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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

TrackMate Analysis of Calcium Imaging (TACI) est un plugin ImageJ open-source pour l’analyse 3D de l’imagerie calcique qui examine le mouvement sur l’axe z et identifie la valeur maximale de chaque pile z pour représenter l’intensité d’une cellule au point de temps correspondant. Il peut séparer les neurones qui se chevauchent dans la direction latérale (x / y) mais sur des plans z différents.

Résumé

La recherche en neurosciences a évolué pour utiliser des outils complexes d’imagerie et de calcul pour extraire des informations complètes à partir d’ensembles de données. L’imagerie calcique est une technique largement utilisée qui nécessite un logiciel sophistiqué pour obtenir des résultats fiables, mais de nombreux laboratoires ont du mal à adopter des méthodes de calcul lors de la mise à jour des protocoles pour répondre aux normes modernes. Des difficultés surviennent en raison d’un manque de connaissances en programmation et de paywalls pour les logiciels. De plus, les cellules d’intérêt affichent des mouvements dans toutes les directions pendant l’imagerie calcique. De nombreuses approches ont été développées pour corriger le mouvement dans la direction latérale (x/y).

Ce document décrit un flux de travail utilisant un nouveau plug-in ImageJ, TrackMate Analysis of Calcium Imaging (TACI), pour examiner le mouvement sur l’axe z en imagerie calcique 3D. Ce logiciel identifie la valeur de fluorescence maximale de toutes les positions z dans lesquelles un neurone apparaît et l’utilise pour représenter l’intensité du neurone à la position t correspondante. Par conséquent, cet outil peut séparer les neurones qui se chevauchent dans la direction latérale (x / y) mais apparaissent sur des plans z distincts. En tant que plugin ImageJ, TACI est un outil de calcul convivial et open-source pour l’analyse d’imagerie calcique 3D. Nous avons validé ce flux de travail en utilisant des neurones thermosensibles aux larves de mouches qui affichaient des mouvements dans toutes les directions pendant la fluctuation de température et un ensemble de données d’imagerie calcique 3D acquises à partir du cerveau de la mouche.

Introduction

Le taux de calcium intracellulaire est un marqueur précis de l’excitabilité neuronale. L’imagerie calcique mesure les changements dans le calcium intracellulaire pour comprendre l’activité neuronale1. Les études en neurosciences ont de plus en plus utilisé cette méthode en raison du développement de techniques de mesure de la concentration intracellulaire de calcium, y compris des indicateurs de calcium génétiquement codés (GECI), tels que GCaMP2,3, qui peuvent être exprimés de manière non invasive dans des ensembles spécifiques de neurones par des approches génétiques. La baisse des co....

Protocole

1. Imagerie calcique

  1. Préparation des larves de mouches
    NOTE: Les mouches et les larves sont maintenues à 25 ° C sous un cycle lumière:obscurité de 12 h:12 h.
    1. Anesthésiez les mouches avec du CO2. Trier 20 à 45 mâles et 20 à 45 femelles dans chaque flacon de mouches et leur donner au moins 24 h à 48 h pour se remettre de l’exposition au CO2 .
      REMARQUE : L’exposition des mouches au CO2 devrait durer le moins longtemps possible.
    2. Pour synchroniser l’âge des larves, tapotez les mouches dans de nouveaux flacons contenant des granules de levure et laissez-leur pondre 4 à 8 heures pour pondre d....

Résultats

Flux de travail d’analyse d’imagerie calcique 3D
Dans cette étude, nous avons développé un nouveau plugin ImageJ, TACI, et décrit un flux de travail pour suivre la dérive z et analyser l’imagerie calcique 3D qui identifie les réponses des cellules individuelles apparaissant dans plusieurs positions z (Figure 1). Cet outil a quatre fonctions : RENOMMER, ORGANISER, EXTRAIRE et FUSIONNER. Tout d?.......

Discussion

Cette étude a développé un nouveau plugin ImageJ, TACI, et décrit un flux de travail analysant l’imagerie calcique 3D. De nombreux outils actuellement disponibles se concentrent sur la correction du mouvement x/y, bien que le mouvement sur l’axe z doive également être explicitement diagnostiqué ou corrigé6. Lors de l’acquisition d’images dans un organisme vivant, le mouvement sur l’axe z est inévitable même lorsque l’organisme est immobilisé, et certains stimuli, tels que le.......

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Un Zeiss LSM 880 dans le Fralin Imaging Center a été utilisé pour collecter les données d’imagerie calcique. Nous remercions le Dr Michelle L Olsen et Yuhang Pan pour leur aide avec le logiciel IMARIS. Nous remercions le Dr Lenwood S. Heath pour ses commentaires constructifs sur le manuscrit et Steven Giavasis pour ses commentaires sur le fichier GitHub README. Ce travail a été soutenu par NIH R21MH122987 (https://www.nimh.nih.gov/index.shtml) et NIH R01GM140130 (https://www.nigms.nih.gov/) à L.N. Les bailleurs de fonds n’ont joué aucun rôle dans la conception de l’étude, la collecte et l’analyse des données, la décision de publier ou la préparation du manuscrit.

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matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
Blunt Fill NeedelBD303129
Calcium chloride dihydrateFisher Scientific 10035-04-8Fly food ingredient
Carbon dioxideAirgasUN1013Size 200 High Pressure Steel Cylinder
CO2 bubbler kitGenesee59-180
Confocal microscope LSM880Zeiss4109002107876000An inverted Axio Observer Z1, equipped with 5 lasers, 2 standard PMT detectors, 32-channel GaAsP dectectors, an Airyscan detector, and Definite Focus.2.
DAQami softwareMeasurement Computing
DextroseGenesee62-113Fly food ingredient
Drosophila AgarGenesee66-111Fly food ingredient
EthanolDecon Labs, Inc.64-17-5Fly food ingredient
Fly line: Ir21a-Gal4Dr. Paul Garrity labA kind gift
Fly line: Ir21a-Gal80Dr. Lina Ni lab
Fly line: Ir68a-Gal4Dr. Aravinthan DT Samuel labA kind gift
Fly line: Ir93a-Gal4Dr. Paul Garrity labA kind gift
Fly line: UAS-GCaMP6Bloomington Drosophila Stock Center42750
FlypadGenesee59-114
General purpose forged brass regulatorGentecG152
Gibco PBS pH 7.4 (1x)Thermo Fisher Scientific10010-031
Green Drosophila tubingGenesee59-124
Heat transfer compoundMG Chemicals860-60G
HeatsinkDigi-Key ElectronicsATS2193-NDResize to 12.9 x 5.5 cm
IlluminatorAmScopeLED-6W
Inactive Dry YeastGenesee62-108Fly food ingredient
IncubatorPervicalDR-41VLLight: dark cycle: 12h:12h; temperature: 25 °C; humidity: 40-50% RH.
Methyl-4-hydroxybenzoateThermo Scientific126965000Fly food ingrediete
Micro cover glassVWR 48382-12622 x 40 mm
Microscope slidesFisher Scientific 12-544-225 x 75 x 1.0 mm
Nail polishKleancolor
Narrow Drosophila vialsGenesee32-113RL
Objective Zeiss420852-9871-000LD LCI Plan-Apochromat 25x/0.8 Imm Corr DIC M27
Peltier cooling moduleTE TechnologyTE-127-1.0-0.830 x 30 mm
PlugsGenesee49-102
Power SupplyCircuit SpecialistsCSI1802X10 volt DC 2.0 amp linear bench power supply
Princeton Artist Brush NepturePrinceton Artist Brush Co.Series 4750, size 2
Sodium potassium L-tartrate tetrahydrateThermo Scientific033241-36Fly food ingredient
Stage insert Wienecke and Sinske432339-9030-000
Stereo MicroscopeOlympusSZ61Any stereo microscope works
T-FittingGenesee59-123
Thermocouple data acquisition deviceMeasurement ComputingUSB-2001-TCSingle channel
Thermocouple microprobePhysitempIT-24P 
Yellow CornmealGenesee62-101Fly food ingredient
Z-axis piezo stageWienecke and Sinske432339-9000-000

Références

  1. Grienberger, C., Konnerth, A. Imaging calcium in neurons. Neuron. 73 (5), 862-885 (2012).
  2. Nakai, J., Ohkura, M., Imoto, K. A high signal-to-noise Ca(2+) probe composed of a single green fluorescent protein. N....

Réimpressions et Autorisations

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Neurosciencesnum ro 190

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