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En este artículo

  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados Representativos
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

El artículo describe los métodos y reactivos necesarios para realizar la hibridación in situ de fluorescencia in situ de ARN de reacción en cadena de hibridación (HCR RNA WM-FISH) para revelar información sobre la resolución espacial y celular de los genes receptores quimiosensoriales en la antena del mosquito y el palpo maxilar.

Resumen

Los mosquitos son vectores eficaces de enfermedades mortales y pueden navegar por su entorno químico utilizando receptores quimiosensoriales expresados en sus apéndices olfativos. Comprender cómo se organizan espacialmente los receptores quimiosensoriales en los apéndices olfativos periféricos puede ofrecer información sobre cómo se codifica el olor en el sistema olfativo de los mosquitos e informar nuevas formas de combatir la propagación de enfermedades transmitidas por mosquitos. La aparición de la hibridación in situ de fluorescencia in situ de ARN de reacción en cadena de hibridación de tercera generación (HCR RNA WM-FISH) permite el mapeo espacial y el perfil de expresión simultánea de múltiples genes quimiosensoriales. Aquí, describimos un enfoque paso a paso para realizar HCR RNA WM-FISH en la antena del mosquito Anopheles y el palpo maxilar. Investigamos la sensibilidad de esta técnica examinando el perfil de expresión de los receptores olfativos ionotrópicos. Preguntamos si la técnica HCR WM-FISH descrita era adecuada para estudios multiplexados mediante la conexión de sondas de ARN a tres fluoróforos espectralmente distintos. Los resultados proporcionaron evidencia de que HCR RNA WM-FISH es robustamente sensible para detectar simultáneamente múltiples genes quimiosensoriales en la antena y los apéndices olfativos palpes maxilares. Investigaciones posteriores atestiguan la idoneidad de HCR WM-FISH para el perfil de coexpresión de dianas de ARN dobles y triples. Esta técnica, cuando se aplica con modificaciones, podría ser adaptable para localizar genes de interés en los tejidos olfativos de otras especies de insectos o en otros apéndices.

Introducción

Los mosquitos vectores como Anopheles gambiae dependen de un rico repertorio de genes quimiosensoriales expresados en sus apéndices olfativos periféricos para prosperar en un mundo químico complejo e identificar olores relevantes para el comportamiento que emanan de huéspedes humanos, detectar fuentes de néctar ylocalizar sitios de oviposición. La antena del mosquito y el palpo maxilar están enriquecidos con genes quimiosensoriales que impulsan la detección de olores en estos apéndices olfativos. Tres clases principales de canales iónicos activados por ligandos impulsan la detección de olores en los apéndices olfativos de los mosquitos....

Protocolo

1. Consideraciones y preparación de los materiales

  1. Decida si el montaje completo o la criosección de tejido serán apropiados. Este protocolo está optimizado para la obtención de imágenes in situ de montaje completo de ARN en la antena del mosquito Anopheles y el palpo maxilar sin crioseccionamiento. Si las muestras tienen un grosor superior a 5 mm, se recomienda crioseccionar para permitir la penetración de la sonda.
  2. Identificar los genes de interés y copiar las secuencias, incluidos los intrones y los exones, de una base de datos adecuada. Transcribir la secuencia génica en ARN para su síntesis.
  3. Determi....

Resultados Representativos

Detección robusta de genes quimiosensoriales en la antena de Anopheles
Investigamos la sensibilidad del método HCR FISH (Figura 1) para detectar la expresión de receptores quimiosensoriales en tejidos olfativos de mosquitos. Guiados por los datos de transcripción de ARN informados anteriormente en la antena del mosquito hembra de Anopheles, generamos sondas para apuntar a una variedad de IR. Los valores promedio de transcripción de cuatro estudios i.......

Discusión

La tercera generación de reacción en cadena de hibridación (HCR) destaca por su sensibilidad y robustez para visualizar varias dianas de ARN8. HCR WM-FISH se ha utilizado con éxito en embriones de Drosophila, pollo, ratones y pez cebra, así como en larvas de nematodos y pez cebra 10,16,17. Las antenas de los mosquitos y los palpos maxilares suelen ser propensos a una alta autofluorescencia y.......

Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos a Margo Herre y al laboratorio de Leslie Vosshall por compartir su protocolo de hibridación in situ para apéndices olfativos de Aedes aegypti . Este trabajo fue apoyado por subvenciones de los Institutos Nacionales de Salud a C.J.P. (NIAID R01Al137078), una beca Hanna Gray del HHMI a J.I.R, una beca Johns Hopkins Postdoctoral Accelerator Award a J.I.R, y una beca postdoctoral del Instituto de Investigación de la Malaria Johns Hopkins a J.I.R. Agradecemos al Instituto de Investigación de la Malaria Johns Hopkins y a Bloomberg Philanthropies por su apoyo.

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Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
Amplification bufferMolecular InstrumentsMolecular Instruments, Inc. | In Situ Hybridization + Immunofluorescence50 mL
Calcium Chloride (CaCl2) 1M Sigma-Aldrich 21115-100ML
ChitinaseSigma-AldrichC6137-50UN
ChymotrypsinSigma-AldrichCHY5S-10VL 
Dimethyl sulfoxide (DMSO)Sigma-Aldrich472301
Eppendorf tubeVWR20901-5511.5 mL
ForcepsDumont11251Number 5
Gel loading tipCostar48531-200 µL tip
Hairpins Molecular InstrumentsMolecular Instruments, Inc. | In Situ Hybridization + Immunofluorescenceh1 and h2 initiator splits
HEPES (1M)Sigma-AldrichH0887
IR25a probeMolecular InstrumentsProbe Set ID: PRK149 AGAP010272
IR41t.1 probeMolecular Instruments Probe Set ID: PRK978AGAP004432
IR64a probeMolecular InstrumentsProbe Set ID: PRK700 AGAP004923
IR75d probeMolecular InstrumentsProbe Set ID: PRK976AGAP004969
IR76b probeMolecular InstrumentsProbe Set ID: PRI998AGAP011968
IR7t probeMolecular InstrumentsProbe Set ID: PRL355AGAP002763
IR8a probeMolecular InstrumentsProbe Set ID: PRK150AGAP010411
LoBind TubesVWR80077-2360.5 mL DNA/RNA LoBind Tubes
Magnessium Chloride (MgCl2) 1MThermo FisherAM9530G
MethanolFisher A412-500
Nuclease-free waterThermo Fisher43-879-36
NutatorDenville ScientificModel 1353-D Mini rocker
Orco probeMolecular InstrumentsProbe set ID PRD954AGAP002560
Paraformaldehyde (20% )Electron Microscopy Services 15713-S
Phosphate Buffered Saline (10X PBS)Thermo FisherAM9625
Probe hybridization bufferMolecular Instrumentshttps://www.molecularinstruments.com/50 mL
Probe wash bufferMolecular InstrumentsMolecular Instruments, Inc. | In Situ Hybridization + Immunofluorescence100 mL
Proteinase-KThermo FisherAM2548
Saline-Sodium Citrate (SSC) 20x Thermo Fisher15-557-044
SlowFade DiamondThermo Fisher S36972mounting solution
Sodium Chloride (NaCl) 5MInvitrogenAM9760G
Triton X-100  (10%)Sigma-Aldrich 93443
Tween-20 (10% )TeknovaT0027
Watch glassCarolina742300 1 5/8" square; transparent

Referencias

  1. Konopka, J. K., et al. Olfaction in Anopheles mosquitoes. Chem Senses. 46, (2021).
  2. Raji, J. I., Potter, C. J. Chemosensory ionotropic receptors in human host-seeking mosquitoes. Curr Opin Insect Sci. 54, 1....

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