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Ce protocole décrit l’établissement d’un modèle tridimensionnel (3D) ex vivo de l’interaction cellule-épiploon cancéreux. Le modèle fournit une plate-forme pour élucider les mécanismes pro-tumoraux dans la niche adipeuse et pour tester de nouvelles thérapies.
Le cancer de l’ovaire est la tumeur maligne gynécologique la plus mortelle. L’épiploon joue un rôle clé en fournissant un microenvironnement favorable aux cellules cancéreuses de l’ovaire métastatiques ainsi que des signaux immunomodulateurs qui permettent la tolérance tumorale. Cependant, nous disposons de modèles limités qui imitent étroitement l’interaction entre les cellules cancéreuses de l’ovaire et les tissus riches en tissu adipeux. Pour mieux comprendre les mécanismes cellulaires et moléculaires par lesquels l’épiploon fournit un microenvironnement pro-tumoral, nous avons développé un modèle 3D ex vivo unique de l’interaction cellule-épiploon cancéreux. À l’aide de l’épiploon humain, nous sommes en mesure de cultiver des cellules cancéreuses de l’ovaire dans ce microenvironnement riche en graisse et de surveiller les facteurs responsables de la croissance tumorale et de la régulation immunitaire. En plus de fournir une plate-forme pour l’étude de ce microenvironnement tumoral riche en graisse, le modèle fournit une excellente plate-forme pour le développement et l’évaluation de nouvelles approches thérapeutiques pour cibler les cellules cancéreuses métastatiques dans cette niche. Le modèle proposé est facile à générer, peu coûteux et applicable aux investigations translationnelles.
Le cancer de l’ovaire est la tumeur maligne gynécologique la plus mortelle dans le monde1. Le risque de développer ce cancer au cours de la vie est d’environ 1 sur 70, l’âge médian du diagnostic étant de 63 ans2. Les tumeurs malignes primitives de l’ovaire sont classées histologiquement comme épithéliales ou non épithéliales. Les cancers épithéliaux de l’ovaire (COE) représentent plus de 90 % des tumeurs, et le sous-type le plus courant est le carcinome séreux de haut grade (HGSC), qui représente environ 70 à 80 % des COE. À l’heure actuelle, il n’existe aucune méthode de dépistage efficace pour détecter la maladie à un ....
Le protocole de recherche suivant a été examiné et approuvé par le Wayne State University Institutional Review Board (IRB). Le consentement éclairé de tous les patients a été obtenu avant la chirurgie. La figure 1 illustre les trois étapes générales de ce protocole.
1. Préparation du tissu de l’épiploon humain
L’établissement réussi de cellules cancéreuses de l’ovaire dans les échantillons d’épiploon était évident vers le 14e jour (figure 3A-C). Au moins 24 répétitions ont été préparées et injectées par échantillon prélevé pour permettre d’autres expériences. La croissance tumorale a été surveillée par la prise d’images fluorescentes (Figure 3D,E). Les images devaient être interprétée.......
À l’aide de ce protocole, un modèle préclinique de carcinose péritonéale pour le cancer de l’ovaire a été développé en utilisant une combinaison de techniques de base in vitro et ex vivo. Une croissance tumorale progressive a été observée au cours des 50 jours de co-culture après l’ensemencement d’échantillons d’épiploon avec des cellules cancéreuses de l’ovaire humaines mCherry+ OCSC1-F2. Cette méthode a été développée et optimisée au cours de plusieurs essais expérim.......
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Cette étude est financée en partie par la Janet Burros Memorial Foundation. Nous remercions les patientes et le service d’oncologie gynécologique de l’Institut du cancer Karmanos pour la collecte d’échantillons d’épiploon. Nous remercions également la biobanque et le noyau des sciences corrélatives de l’Institut du cancer Karmanos pour la coordination du recrutement des patients et la préparation des lames de pathologie. Le noyau de biobanque et de sciences corrélatives est soutenu en partie par la subvention P30 du NIH Center CA22453 à l’Institut du cancer ....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.05% Trypsin-EDTA (1x) | Gibco | 25300054 | |
1 mL Insulin Syringe with 26 G detachable needle | BD | 329652 | |
10 mL Serological Pipets | CELLTREAT | 229010B | |
100 mm Tissue Culture Dish | Fisherbrand | FB012924 | |
15 mL Centrifuge Tube | CELLTREAT | 229411 | |
24 Well Cell Culture Plate | Costar | 3524 | |
50 mL Centrifuge Tube | CELLTREAT | 229421 | |
75 cm2 Tissue Culture Flask | CELLTREAT | 229341 | |
Corning Cell Counter | Corning | 9819000 | |
Cytation 5 imager | Biotek | ||
DMEM/F12 (1:1) (1x), +L-Glutamine, +2.438 g/L Sodium Bicarbonate | Gibco | 11320033 | |
Fetal Bovine Serum, Qualified | Gibco | 1043028 | |
Matrigel | Corning | 356230 | Basement membrane matrix |
No. 10 Stainless Steel Disposable Scalpel | Integra-Miltex | 4410 | |
Penicillin Streptomycin | Gibco | 15140122 | |
Phosphate Buffered Saline, pH 7.4 (1x) | Gibco | 10010023 | |
Revolve microscope | Echo |
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