonas aeruginosa-Infektionen zunehmend zu schweren Lungenerkrankungen und Sterblichkeit in den meisten CF-Patienten ein zu führen. Understanding CF Pathogenese und Weiterentwicklung neuer Therapien stützen sich auf Tiermodell mit charakteristischen Merkmalen des CF. Mehrere Mäuse, die genetisch für das CFTR-Gen modifiziert wird, erzeugt worden sind, aber Einschränkungen in der Fähigkeit dieser Spezies CF artige Lungenerkrankungen und mehrere andere Organ Anomalien bei CF-Patienten gesehen rekapitulieren wurden weitgehend dokumentiert 2. Entwicklung der Infektion ist eine der großen Herausforderungen in der CF-Tiermodell. Die Literatur clfrühen legt nahe, dass eine chronische Infektion, die länger als einen Monat kann nur erreicht werden, wenn Mäuse mit Bakterien in einem Immobilisierungsmittel eingebettet, wie Agar, Agarose, Alginat oder Algen 3-5 geimpft werden. Diese Immobilisierungsmittel bieten die mikroaerobe / anaeroben Bedingungen, die Bakterien in der Form von Mikrokolonien ähnlich dem Wachstum in den Schleim von CF-Patienten 6 zu halten, zu erlauben. Dieses Modell der chronischen Infektion führt zur Persistenz der Bakterien in den Lungen verursacht Atemwegsentzündung und Schäden 7. Abhängig von der verwendeten Methode, der Bakterienstamm und die Dosis in die Lunge eingeimpft, der Prozentsatz der chronischen infizierten Mäusen und die Keimbelastung in der Lunge zu verschiedenen Zeitpunkten gewonnen erheblich abweichen. Insbesondere die größte Herausforderung für die langfristige chronische Infektion bleibt die geringe Keimbelastung von P. aeruginosa und der geringe Anteil der infizierten Mäuse Wochen nach dem Challenge, was that Bakterienzellen werden nach und nach durch den Host gelöscht. Durch die Auswahl der P. aeruginosa RP73 klinischen Belastung aus einer Sammlung von CF-Isolate 8 wir niedrige Sterblichkeit, mehr schwere Läsionen und hoher Prozentsatz der chronischen Infektion erfolgreich erhalten mit einer stabilen Bakterienbelastung bis zu einem Monat in C57Bl/6NCrl Mäusen. Dieses Papier beschreibt die Methode für die Einbettung von P. aeruginosa in den Agar-Perlen, wir haben Mäusen durch Intratrachealbiopersistenztest infiziert, die bakterielle Belastung gemessen und Zytokine in Lunge, gesammelt BAL und histologische Untersuchung durchgeführt. Insgesamt wird dieses Protokoll Forscher bei der Behandlung grundlegend wichtige Fragen zur Pathogenese 8,9 und Prüfung neuer Therapien gegen P. unterstützen aeruginosa chronische Infektion 10,11.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="605">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Bacto Tryptic Soy Broth</td>
			<td style="width:191px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:143px;">211823</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Difco Agar, granulated</td>
			<td style="width:191px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:143px;">214510</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Heavy mineral oil</td>
			<td style="width:191px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:143px;">330760-1L</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">S-(+)-Ketamine hydrochloride</td>
			<td style="width:191px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:143px;">K1884</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Xylazine hydrochloride</td>
			<td style="width:191px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:143px;">X1251</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:272px;">1 ml syringe 25 G 5/8&#39;&#39;&#160;0.5 x 16 mm</td>
			<td style="width:191px;">PIC</td>
			<td style="width:143px;">3071250300350</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:272px;">Catheter 22GA 0.9 x 25 mm</td>
			<td style="width:191px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:143px;">381223</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:272px;">Graefe Forceps - 0.5 mm Tips Curved</td>
			<td style="width:191px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:143px;">11152-10</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:272px;">Scissors, Iris, 11 cm, straight</td>
			<td style="width:191px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:143px;">501758</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Suture clips</td>
			<td style="width:191px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:143px;">12040-01</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Suture thread</td>
			<td style="width:191px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:143px;">18020-40</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">RPMI 1640</td>
			<td style="width:191px;">Lonza</td>
			<td style="width:143px;">BE12-167F</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Complete protease inhibitor cocktail</td>
			<td style="width:191px;">Roche</td>
			<td style="width:143px;">11836145001</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:272px;">Fast-Read 102 Burker disposable chamber</td>
			<td style="width:191px;">Biosigma</td>
			<td style="width:143px;">390497</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Tuerk solution</td>
			<td style="width:191px;">Fluka</td>
			<td style="width:143px;">93770</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">RBC lysis buffer</td>
			<td style="width:191px;">Biolegend</td>
			<td style="width:143px;">420301</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Fetal bovine serum</td>
			<td style="width:191px;">Lonza</td>
			<td style="width:143px;">DE14-801F</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">EZ cytofunnel</td>
			<td style="width:191px;">Thermo Scientific</td>
			<td style="width:143px;">A78710021</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:272px;">Superfrost ultra plus microscope slides</td>
			<td style="width:191px;">Thermo Scientific</td>
			<td style="width:143px;">J3800AMNZ</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Diff-Quik Romanowsky staining set</td>
			<td style="width:191px;">Medion Diagnostics</td>
			<td style="width:143px;">130832</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:272px;">Hexadecyltrimethylammonium chloride</td>
			<td style="width:191px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:143px;">52366-10G</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">96-well EIA/RIA plate</td>
			<td style="width:191px;">Costar</td>
			<td style="width:143px;">3590</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">3,3&#8217;,5,5&#8217;- tetramethylbenzidine</td>
			<td style="width:191px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:143px;">T8665-1L</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Sulfuric acid</td>
			<td style="width:191px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:143px;">320501-1L</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">10% neutral buffered formalin</td>
			<td style="width:191px;">Bio-optica</td>
			<td style="width:143px;">05-01005Q</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Harris haematoxylin non Papanicolau</td>
			<td style="width:191px;">Bio-optica</td>
			<td style="width:143px;">05-M06004</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:272px;">Eosin plus alcoholic solution</td>
			<td style="width:191px;">Bio-optica</td>
			<td style="width:143px;">05-M11007</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;"></td>
			<td></td>
			<td></td>
<td>[header]</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;"></td>
			<td style="width:191px;"></td>
			<td style="width:143px;"></td>
<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Shaking incubator</td>
			<td style="width:191px;">Amerex Instruments</td>
			<td style="width:143px;">Steady Shake 757</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Water bath</td>
			<td style="width:191px;">Grant</td>
			<td style="width:143px;">SUB14</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Homogenizer</td>
			<td style="width:191px;">Ystral</td>
			<td style="width:143px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Precision balance</td>
			<td style="width:191px;">KERN</td>
			<td style="width:143px;">440-47N</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Cytocentrifuge</td>
			<td style="width:191px;">Thermo Scientific</td>
			<td style="width:143px;">A78300003</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Low Cost Heating Pad</td>
			<td style="width:191px;">2biol</td>
			<td style="width:143px;">LCHP</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="42" rowspan="2" style="height:42px;width:272px;">Homogenization probe</td>
			<td rowspan="2" style="width:191px;">Ystral</td>
			<td style="width:143px;">2366931(great)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:143px;">2366925(small)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Inverted optical microscope</td>
			<td style="width:191px;">Zeiss</td>
			<td style="width:143px;">Axioplan2</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Camera (microscope)</td>
			<td style="width:191px;">Zeiss</td>
			<td style="width:143px;">Axiocam MRc5</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:272px;">Rotary microtome</td>
			<td style="width:191px;">Leica</td>
			<td style="width:143px;">RM2255</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

long term chronic pseudomonas aeruginosa airway infection in mice

Ein Maus-Modell der chronischen Atemwegsinfektion ist ein Schlüsselfaktor bei zystischer Fibrose (CF)-Forschung, obwohl es eine Reihe von Bedenken in Bezug auf das Modell selbst. Frühen Phasen der Entzündung und Infektion wurden weitgehend mit Hilfe der Pseudomonas aeruginosa-Agar-Perlen Maus-Modell untersucht, während nur wenige Berichte über die langfristige chronische Infektion in vivo konzentriert. Die größte Herausforderung für langfristige chronische Infektion bleibt die geringe Keimbelastung von P. aeruginosa und der geringe Anteil der infizierten Mäuse Wochen nach der Herausforderung, die anzeigt, dass Bakterienzellen werden nach und nach durch den Host gelöscht. Dieser Beitrag stellt eine effiziente Methode zur Gewinnung von langfristigen chronischen Infektion bei Mäusen. Dieses Verfahren basiert auf der Einbettung des P. basierend aeruginosa klinischen Stämmen in den Agar-Perlen in vitro, gefolgt von Intratrachealbiopersistenztest in C57Bl/6NCrl Mäusen. Bilaterale Lungenentzündung ist mit meh verbundenBundes messbare Lese-outs einschließlich Gewichtsverlust, Sterblichkeit, chronische Infektion und entzündliche Reaktion. Die P. aeruginosa RP73 klinischen Stamm wurde über die PAO1 Referenzlaborstamm bevorzugt, da es zu einer vergleichsweise niedrigeren Sterblichkeit, mehr schwere Läsionen und höher chronischen Infektion. P. aeruginosa Besiedlung kann in der Lunge mehr als drei Monate andauern. Murine Lungenpathologie ähnelt dem von CF-Patienten mit fortgeschrittener chronischer Lungenerkrankung. Dieses Mausmodell meisten imitiert den Verlauf der Krankheit beim Menschen und kann sowohl für Studien über die Pathogenese und für die Bewertung neuer Therapien verwendet werden.

Wenn das Protokoll richtig gemacht wird, wird die P. aeruginosa Agar-Perlen zwischen 100-200 um zu messen und kann mit einem invertierten Lichtmikroskop durch Pipettieren ein kleines Volumen des Agar-Kügelchen-Suspension auf einen Objektträger beobachtet werden. Einzelnen bakteriellen Zellen sichtbar sind in den Agar-Perlen, wie im Detail in Fig. 1 gezeigt. Die Wahl von P. im Agar-Kügelchen Herstellung verwendet aeruginosa Stamm ist kritisch. <s...

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Long Term Chronic Pseudomonas aeruginosa Airway Infection in Mice

Wir beschreiben die Agar-Perlen Methode, um anhaltende langfristige chronische Pseudomonas aeruginosa-Infektion der Atemwege im Mausmodell zu etablieren.

Langzeitchronik<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; Airway-Infektion bei Mäusen

A mouse model of chronic airway infection is a key asset in cystic fibrosis (CF) research, although there are a number of concerns regarding the model ...

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Long Term Chronic Pseudomonas aeruginosa Airway Infection in Mice

22.3K Aufrufe.  San Raffaele Scientific Institute.  Wir beschreiben die Agar-Perlen Methode, um anhaltende langfristige chronische Pseudomonas aeruginosa-Infektion der Atemwege im Mausmodell zu etablieren. 

Serie: Long Term Chronic Pseudomonas aeruginosa Airway Infection in Mice

Co-culture Models of Pseudomonas aeruginosa Biofilms Grown on Live Human Airway Cells

Bacterial biofilms have been associated with a number of different human diseases, but biofilm development has generally been studied on non-living surfaces. In this paper, we describe protocols for forming Pseudomonas aeruginosa biofilms on human airway epithelial cells (CFBE cells) grown in culture. In the first method (termed the Static Co-culture Biofilm Model), P. aeruginosa is incubated with CFBE cells grown as confluent monolayers on standard tissue culture plates. Although the bacterium is quite toxic to epithelial cells, the addition of arginine delays the destruction of the monolayer long enough for biofilms to form on the CFBE cells. The second method (termed the Flow Cell Co-culture Biofilm Model), involves adaptation of a biofilm flow cell apparatus, which is often used in biofilm research, to accommodate a glass coverslip supporting a confluent monolayer of CFBE cells. This monolayer is inoculated with P. aeruginosa and a peristaltic pump then flows fresh medium across the cells. In both systems, bacterial biofilms form within 6-8 hours after inoculation. Visualization of the biofilm is enhanced by the use of P. aeruginosa strains constitutively expressing green fluorescent protein (GFP). The Static and Flow Cell Co-culture Biofilm assays are model systems for early P. aeruginosa infection of the Cystic Fibrosis (CF) lung, and these techniques allow different aspects of P. aeruginosa biofilm formation and virulence to be studied, including biofilm cytotoxicity, measurement of biofilm CFU, and staining and visualizing the biofilm.

Co-culture Models of Pseudomonas aeruginosa Biofilms Grown on Live Human Airway Cells

This paper describes different methods of growing Pseudomonas aeruginosa biofilms on cultured human airway epithelial cells. These protocols can be adapted to study different aspects of biofilm formation, including visualization of the biofilm, staining of the biofilm, measuring the colony forming units (CFU) of the biofilm, and studying biofilm cytotoxicity.

Co-Kultur Modelle Pseudomonas aeruginosa Biofilme auf lebenden menschlichen Zellen gezüchtet Airway

Bacterial biofilms have been associated with a number of different human diseases, but biofilm development has generally been studied on non-living ...

Forschung

Immunologie und Infektion

Pseudomonas aeruginosa and Saccharomyces cerevisiae Biofilm in Flow Cells

Many microbial cells have the ability to form sessile microbial communities defined as biofilms that have altered physiological and pathological properties compared to free living microorganisms. Biofilms in nature are often difficult to investigate and reside under poorly defined conditions1. Using a transparent substratum it is possible to device a system where simple biofilms can be examined in a non-destructive way in real-time: here we demonstrate the assembly and operation of a flow cell model system, for in vitro 3D studies of microbial biofilms generating high reproducibility under well-defined conditions2,3.
The system consists of a flow cell that serves as growth chamber for the biofilm. The flow cell is supplied with nutrients and oxygen from a medium flask via a peristaltic pump and spent medium is collected in a waste container. This construction of the flow system allows a continuous supply of nutrients and administration of e.g. antibiotics with minimal disturbance of the cells grown in the flow chamber. Moreover, the flow conditions within the flow cell allow studies of biofilm exposed to shear stress. A bubble trapping device confines air bubbles from the tubing which otherwise could disrupt the biofilm structure in the flow cell.
The flow cell system is compatible with Confocal Laser Scanning Microscopy (CLSM) and can thereby provide highly detailed 3D information about developing microbial biofilms. Cells in the biofilm can be labeled with fluorescent probes or proteins compatible with CLSM analysis. This enables online visualization and allows investigation of niches in the developing biofilm. Microbial interrelationship, investigation of antimicrobial agents or the expression of specific genes, are of the many experimental setups that can be investigated in the flow cell system.

Pseudomonas aeruginosa and Saccharomyces cerevisiae Biofilm in Flow Cells

Protocol describing the application of a flow cell system for growing and analyzing microbial biofilms for Confocal Laser Scanning Microscopy (CLSM).

Pseudomonas aeruginosa und Saccharomyces cerevisiae Biofilm im Flow Cells

Many microbial cells have the ability to form sessile microbial communities defined as biofilms that have altered physiological and pathological ...

RNA Isolation of Pseudomonas aeruginosa Colonizing the Murine Gastrointestinal Tract

Pseudomonas aeruginosa (PA) infections result in significant morbidity and mortality in hosts with compromised immune systems, such as patients with leukemia, severe burn wounds, or organ transplants1. In patients at high-risk for developing PA bloodstream infections, the gastrointestinal (GI) tract is the main reservoir for colonization2, but the mechanisms by which PA transitions from an asymptomatic colonizing microbe to an invasive, and often deadly, pathogen are unclear. Previously, we performed in vivo transcription profiling experiments by recovering PA mRNA from bacterial cells residing in the cecums of colonized mice 3 in order to identify changes in bacterial gene expression during alterations to the host&#x2019;s immune status.
As with any transcription profiling experiment, the rate-limiting step is in the isolation of sufficient amounts of high quality mRNA. Given the abundance of enzymes, debris, food residues, and particulate matter in the GI tract, the challenge of RNA isolation is daunting. Here, we present a method for reliable and reproducible isolation of bacterial RNA recovered from the murine GI tract. This method utilizes a well-established murine model of PA GI colonization and neutropenia-induced dissemination4. Once GI colonization with PA is confirmed, mice are euthanized and cecal contents are recovered and flash frozen. RNA is then extracted using a combination of mechanical disruption, boiling, phenol/chloroform extractions, DNase treatment, and affinity chromatography. Quantity and purity are confirmed by spectrophotometry (Nanodrop Technologies) and bioanalyzer (Agilent Technologies) (Fig 1). This method of GI microbial RNA isolation can easily be adapted to other bacteria and fungi as well.

RNA Isolation of Pseudomonas aeruginosa Colonizing the Murine Gastrointestinal Tract

A reliable method for the RNA isolation of Pseudomonas aeruginosa recovered from murine cecums is described. The RNA recovered is of sufficient quantity and quality for subsequent qPCR, transcription profiling, and RNA Seq experiments. This technique can be adapted for RNA isolation of other intestinal microbes.

RNA Isolierung von Pseudomonas aeruginosa Kolonisierung der Murine Gastrointestinaltrakt

Pseudomonas aeruginosa (PA) infections result in significant morbidity and mortality in hosts with compromised immune systems, such as patients with ...

Use of Artificial Sputum Medium to Test Antibiotic Efficacy Against Pseudomonas aeruginosa in Conditions More Relevant to the Cystic Fibrosis Lung

There is growing concern about the relevance of in vitro antimicrobial susceptibility tests when applied to isolates of P. aeruginosa from cystic fibrosis (CF) patients. Existing methods rely on single or a few isolates grown aerobically and planktonically. Predetermined cut-offs are used to define whether the bacteria are sensitive or resistant to any given antibiotic1. However, during chronic lung infections in CF, P. aeruginosa populations exist in biofilms and there is evidence that the environment is largely microaerophilic2. The stark difference in conditions between bacteria in the lung and those during diagnostic testing has called into question the reliability and even relevance of these tests3.
 Artificial sputum medium (ASM) is a culture medium containing the components of CF patient sputum, including amino acids, mucin and free DNA. P. aeruginosa growth in ASM mimics growth during CF infections, with the formation of self-aggregating biofilm structures and population divergence4,5,6. The aim of this study was to develop a microtitre-plate assay to study antimicrobial susceptibility of P. aeruginosa based on growth in ASM, which is applicable to both microaerophilic and aerobic conditions.
 An ASM assay was developed in a microtitre plate format. P. aeruginosa biofilms were allowed to develop for 3 days prior to incubation with antimicrobial agents at different concentrations for 24 hours. After biofilm disruption, cell viability was measured by staining with resazurin. This assay was used to ascertain the sessile cell minimum inhibitory concentration (SMIC) of tobramycin for 15 different P. aeruginosa isolates under aerobic and microaerophilic conditions and SMIC values were compared to those obtained with standard broth growth. Whilst there was some evidence for increased MIC values for isolates grown in ASM when compared to their planktonic counterparts, the biggest differences were found with bacteria tested in microaerophilic conditions, which showed a much increased resistance up to a &gt;128 fold, towards tobramycin in the ASM system when compared to assays carried out in aerobic conditions.
 The lack of association between current susceptibility testing methods and clinical outcome has questioned the validity of current methods3. Several in vitro models have been used previously to study P. aeruginosa biofilms7, 8. However, these methods rely on surface attached biofilms, whereas the ASM biofilms resemble those observed in the CF lung9 . In addition, reduced oxygen concentration in the mucus has been shown to alter the behavior of P. aeruginosa2 and affect antibiotic susceptibility10. Therefore using ASM under microaerophilic conditions may provide a more realistic environment in which to study antimicrobial susceptibility.

Use of Artificial Sputum Medium to Test Antibiotic Efficacy Against Pseudomonas aeruginosa in Conditions More Relevant to the Cystic Fibrosis Lung

Current diagnostic antimicrobial susceptibility testing relies on the planktonic growth of isolates in nutrient rich, aerobic conditions. Here, we employ an alternative artificial sputum medium to study antimicrobial susceptibility of Pseudomonas aeruginosa biofilms under both aerobic and microaerophilic conditions more representative of the cystic fibrosis lung.

Einsatz von künstlichen Sputum Mittlere bis antibiotische Wirkung gegen die getestet<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; AGB in einen engeren Bezug zu den Mukoviszidose-Lunge

There  is growing concern about the relevance of in vitro antimicrobial  susceptibility tests when applied to isolates of P. aeruginosa from  cystic ...

Pseudomonas aeruginosa Induced Lung Injury Model

In order to study human acute lung injury and pneumonia, it is important to develop animal models to mimic various pathological features of this disease. Here we have developed a mouse lung injury model by intra-tracheal injection of bacteria Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa or PA). Using this model, we were able to show lung inflammation at the early phase of injury. In addition, alveolar epithelial barrier leakiness was observed by analyzing bronchoalveolar lavage (BAL); and alveolar cell death was observed by Tunel assay using tissue prepared from injured lungs. At a later phase following injury, we observed cell proliferation required for the repair process. The injury was resolved 7 days from the initiation of P. aeruginosa injection. This model mimics the sequential course of lung inflammation, injury and repair during pneumonia. This clinically relevant animal model is suitable for studying pathology, mechanism of repair, following acute lung injury, and also can be used to test potential therapeutic agents for this disease.

Pseudomonas aeruginosa Induced Lung Injury Model

We have developed a mouse lung injury model by intra-tracheal injection of bacteria Pseudomonas aeruginosa. This model mimics lung injury during pneumonia and is clinically relevant.

Pseudomonas aeruginosa induzierte Lungenschädigung-Modell

In order to study human acute lung injury and pneumonia, it is important to develop animal models to mimic various pathological features of this disease. ...

Come to the Light Side: In Vivo Monitoring of Pseudomonas aeruginosa Biofilm Infections in Chronic Wounds in a Diabetic Hairless Murine Model

The presence of bacteria as structured biofilms in chronic wounds, especially in diabetic patients, is thought to prevent wound healing and resolution. Chronic mouse wounds models have been used to understand the underlying interactions between the microorganisms and the host. The models developed to date rely on the use of haired animals and terminal collection of wound tissue for determination of viable bacteria. While significant insight has been gained with these models, this experimental procedure requires a large number of animals and sampling is time consuming. We have developed a novel murine model that incorporates several optimal innovations to evaluate biofilm progression in chronic wounds: a) it utilizes hairless mice, eliminating the need for hair removal; b) applies pre-formed biofilms to the wounds allowing for the immediate evaluation of persistence and effect of these communities on host; c) monitors biofilm progression by quantifying light production by a genetically engineered bioluminescent strain of Pseudomonas aeruginosa, allowing real-time monitoring of the infection thus reducing the number of animals required per study. In this model, a single full-depth wound is produced on the back of STZ-induced diabetic hairless mice and inoculated with biofilms of the P. aeruginosa bioluminescent strain Xen 41. Light output from the wounds is recorded daily in an in vivo imaging system, allowing for in vivo and in situ rapid biofilm visualization and localization of biofilm bacteria within the wounds. This novel method is flexible as it can be used to study other microorganisms, including genetically engineered species and multi-species biofilms, and may be of special value in testing anti-biofilm strategies including antimicrobial occlusive dressings.

Come to the Light Side: In Vivo Monitoring of Pseudomonas aeruginosa Biofilm Infections in Chronic Wounds in a Diabetic Hairless Murine Model

Here we describe a novel diabetic murine model utilizing hairless mice for real-time, non-invasive, monitoring of biofilm wound infections of bioluminescent Pseudomonas aeruginosa. This method can be adapted to evaluate infection of other bacterial species and genetically modified microorganisms, including multi-species biofilms, and test the efficacy of antibiofilm strategies.

Besuchen Sie die Licht-Seite: In Vivo Monitoring von Pseudomonas Aeruginosa Biofilms Infektionen bei chronischen Wunden in einer diabetischen haarlose Mausmodell

The presence of bacteria as structured biofilms in chronic wounds, especially in diabetic patients, is thought to prevent wound healing and resolution. ...

Methods for Detecting Cytotoxic Amyloids Following Infection of Pulmonary Endothelial Cells by Pseudomonas aeruginosa

Patients who survive pneumonia have elevated death rates in the months following hospital discharge. It has been hypothesized that infection of pulmonary tissue during pneumonia results in the production of long-lived cytotoxins that can lead to subsequent end organ failure. We have developed in vitro assays to test the hypothesis that cytotoxins are produced during pulmonary infection. Isolated rat pulmonary endothelial cells and the bacterium Pseudomonas aeruginosa are used as model systems, and the production of cytoxins following infection of the endothelial cells by the bacteria is demonstrated using cell culture followed by direct quantitation using lactate dehydrogenase assays and a novel microscopic method utilizing ImageJ technology. The amyloid nature of these cytotoxins was demonstrated by thioflavin T binding assays and by immunoblotting and immunodepletion using A11 anti-amyloid antibody. Further analyses using immunoblotting demonstrated that oligomeric tau and A&#946; were produced and released by endothelial cells following infection by P. aeruginosa. These methods should be readily adaptable to analyses of human clinical samples.

Methods for Detecting Cytotoxic Amyloids Following Infection of Pulmonary Endothelial Cells by Pseudomonas aeruginosa

Simple methods are described for demonstrating the production of cytotoxic amyloids following infection of pulmonary endothelium by Pseudomonas aeruginosa.

Methoden zur Erkennung von zytotoxischen amyloiden folgende Infektion der pulmonalen Endothelzellen durch Pseudomonas aeruginosa

Patients who survive pneumonia have elevated death rates in the months following hospital discharge. It has been hypothesized that infection of pulmonary ...

Generation of In-Frame Gene Deletion Mutants in Pseudomonas aeruginosa and Testing for Virulence Attenuation in a Simple Mouse Model of Infection

Microorganisms are genetically versatile and diverse and have become a major source of many commercial products and biopharmaceuticals. Though some of these products are naturally produced by the organisms, other products require genetic engineering of the organism to increase the yields of production. Avirulent strains of Escherichia coli have traditionally been the preferred bacterial species for producing biopharmaceuticals; however, some products are difficult for E. coli to produce. Thus, avirulent strains of other bacterial species could provide useful alternatives for production of some commercial products. Pseudomonas aeruginosa is a common and well-studied Gram-negative bacterium that could provide a suitable alternative to E. coli. However, P. aeruginosa is an opportunistic human pathogen. Here, we detail a procedure that can be used to generate nonpathogenic strains of P. aeruginosa through sequential genomic deletions using the pEX100T-NotI plasmid. The main advantage of this method is to produce a marker-free strain. This method may be used to generate highly attenuated P. aeruginosa strains for the production of commercial products, or to design strains for other specific uses. We also describe a simple and reproducible mouse model of bacterial systemic infection via intraperitoneal injection of validated test strains to test the attenuation of the genetically engineered strain in comparison to the FDA-approved BL21 strain of E. coli.

Generation of In-Frame Gene Deletion Mutants in Pseudomonas aeruginosa and Testing for Virulence Attenuation in a Simple Mouse Model of Infection

Here, we describe a simple and reproducible protocol of mouse model of infection to evaluate the attenuation of the genetically modified strains of Pseudomonas aeruginosa in comparison to the United States Food and Drug Administration (FDA)-approved Escherichia coli for commercial applications.

Generierung von In-Frame-Gen-Deletion Mutanten in Pseudomonas aeruginosa und Tests auf VirulenzDämpfung in einem einfachen Mausmodell der Infektion

Microorganisms are genetically versatile and diverse and have become a major source of many commercial products and biopharmaceuticals. Though some of ...

Culture of Small Colony Variant of Pseudomonas aeruginosa and Quantitation of its Alginate

Pseudomonas aeruginosa, an opportunistic Gram-negative bacterial pathogen, can overproduce an exopolysaccharide alginate resulting in a unique phenotype called mucoidy. Alginate is linked to chronic lung infections resulting in poor prognosis in patients with cystic fibrosis (CF). Understanding the pathways that regulate the production of alginate can aid in the development of novel therapeutic strategies targeting the alginate formation. Another disease-related phenotype is the small colony variant (SCV). SCV is due to the slow growth of bacteria and often associated with increased resistance to antimicrobials. In this paper, we first show a method of culturing a genetically defined form of P. aeruginosa SCV due to pyrimidine biosynthesis mutations. Supplementation of nitrogenous bases, uracil or cytosine, returns the normal growth to these mutants, demonstrating the presence of a salvage pathway that scavenges free bases from the environment. Next, we discuss two methods for the measurement of bacterial alginate. The first method relies on the hydrolysis of the polysaccharide to its uronic acid monomer followed by derivatization with a chromogenic reagent, carbazole, while the second method uses an ELISA based on a commercially available, alginate-specific mAb. Both methods require a standard curve for quantitation. We also show that the immunological method is specific for alginate quantification and may be used for the measurement of alginate in the clinical specimens.

Culture of Small Colony Variant of Pseudomonas aeruginosa and Quantitation of its Alginate

Here, we describe a growth condition to culture the small colony variant of Pseudomonas aeruginosa. We also describe two separate methods for the detection and quantitation of the exopolysaccharide alginate produced by P. aeruginosa using a traditional uronic acid carbazole assay and an alginate-specific monoclonal antibody (mAb) based ELISA.

Kultur der kleinen Kolonie Variante von Pseudomonas aeruginosa und Quantitation seines Alginats

Pseudomonas aeruginosa, an opportunistic Gram-negative bacterial pathogen, can overproduce an exopolysaccharide alginate resulting in a unique phenotype ...

A Delayed Inoculation Model of Chronic Pseudomonas aeruginosa Wound Infection

Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) is a major nosocomial pathogen of increasing relevance to human health and disease, particularly in the setting of chronic wound infections in diabetic and hospitalized patients. There is an urgent need for chronic infection models to aid in the investigation of wound pathogenesis and the development of new therapies against this pathogen. Here, we describe a protocol that uses delayed inoculation 24 hours after full-thickness excisional wounding. The infection of the provisional wound matrix present at this time forestalls either rapid clearance or dissemination of infection and instead establishes chronic infection lasting 7&#8211;10 days without the need for implantation of foreign materials or immune suppression. This protocol mimics a typical temporal course of post-operative infection in humans. The use of a luminescent P. aeruginosa strain (PAO1:lux) allows for quantitative daily assessment of bacterial burden for P. aeruginosa wound infections. This novel model may be a useful tool in the investigation of bacterial pathogenesis and the development of new therapies for chronic P. aeruginosa wound infections.

A Delayed Inoculation Model of Chronic Pseudomonas aeruginosa Wound Infection

We describe a delayed inoculation protocol for generating chronic wound infections in immunocompetent mice.

Ein verzögertes Impfmodell der chronischen Pseudomonas aeruginosa Wundinfektion

Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) is a major nosocomial pathogen of increasing relevance to human health and disease, particularly in the setting of ...