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Cet article rapporte la construction de cellules knock-out de la protéine E associée au centromère (CENP-E) à l’aide du système CRISPR/Cas9 et de trois stratégies de criblage basées sur le phénotype. Nous avons utilisé la lignée cellulaire knock-out CENP-E pour établir une nouvelle approche visant à valider la spécificité et la toxicité des inhibiteurs de CENP-E, ce qui est utile pour le développement de médicaments et la recherche biologique.
Le système CRISPR (clustered regularly interspaced short palindromic repeats)/Cas9 est apparu comme un outil puissant pour une édition de gènes précise et efficace dans une variété d’organismes. La protéine E associée au centromère (CENP-E) est une kinésine dirigée vers l’extrémité positive nécessaire à la capture des kinétochores-microtubules, à l’alignement des chromosomes et au point de contrôle de l’assemblage du fuseau. Bien que les fonctions cellulaires des protéines CENP-E aient été bien étudiées, il a été difficile d’étudier les fonctions directes des protéines CENP-E à l’aide de protocoles traditionnels, car l’ablation de CENP-E conduit généralement à l’activation du point de contrôle de l’assemblage du fuseau, à l’arrêt du cycle cellulaire et à la mort cellulaire. Dans cette étude, nous avons complètement éliminé le gène CENP-E dans les cellules HeLa humaines et réussi à générer les cellules CENP-E-/- HeLa à l’aide du système CRISPR/Cas9.
Trois stratégies de criblage optimisées basées sur le phénotype ont été établies, y compris le criblage des colonies cellulaires, les phénotypes d’alignement des chromosomes et les intensités fluorescentes des protéines CENP-E, qui améliorent efficacement l’efficacité du criblage et le taux de réussite expérimentale des cellules knock-out CENP-E . Il est important de noter que la délétion CENP-E entraîne un désalignement des chromosomes, la localisation anormale des protéines sérine/thréonine kinase B (BubR1) du point de contrôle mitotique BUB1 et des défauts mitotiques. De plus, nous avons utilisé le modèle de cellules HeLa knock-out CENP-E pour développer une méthode d’identification des inhibiteurs spécifiques de CENP-E.
Dans cette étude, une approche utile pour valider la spécificité et la toxicité des inhibiteurs de CENP-E a été établie. De plus, cet article présente les protocoles d’édition du génome CENP-E à l’aide du système CRISPR/Cas9, qui pourrait être un outil puissant pour étudier les mécanismes de CENP-E dans la division cellulaire. De plus, la lignée cellulaire knock-out CENP-E contribuerait à la découverte et à la validation des inhibiteurs de CENP-E, qui ont des implications importantes pour le développement de médicaments antitumoraux, les études des mécanismes de division cellulaire en biologie cellulaire et les applications cliniques.
L’édition du génome par ingénierie médie les modifications ciblées des gènes dans une variété de cellules et d’organismes. Chez les eucaryotes, la mutagénèse spécifique au site peut être introduite par l’application de nucléases spécifiques à la séquence qui stimulent la recombinaison homologue de l’ADNcible 1. Ces dernières années, plusieurs technologies d’édition du génome, notamment les nucléases à doigts de zinc (ZFN)2,3, les nucléases effectrices de type activateur de transcription (TALEN)4,5 et les méganucléases à tête chercheuse
1. Construction des vecteurs d’inactivation du gène CRISPR/Cas9
Les cellules CENP-E-/- HeLa ont été générées avec succès à l’aide du système CRISPR/Cas9 (Figure 1). La chronologie et les étapes expérimentales critiques de cette méthode sont illustrées à la figure 1. Tout d’abord, nous avons conçu et synthétisé les sgRNA spécifiques de CENP-E, recuit et ligaturé les sgRNA dans le plasmide pX458, transfecté le plasmide dans des cellules HeLa et les avons cultivés pendant 48 .......
La kinésine-7 CENP-E est un régulateur clé de l’alignement des chromosomes et du point de contrôle de l’assemblage du fuseau pendant la division cellulaire 17,19,20. La délétion génétique de CENP-E entraîne généralement l’activation du point de contrôle de l’assemblage du fuseau, l’arrêt du cycle cellulaire et la mort cellulaire 27,29,51,52.
Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.
Nous remercions tous les membres du laboratoire de cytosquelette de l’Université médicale du Fujian pour leurs discussions utiles. Nous remercions Jun-Jin Lin, Zhi-Hong Huang, Ling Lin, Li-Li Pang, Lin-Ying Zhou, Xi Lin et Min-Xia Wu du Centre de services technologiques publics de l’Université médicale du Fujian pour leur assistance technique. Nous remercions Si-Yi Zheng, Ying Lin et Qi Ke du Centre d’enseignement expérimental des sciences médicales fondamentales de l’Université médicale du Fujian pour leur soutien. Cette étude a été soutenue par les subventions suivantes : Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (numéro de subvention 82001608 et 82101678....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.25% Trypsin-EDTA | Gibco | 25200056 | |
1.5 mL centrifuge tube | Axygen | MCT-150-C | |
24-well plate | Corning | 3524 | |
4S Gelred, 10,000x in water | Sangon Biotech (Shanghai) | A616697 | |
50 mL centrifuge tube | Corning | 430828 | |
6 cm Petri dish | Corning | 430166 | |
95% ethanol | Sinopharm Chemical Reagent | 10009164 | |
96-well plate | Corning | 3599 | |
Acetic acid | Sinopharm Chemical Reagent | 10000218 | Dissolve in H2O to prepare a 10% working solution. |
Agarose | Sangon Biotech (Shanghai) | A620014 | |
Alexa Fluor 488-labeled Goat Anti-Mouse IgG(H+L) | Beyotime | A0428 | For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:500 dilution. |
Alexa Fluor 488-labeled Goat Anti-Rabbit IgG(H+L) | Beyotime | A0423 | For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:500 dilution. |
Alexa Fluor 555-labeled Donkey Anti-Mouse IgG(H+L) | Beyotime | A0460 | For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:500 dilution. |
Anhydrous ethanol | Sinopharm Chemical Reagent | 100092690 | |
Anti-BubR1 rabbit monoclonal antibody | Abcam | ab254326 | For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:100 dilution |
Anti-CENP-B mouse monoclonal antibody | Santa Cruz Biotechnology | sc-376392 | For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:50 dilution. |
Anti-CENP-E rabbit monoclonal antibody | Abcam | ab133583 | For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:100 dilution. |
Anti-fade mounting medium | Beyotime | P0131 | Slowing down the quenching of fluorescent signals. |
Anti-α-tubulin mouse monoclonal antibody | Abcam | ab7291 | For immunofluorescence. Dissolve in 1% BSA/PBST. 1:100 dilution. |
Biotek Epoch Microplate Spectrophotometer | Biotek Instruments | Biotek Epoch | |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Sinopharm Chemical Reagent | 69003435 | |
BpiI (BbsI) | Thermo Fisher Scientific | ER1011 | |
CellTiter 96 aqueous one solution cell proliferation assay | Promega | G3580 | |
Centrifuge | Eppendorf | 5424BK745380 | |
Colchicine | Sinopharm Chemical Reagent | 61001563 | |
Confocal scanning microscope | Leica | Leica TCS SP8 | |
Coverslip | CITOTEST | 80344-1220 | |
DAPI | Beyotime | C1006 | |
DH5α competent cells | Sangon Biotech (Shanghai) | B528413 | |
DL2000 DNA marker | TaKaRa | 3427A | |
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) | Gibco | C11995500BT | |
Endo-free plasmid mini kit ![]() | Omega | D6950 | |
Ezup Column Animal Genomic DNA Purification Kit | Sangon Biotech (Shanghai) | B518251 | |
Fetal bovine serum | Zhejiang Tianhang Biotechnology | 11011-8611 | |
Gentian violet | Sinopharm Chemical Reagent | 71019944 | Dissolve in PBS to prepare 0.1% gentian violet/PBS. |
Giemsa staining solution | Sinopharm Chemical Reagent | 71020260 | |
GraphPad Prism version 8.0 software | GraphPad | www.graphpad.com | Statistical analysis. |
GSK923295 | MedChemExpress | HY-10299 | |
HeLa cell line | ATCC | CCL-2 | |
Humidified incubator | Heal Force | HF90/HF240 | |
Image J software | National Institutes of Health | https://imagej.nih.gov/ij/ | Image processing and analysis. |
Inverted microscope | Nanjing Jiangnan Novel Optics | XD-202 | |
LB agar powder | Sangon Biotech (Shanghai) | A507003 | |
Lipo6000 transfection reagent | Beyotime | C0526 | |
Nikon Ti-S2 microscope | Nikon | Ti-S2 | |
Opti-MEM reduced serum medium | Gibco | 31985070 | |
Paraformaldehyde | Sinopharm Chemical Reagent | 80096618 | Dissolve in PBS to prepare 4% paraformaldehyde/PBS. |
Penicillin-streptomycin solution | HyClone | SV30010 | |
SanPrep column DNA gel extraction kit | Sangon Biotech (Shanghai) | B518131 | |
SanPrep column plasmid mini-preps kit | Sangon Biotech (Shanghai) | B518191 | |
T4 DNA ligase | TaKaRa | 2011A | |
T4 polynucleotide kinase | TaKaRa | 2021A | |
TaKaRa Ex Taq | TaKaRa | RR001A | |
Triton X-100 | Sinopharm Chemical Reagent | 30188928 | Dissolve in PBS to prepare 0.25% Triton X-100/PBS. |
Tween 20 | Sinopharm Chemical Reagent | 30189328 | Dissolve in PBS to prepare 0.1% Tween 20/PBS. |
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