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Cet article décrit un protocole de création d’un dispositif de culture microfluidique de vagin sur puce (Vagina Chip) qui permet d’étudier les interactions de l’hôte humain avec un microbiome vaginal vivant dans des conditions microaérophiles. Cette puce peut être utilisée comme outil pour étudier les maladies vaginales ainsi que pour développer et tester des contre-mesures thérapeutiques potentielles.
La santé des femmes, et en particulier les maladies de l’appareil reproducteur féminin, n’a pas reçu l’attention qu’elle mérite, même si un système reproducteur malsain peut entraîner des maladies potentiellement mortelles, l’infertilité ou des résultats défavorables pendant la grossesse. L’un des obstacles dans le domaine est qu’il y a eu une pénurie de modèles précliniques et expérimentaux qui imitent fidèlement la physiologie et la physiopathologie de la TRF. Les modèles in vitro et animaux actuels ne récapitulent pas entièrement les changements hormonaux, les conditions microaérobies et les interactions avec le microbiome vaginal. L’avènement de la technologie de culture microfluidique Organ-on-a-Chip (Organ Chip) qui peut imiter les interfaces tissu-tissu, la perfusion vasculaire, les flux de liquide interstitiel et le microenvironnement physique d’une sous-unité majeure d’organes humains peut potentiellement servir de solution à ce problème. Récemment, une puce vaginale humaine qui soutient la co-culture de consortiums microbiens vaginaux humains avec un épithélium vaginal humain primaire qui est également interfacé avec le stroma vaginal et connaît un flux de fluide dynamique a été développée. Cette puce reproduit les réponses physiologiques du vagin humain aux microbiomes sains et dysbiotiques. Un protocole détaillé pour la création de puces vaginales humaines a été décrit dans cet article.
Un microbiome vaginal dominé par Lactobacillus spp. qui aide à maintenir un microenvironnement acide joue un rôle important dans le maintien de la santé reproductive féminine1. Cependant, il peut parfois y avoir un changement dans la composition des communautés microbiennes qui composent le microbiome, ce qui entraîne une augmentation de la diversité des bactéries vaginales. Ces changements dysbiotiques, qui entraînent souvent le passage d’un état dominé par les Lactobacillus à un état dominé par des espèces bactériennes anaérobies plus diversifiées (par exemple, Gardnerella vaginalis), sont associés à diverses maladi....
Cette recherche a été réalisée dans le respect des directives institutionnelles pour l’utilisation de cellules humaines. Les cellules ont été obtenues commercialement (voir Tableau des matériaux). Toutes les étapes doivent être effectuées de manière aseptique dans une enceinte de biosécurité (ESB). Utilisez uniquement des pointes de pipette à filtre (ou à barrière) pour ce protocole.
1. Culture de cellules épithéliales vaginales humaines
Le vagin humain est tapissé d’un épithélium stratifié qui recouvre un stroma collagène riche en fibroblastes. Pour modéliser cela, une interface tissulaire a été créée en cultivant de l’épithélium vaginal humain primaire et des fibroblastes sur les côtés opposés d’une membrane poreuse commune au sein d’un dispositif de puce d’organe microfluidique à deux canaux. La formation de l’épithélium vaginal est surveillée à l’aide d’une imagerie microscopique à champ clair, qui révèle la for.......
Les modèles in vitro antérieurs du vagin humain ne reproduisent pas fidèlement les structures des tissus vaginaux, le flux de fluides et les interactions hôte-pathogène19,22. Les modèles animaux sont également limités par les variations inter-espèces du microbiome et les différences dans le cycle œstral ou menstruel19,22. Ce manuscrit décrit un protocole permettant de créer un modèl.......
Donald Ingber est fondateur, membre du conseil d’administration, président du conseil consultatif scientifique et actionnaire d’Emulate. Les autres auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts concurrents.
Cette recherche a été financée par la Fondation Bill et Melinda Gates (INV-035977) et le Wyss Institute for Biologically Inspired Engineering de l’Université Harvard. Nous remercions également Gwenn E. Merry, de l’Institut Wyss, pour l’édition de ce manuscrit. Le diagramme de la figure 1 a été créé avec BioRender.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.22 µm Steriflip | Millipore | SCGP00525 | To degas media |
2 channel chip | Emulate | BRK-S1-WER-24 | Part of the two-channel Chip kit |
200 μL barrier tips (or filter tips) | Thomas Scientific, SHARP | 1159M40 | Tips used for chip seeding |
Activation Reagent 1 (or ER-1 powder) | Emulate | Chip S1 Basic Research kit-24PK | Part of the two-channel Chip kit; Storage temperature -20 °C |
Activation Reagent 2 (or ER-2 solution) | Emulate | Chip S1 Basic Research kit-24PK | Part of the two-channel Chip kit; Storage temperature 4 °C |
Adenine | Sigma Aldrich | A2786 | Component of the Differentiation media |
Brucella blood agar plates | VWR International Inc. | 89405-032 | with Hemin and Vitamin K; For the enumeration of Gardnerella vaginalis |
Ca2+ and Mg2+ free DPBS (DPBS (-/-) | ScienCell | 303 | For washing cells |
Calcium Chloride | Sigma Aldrich | C5670 | Component of the Differentiation media |
Calcium chloride (anhyd.) | Sigma Aldrich | 499609 | Component of HBSS (LB/+G) |
Collagen I | Corning | 354236 | For the coating solution for HVEC |
Collagen IV | Sigma Aldrich | C7521 | For the coating solution for HVEC |
Collagenase IV | Gibco | 17104019 | For the dissociation of cells from the Vagina Chips |
Complete fibroblast medium | ScienCell | 2301 | Media for the culture of HUF |
Complete vaginal epithelium medium | Lifeline | LL-0068 | Media for the culture of HVEC |
D-Glucose (dextrose) | Sigma Aldrich | 158968 | Component of HBSS (LB/+G) |
DMEM (Low Glucose) | Thermofisher | 12320-032 | Component of the Differentiation media |
Dynamic Flow Module (or Zoë) | Emulate | Zoë-CM1 | Regulates the flow rate of the chips |
Ham's F12 | Thermofisher | 11765-054 | Component of the Differentiation media |
Heat inactivated FBS | Thermofisher | 10438018 | Component of the Differentiation media |
Human uterine fibroblasts | ScienCell | 7040 | HUF |
Human vaginal epithelial cells | Lifeline | FC-0083 | HVEC |
Hydrocortisone | Sigma Aldrich | H0396 | Component of the Differentiation media |
ITES | Lonza | 17-839Z | Component of the Differentiation media |
L-glutamine | Thermofisher | 25030081 | Component of the Differentiation media |
Magnesium chloride hexahydrate | Sigma Aldrich | M2393 | Component of HBSS (LB/+G) |
Magnesium sulfate heptahydrate | Sigma Aldrich | M1880 | Component of HBSS (LB/+G) |
MRS agar plates | VWR International Inc. | 89407-214 | For enumeration of Lactobacillus |
O-phosphorylethanolamine | Sigma Aldrich | P0503 | Component of the Differentiation media |
Pen/Strep | Thermofisher | 15070063 | Component of the Differentiation media |
pH strips | Fischer-Scientific | 13-640-520 | For measurement of pH |
Pods (1/chip) | Emulate | BRK-S1-WER-24 | Part of the two-channel Chip kit |
Poly-L-lysine | ScienCell | 403 | For the coating solution for HUFs |
Potassium chloride | Sigma Aldrich | P3911 | Component of HBSS (LB/+G) |
Potassium phosphate monobasic | Sigma Aldrich | P0662 | Component of HBSS (LB/+G) |
Sterile 80% glycerol | MP Biomedicals | 113055034 | For freezing bacterial samples |
Triiodothyronine | Sigma Aldrich | T6397 | Component of the Differentiation media |
Trypan Blue Solution (0.4%) | Sigma Aldrich | T8154 | For counting live/dead cells |
TrypLE Express | Thermofisher | 12605010 | For the dissociation of cells from the Vagina Chips |
Trypsin Neutralizing Solution (TNS) | ScienCell | 113 | For neutralization of Trypsin |
Trypsin/EDTA Solutiom (0.25%) | ScienCell | 103 | For cell dissociation |
β-estradiol | Sigma Aldrich | E2257 | Hormone for differentiation media |
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