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* Ces auteurs ont contribué à parts égales
Ici, nous décrivons l’isolement, la culture et l’induction adipogénique de préadipocytes dérivés de la fraction vasculaire stromale à partir de tissu adipeux périaortique de souris, permettant l’étude de la fonction du tissu adipeux périvasculaire et de sa relation avec les cellules vasculaires.
Le tissu adipeux périvasculaire (TVAP) est un dépôt de tissu adipeux qui entoure les vaisseaux sanguins et présente les phénotypes d’adipocytes blancs, beiges et bruns. Des découvertes récentes ont mis en lumière le rôle central de la PVAT dans la régulation de l’homéostasie vasculaire et la participation à la pathogenèse des maladies cardiovasculaires. Une compréhension globale des propriétés et de la réglementation de la PVAT est d’une grande importance pour le développement de thérapies futures. Les cultures primaires d’adipocytes périaortiques sont précieuses pour étudier la fonction PVAT et la diaphonie entre les adipocytes périaortiques et les cellules vasculaires. Cet article présente un protocole économique et réalisable pour l’isolement, la culture et l’induction adipogénique de préadipocytes dérivés de la fraction vasculaire stromale à partir de tissu adipeux périaortique de souris, qui peut être utile pour la modélisation de l’adipogenèse ou de la lipogenèse in vitro. Le protocole décrit le traitement tissulaire et la différenciation cellulaire pour la culture des adipocytes périaortiques à partir de jeunes souris. Ce protocole constituera la pierre angulaire technologique de la paillasse pour l’étude de la fonction PVAT.
On pense que le tissu adipeux périvasculaire (TVAP), une structure périvasculaire composée d’un mélange d’adipocytes matures et d’une fraction vasculaire stromale (SVF), interagit avec la paroi vasculaire adjacente via son sécrétome paracriné. En tant que régulateur essentiel de l’homéostasie vasculaire, le dysfonctionnement de la PVAT est impliqué dans la pathogenèse des maladies cardiovasculaires 2,3,4. La SVF du tissu adipocytaire est constituée de plusieurs populations cellulaires attendues, notamment des cellules endothéliales, des cellules immuni....
Les protocoles pour animaux ont été approuvés par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux de l’hôpital thoracique de Shanghai, affilié à la faculté de médecine de l’Université Jiao Tong de Shanghai (numéro d’approbation : KS23010) et étaient conformes aux réglementations éthiques pertinentes. Les souris mâles et femelles C57BL/6 âgées de 4 à 8 semaines sont à privilégier pour cette expérience.
1. Préparation des outils chirurgicaux, des tampons et des milieux de culture
À l’aide de ce protocole décrit ci-dessus, nous avons soigneusement isolé les PVAT entourant les aortes thoraciques de souris (Figure 1A-D). Après avoir lavé et haché les PVAT en petits morceaux à l’aide de ciseaux stériles (Figure 1E,F), des fragments de tissu ont été digérés dans une solution de digestion contenant de la collagénase de type 1 (1 mg/mL) et de la dispase II (4 mg/mL) et incubés à 37 °C sur un agitateur pe.......
Nous proposons une approche pratique et réalisable pour l’isolement et l’induction adipogénique de préadipocytes dérivés de SVF à partir de tissu adipeux périaortique de souris. Les avantages de ce protocole sont qu’il est simple et économique. Un nombre adéquat de souris est essentiel pour un isolement réussi, car un tissu insuffisant peut entraîner une faible densité de SVF et un mauvais état de croissance, affectant finalement l’efficacité lipogénique. De plus, l’âge de la souris est un facte.......
Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts, financier ou autre, à déclarer.
Ces travaux ont été soutenus par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (82130012 et 81830010) et les projets Nurture pour la recherche fondamentale de l’hôpital thoracique de Shanghai (numéro de subvention : 2022YNJCQ03).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.2 μm syringe filters | PALL | 4612 | |
12-well plate | Labselect | 11210 | |
15 mL centrifuge tube | Labserv | 310109003 | |
3,3',5-triiodo-L-thyronine (T3) | Sigma-Aldrich | T-2877 | 1 nM |
50 mL centrifuge tube | Labselect | CT-002-50A | |
anti-adiponectin | Abcam | ab22554 | 1:1,000 working concentration |
anti-COX IV | CST | 4850 | 1:1,000 working concentration |
anti-FABP4 | CST | 2120 | 1:1,000 working concentration |
anti-PGC1α | Abcam | ab191838 | 1:1,000 working concentration |
anti-PPARγ | Invitrogen | MA5-14889 | 1:1,000 working concentration |
anti-UCP1 | Abcam | ab10983 | 1:1,000 working concentration |
anti-α-Actinin | CST | 6487 | 1:1,000 working concentration |
BSA | Beyotime | ST023-200g | 1% |
C57BL/6 mice aged 4-8 weeks of both sexes | Shanghai Model Organisms Center, Inc. | ||
Cell Strainer 70 µm, nylon | Falcon | 352350 | |
Collagen from calf skin | Sigma-Aldrich | C8919 | |
Collagenase, Type 1 | Worthington | LS004196 | 1 mg/mL |
Dexamethasone | Sigma-Aldrich | D1756 | 1 μM |
Dispase II | Sigma-Aldrich | D4693-1G | 4 mg/mL |
Fetal bovine serum | Gibco | 16000-044 | 10% |
HEPES | Sigma-Aldrich | H4034-25G | 20 mM |
High glucose DMEM | Hyclone | SH30022.01 | |
IBMX | Sigma-Aldrich | I7018 | 0.5 mM |
Incubator with orbital shaker | Shanghai longyue Instrument Eruipment Co.,Ltd. | LYZ-103B | |
Insulin (cattle) | Sigma-Aldrich | 11070-73-8 | 1 μM |
Isoflurane | RWD | R510-22-10 | |
Krebs-Ringer's Solution | Pricella | PB180347 | protect from light |
Microsurgical forceps | Beyotime | FS233 | |
Microsurgical scissor | Beyotime | FS217 | |
Oil Red O | Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd | A600395-0050 | |
PBS (Phosphate-buffered saline) | Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd | B548117-0500 | |
Penicillin-Streptomycin | Gibco | 15140122 | |
Peroxidase AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG (H+L) | Jackson ImmunoResearch | 115-035-146 | 1:5,000 working concentration |
Peroxidase AffiniPure Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) | Jackson ImmunoResearch | 111-035-144 | 1:5,000 working concentration |
Rosiglitazone | Sigma-Aldrich | R2408 | 1 μM |
Standard forceps | Beyotime | FS225 | |
Surgical scissor | Beyotime | FS001 |
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