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En este artículo

  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

Aquí, se presenta un ensayo de reconstitución in vitro basado en microscopía TIRF para cuantificar y comparar simultáneamente la dinámica de dos poblaciones de microtúbulos. Se describe un método para ver simultáneamente la actividad colectiva de múltiples proteínas asociadas a microtúbulos en haces de microtúbulos reticulados y microtúbulos individuales.

Resumen

Los microtúbulos son polímeros de heterodímeros de αβ-tubulina que se organizan en estructuras distintas en las células. Las arquitecturas y redes basadas en microtúbulos a menudo contienen subconjuntos de matrices de microtúbulos que difieren en sus propiedades dinámicas. Por ejemplo, en las células en división, los haces estables de microtúbulos reticulados coexisten muy cerca de los microtúbulos dinámicos no reticulados. Los estudios de reconstitución in vitro basados en microscopía TIRF permiten la visualización simultánea de la dinámica de estas diferentes matrices de microtúbulos. En este ensayo, se ensambla una cámara de imágenes con microtúbulos inmovilizados en la superficie, que están presentes como filamentos individuales u organizados en haces reticulados. La introducción de tubulina, nucleótidos y reguladores de proteínas permite la visualización directa de proteínas asociadas y de las propiedades dinámicas de microtúbulos simples y reticulados. Además, los cambios que ocurren a medida que los microtúbulos individuales dinámicos se organizan en haces se pueden monitorear en tiempo real. El método descrito aquí permite una evaluación sistemática de la actividad y localización de proteínas individuales, así como los efectos sinérgicos de los reguladores de proteínas en dos subconjuntos de microtúbulos diferentes en condiciones experimentales idénticas, proporcionando así información mecanicista que es inaccesible por otros métodos.

Introducción

Los microtúbulos son biopolímeros que forman andamios estructurales esenciales para múltiples procesos celulares, que van desde el transporte intracelular y el posicionamiento de orgánulos hasta la división celular y el alargamiento. Para ejecutar estas diversas funciones, los microtúbulos individuales se organizan en matrices del tamaño de micras, como husos mitóticos, axonemas ciliares, haces neuronales, matrices interfase y matrices corticales de plantas. Un motivo arquitectónico omnipresente que se encuentra en estas estructuras es un haz de microtúbulos reticulados a lo largo de sus longitudes1. Una característica intrigante de varias estr....

Protocolo

1. Preparar reactivos

  1. Prepare tampones y reactivos como se describe en la Tabla 1 y la Tabla 2. Durante el experimento, mantenga todas las soluciones en hielo, a menos que se indique lo contrario.
SoluciónComponentesDuración de almacenamiento recomendadaNotas
5X BRB80400 mM K-PIPES, 5 mM MgCl2, 5 mM EGTA, pH....

Resultados

El experimento descrito anteriormente se realizó utilizando microtúbulos biotinilados marcados con fluoróforos de 647 nm, microtúbulos no biotinilados marcados con fluoróforos de 560 nm y mezcla de tubulina soluble marcada con fluoróforos de 560 nm. Los microtúbulos fueron reticulados por la proteína reticulante PRC1 (marcada con GFP). Después de generar haces inmovilizados en la superficie y microtúbulos individuales (paso 5.11), la cámara de imágenes se montó en un objetivo de aceite TIRF 100X 1.49 NA y se.......

Discusión

El experimento descrito aquí amplía significativamente el alcance y la complejidad de los ensayos convencionales de reconstitución de microtúbulos, que tradicionalmente se realizan en microtúbulos individuales o en un tipo de matriz. El ensayo actual proporciona un método para cuantificar y comparar simultáneamente la actividad reguladora de MAP en dos poblaciones, a saber, microtúbulos individuales y haces reticulados. Además, este ensayo permite el examen de dos tipos de haces: los que están preformados a par.......

Divulgaciones

Los autores no declaran intereses contrapuestos.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por una subvención de los NIH (no. 1DP2GM126894-01), y por fondos de Pew Charitable Trusts y Smith Family Foundation a R.S. Los autores agradecen al Dr. Shuo Jiang por su contribución al desarrollo y optimización de los protocolos.

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Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
(±)-6-Hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchromane-2-carboxylic acid (Trolox)Sigma Aldrich238813
1,4-piperazinediethanesulfonic acid (PIPES)Sigma AldrichP6757
18x18 mm #1.5 coverslips Electron Microscopy Sciences63787
2-Mercaptoethanol (BME)Sigma AldrichM-6250
24x60 mm #1.5 coverslipsElectron Microscopy Sciences63793
405/488/560/647 nm Laser Quad Band ChromaTRF89901-NK
AcetoneSigma Aldrich320110
Adenosine 5'-triphosphate disodium salt hydrate (ATP)Sigma AldrichA7699-5G
Avidin, NeutrAvidin® Biotin-binding Protein (Molecular Probes®)Thermo Fischer ScientificA2666
Bath sonicator: Branson 2800 CleanerBransonCPX2800H
Beckman Coulter Polycarbonate Thickwall Tubes, 11 x 34 mmBeckman-Coulter 343778
Beckman Coulter Polycarbonate Thickwall Tubes, 8 x 34 mmBeckman-Coulter 343776
Biotin-PEG-SVA, MW 5,000Laysan Bio#Biotin-PEG-SVA-5000
Bovine Serum Albumin (BSA)Sigma Aldrich2905
CatalaseSigma AldrichC40
Corning LSE Mini Microcentrifuge, AC100-240VCorning6670
Delicate Task WipesKimtech34120
Dithiothreitol (DTT)GoldBioDTT10
Emission filterChromaET610/75m
Ethanol (200-proof)Decon Labs2705
Ethylene glycol tetraacetic acid (EGTA)Sigma Aldrich3777
Glucose OxidaseSigma AldrichG2133
GMPCPPJena Bioscience NU-405
Guanosine 5'-triphosphate sodium salt hydrate (GTP)Sigma AldrichG8877
Hellmanex III detergent Sigma AldrichZ805939
Immersion oil, Type AFisher Scientific77010
Kappa-caseinSigma AldrichC0406
LanolinFisher ScientificS25376
Lens Cleaning TissueThorLabsMC-5
Magnesium Chloride (MgCl2)Sigma AldrichM9272
MethylcelluloseSigma AldrichM0512
Microfuge 16 Benchtop CentrifugeBeckman-Coulter A46474
Microscope Slides, Diamond White Glass, 25 x 75mm, 90° Ground Edges, WHITE FrostedGlobe Scientific1380-50W
mPEG-Succinimidyl Valerate, MW 5,000 Laysan Bio#NH2-PEG-VA-5K
Optima™ Max-XP Tabletop UltracentrifugeBeckman-Coulter 393315
ParaffinFisher ScientificP31-500
PELCO Reverse (self-closing), Fine TweezersTed Pella5377-NM
Petrolatum, WhiteFisher Scientific18-605-050
Plasma Cleaner, 115VHarrick PlasmaPDC-001
Potassium Hydroxide (KOH)Sigma Aldrich221473
Sodium bicarbonateSigma AldrichS6014
SucroseSigma AldrichS7903
Thermal-Lok 1-Position Dry Heat BathUSA Scientific2510-1101
Thermal-Lok Block for 1.5 and 2.0 mL TubesUSA Scientific2520-0000
Thermo Scientific™ Pierce™ Bond-Breaker™ TCEP Solution, Neutral pH; 500mMThermo Fischer ScientificPI-77720
TIRF 100X NA 1.49 Oil ObjectiveNikonCFI Apochromat TIRF 100XC Oil
TIRF microscopeNikonEclipse Ti
TLA 120.1 rotorBeckman-Coulter 362224
TLA 120.2 rotorBeckman-Coulter 357656
Tubulin protein (>99% pure): porcine brainCytoskeletonT240
Tubulin Protein (Biotin): Porcine BrainCytoskeletonT333P
Tubulin protein (fluorescent HiLyte 647): porcine brainCytoskeletonTL670M
Tubulin protein (X-rhodamine): bovine brainCytoskeletonTL620M
VECTABOND® Reagent, Tissue Section AdhesionVector BiolabsSP-1800-7
VWR® Personal-Sized Incubator, 120V, 50/60Hz, 0.6AVWR97025-630

Referencias

  1. Subramanian, R., Kapoor, T. M. Building complexity: insights into self-organized assembly of microtubule-based architectures. Developmental Cell. 23 (5), 874-885 (2012).
  2. Baas, P. W., Rao, A. N., Matamoros, A. J., Leo, L.

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