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En este artículo

  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados Representativos
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

En este artículo se informa de la construcción de células knockout de proteína E asociada al centrómero (CENP-E) utilizando el sistema CRISPR/Cas9 y tres estrategias de cribado basadas en el fenotipo. Hemos utilizado la línea celular knockout CENP-E para establecer un enfoque novedoso para validar la especificidad y toxicidad de los inhibidores de CENP-E, que es útil para el desarrollo de fármacos y la investigación biológica.

Resumen

El sistema CRISPR (repeticiones palindrómicas cortas agrupadas regularmente interespaciadas)/Cas9 se ha convertido en una poderosa herramienta para la edición genética precisa y eficiente en una variedad de organismos. La proteína E ASOCIADA AL CENTRÓMERO (CENP-E) es una quinesina dirigida al extremo positivo necesaria para la captura del cinetocoro-microtúbulo, la alineación cromosómica y el punto de control de ensamblaje del huso. Aunque las funciones celulares de las proteínas CENP-E han sido bien estudiadas, ha sido difícil estudiar las funciones directas de las proteínas CENP-E utilizando protocolos tradicionales porque la ablación de CENP-E generalmente conduce a la activación del punto de control del ensamblaje del huso, la detención del ciclo celular y la muerte celular. En este estudio, hemos eliminado por completo el gen CENP-E en células HeLa humanas y hemos generado con éxito las células CENP-E-/- HeLa utilizando el sistema CRISPR/Cas9.

Se establecieron tres estrategias optimizadas de cribado basadas en el fenotipo, que incluyen el cribado de colonias celulares, los fenotipos de alineación cromosómica y las intensidades fluorescentes de las proteínas CENP-E, que mejoran eficazmente la eficacia del cribado y la tasa de éxito experimental de las células knockout CENP-E . Es importante destacar que la deleción de CENP-E da lugar a una desalineación cromosómica, a la localización anormal de las proteínas serina/treonina quinasa B (BubR1) del punto de control mitótico BUB1 y a defectos mitóticos. Además, hemos utilizado el modelo de células HeLa knockout de CENP-E para desarrollar un método de identificación de inhibidores específicos de CENP-E.

En este estudio, se ha establecido un enfoque útil para validar la especificidad y toxicidad de los inhibidores de CENP-E. Además, en este trabajo se presentan los protocolos de edición génica de CENP-E utilizando el sistema CRISPR/Cas9, que podría ser una poderosa herramienta para investigar los mecanismos de CENP-E en la división celular. Además, la línea celular knockout de CENP-E contribuiría al descubrimiento y validación de inhibidores de CENP-E, que tienen importantes implicaciones para el desarrollo de fármacos antitumorales, estudios de mecanismos de división celular en biología celular y aplicaciones clínicas.

Introducción

La edición genómica modificada media las modificaciones específicas de los genes en una variedad de células y organismos. En eucariotas, la mutagénesis específica del sitio puede introducirse mediante la aplicación de nucleasas específicas de secuencia que estimulan la recombinación homóloga del ADN diana1. En los últimos años, se han diseñado varias tecnologías de edición del genoma, incluidas las nucleasas de dedos de zinc (ZFN)2,3, las nucleasas efectoras similares a activadores de transcripción (TALEN)4,5 y las meganucleasas homing

Protocolo

1. Construcción de los vectores knockout del gen CRISPR/Cas9

  1. Seleccione la secuencia de ADN genómico diana en el gen CENP-E humano (Acceso GenBank No. NM_001286734.2) y diseñar el sgRNA utilizando una herramienta de diseño CRISPR en línea (http://crispor.tefor.net/).
  2. Introduzca una sola secuencia genómica, seleccione el genoma de "Homo sapiens-human-UCSC Dec 2013 (conjunto de análisis hg38) + polimorfismos de un solo nucleótido (SNPs): dbSNP148", y seleccione el motivo adyacente del protoespaciador "20 bp-NGG-spCas9". Elija dos secuencias guía, que incluyen sgRNA-1, 5'-CGGCCGCACTCGCACGCAGA-3' y sgRNA-2 5'-TTCTTTAG....

Resultados Representativos

Las células CENP-E-/- HeLa se generaron con éxito utilizando el sistema CRISPR/Cas9 (Figura 1). La línea de tiempo y los pasos experimentales críticos de este método se muestran en la Figura 1. En primer lugar, diseñamos y sintetizamos los sgRNAs específicos de CENP-E, recocimos y ligamos los sgRNAs en el plásmido pX458, transfectamos el plásmido en células HeLa y las cultivamos durante 48 h. Las células transfectadas se d.......

Discusión

La quinesina-7 CENP-E es un regulador clave en la alineación cromosómica y el punto de control de ensamblaje del huso durante la división celular 17,19,20. La deleción genética de CENP-E generalmente resulta en la activación del punto de control del ensamblaje del huso, la detención del ciclo celular y la muerte celular 27,29,51,52.

Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos a todos los miembros del Laboratorio de Citoesqueletos de la Universidad Médica de Fujian por sus útiles discusiones. Agradecemos a Jun-Jin Lin, Zhi-Hong Huang, Ling Lin, Li-Li Pang, Lin-Ying Zhou, Xi Lin y Min-Xia Wu del Centro de Servicios Públicos de Tecnología de la Universidad Médica de Fujian por su asistencia técnica. Agradecemos a Si-Yi Zheng, Ying Lin y Qi Ke del Centro de Enseñanza Experimental de Ciencias Médicas Básicas de la Universidad Médica de Fujian por su apoyo. Este estudio contó con el apoyo de las siguientes subvenciones: Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (subvención número 82001608 y 82101678), Fundación de Ciencias Na....

Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
0.25% Trypsin-EDTAGibco25200056
1.5 mL centrifuge tubeAxygenMCT-150-C
24-well plateCorning3524
4S Gelred, 10,000x in waterSangon Biotech (Shanghai)A616697
50 mL centrifuge tubeCorning430828
6 cm Petri dishCorning430166
95% ethanolSinopharm Chemical Reagent10009164
96-well plateCorning3599
Acetic acidSinopharm Chemical Reagent10000218Dissolve in H2O to prepare a 10% working solution.
AgaroseSangon Biotech (Shanghai)A620014
Alexa Fluor 488-labeled Goat Anti-Mouse IgG(H+L)BeyotimeA0428For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:500 dilution.
Alexa Fluor 488-labeled Goat Anti-Rabbit IgG(H+L)BeyotimeA0423For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:500 dilution.
Alexa Fluor 555-labeled Donkey Anti-Mouse IgG(H+L)BeyotimeA0460For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:500 dilution.
Anhydrous ethanolSinopharm Chemical Reagent100092690
Anti-BubR1 rabbit monoclonal antibodyAbcamab254326For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:100 dilution 
Anti-CENP-B mouse monoclonal antibodySanta Cruz Biotechnologysc-376392For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:50 dilution.
Anti-CENP-E rabbit monoclonal antibodyAbcamab133583For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:100 dilution.
Anti-fade mounting mediumBeyotimeP0131Slowing down the quenching of fluorescent signals.
Anti-α-tubulin mouse monoclonal antibodyAbcamab7291For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:100 dilution.
Biotek Epoch Microplate SpectrophotometerBiotek InstrumentsBiotek Epoch
Bovine Serum Albumin (BSA)Sinopharm Chemical Reagent69003435
BpiI (BbsI)Thermo Fisher ScientificER1011
CellTiter 96 aqueous one solution cell proliferation assayPromegaG3580
CentrifugeEppendorf5424BK745380
ColchicineSinopharm Chemical Reagent61001563
Confocal scanning microscopeLeicaLeica TCS SP8
CoverslipCITOTEST80344-1220
DAPIBeyotimeC1006
DH5α competent cellsSangon Biotech (Shanghai)B528413
DL2000 DNA markerTaKaRa3427A
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)GibcoC11995500BT
Endo-free plasmid mini kit figure-materials-4202OmegaD6950
Ezup Column Animal Genomic DNA Purification KitSangon Biotech (Shanghai)B518251
Fetal bovine serumZhejiang Tianhang Biotechnology11011-8611
Gentian violetSinopharm Chemical Reagent71019944Dissolve in PBS to prepare 0.1% gentian violet/PBS.
Giemsa staining solutionSinopharm Chemical Reagent71020260
GraphPad Prism version 8.0 softwareGraphPadwww.graphpad.comStatistical analysis.
GSK923295MedChemExpressHY-10299
HeLa cell lineATCCCCL-2
Humidified incubatorHeal ForceHF90/HF240
Image J softwareNational Institutes of Healthhttps://imagej.nih.gov/ij/Image processing and analysis.
Inverted microscopeNanjing Jiangnan Novel OpticsXD-202
LB agar powderSangon Biotech (Shanghai)A507003
Lipo6000 transfection reagentBeyotimeC0526
Nikon Ti-S2 microscopeNikonTi-S2
Opti-MEM reduced serum mediumGibco31985070
ParaformaldehydeSinopharm Chemical Reagent80096618Dissolve in PBS to prepare 4% paraformaldehyde/PBS.
Penicillin-streptomycin solutionHyCloneSV30010
SanPrep column DNA gel extraction kitSangon Biotech (Shanghai)B518131
SanPrep column plasmid mini-preps kitSangon Biotech (Shanghai)B518191
T4 DNA ligaseTaKaRa2011A
T4 polynucleotide kinaseTaKaRa2021A
TaKaRa Ex TaqTaKaRaRR001A
Triton X-100Sinopharm Chemical Reagent30188928Dissolve in PBS to prepare 0.25% Triton X-100/PBS.
Tween 20Sinopharm Chemical Reagent30189328Dissolve in PBS to prepare 0.1% Tween 20/PBS.

Referencias

  1. Jiang, W., Bikard, D., Cox, D., Zhang, F., Marraffini, L. A. RNA-guided editing of bacterial genomes using CRISPR-Cas systems. Nature Biotechnology. 31 (3), 233-239 (2013).
  2. Bibikova, M., Beumer, K., Trautman, J. K., Carroll, D.

Reimpresiones y Permisos

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Biolog aN mero 196Knockout de CENP EProte na E asociada al centr meroKinesinaCaptura de cinetocoro microt buloAlineaci n cromos micaPunto de control de ensamblaje del husoC lulas HeLaCribado basado en el fenotipoDesalineaci n cromos micaPunto de control mit tico BUB1 Serina treonina quinasa B BubR1Defectos mit ticos

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