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Cet article établit un pipeline pour des suspensions de cellules uniques et de noyaux de haute qualité d’embryons de souris gaztrulants pour le séquençage de cellules uniques et de noyaux.
Au cours de la dernière décennie, les approches unicellulaires sont devenues la référence pour l’étude de la dynamique de l’expression des gènes, de l’hétérogénéité cellulaire et des états cellulaires au sein des échantillons. Avant les progrès de la cellule unique, la faisabilité de capturer le paysage cellulaire dynamique et les transitions cellulaires rapides au cours du développement précoce était limitée. Dans cet article, un pipeline robuste a été conçu pour effectuer l’analyse de cellules uniques et de noyaux sur des embryons de souris du jour embryonnaire E6.5 à E8, correspondant au début et à la fin de la gastrulation. La gastrulation est un processus fondamental au cours du développement qui établit les trois couches germinales : mésoderme, ectoderme et endoderme, qui sont essentielles à l’organogenèse. Il existe une littérature abondante sur les omiques unicellulaires appliquées aux embryons périgastrulants de type sauvage. Cependant, l’analyse unicellulaire d’embryons mutants est encore rare et souvent limitée aux populations triées par FACS. Cela est dû en partie aux contraintes techniques associées à la nécessité du génotypage, aux grossesses programmées, au nombre d’embryons avec les génotypes souhaités par grossesse et au nombre de cellules par embryon à ces stades. Nous présentons ici une méthodologie conçue pour surmonter ces limites. Cette méthode établit des lignes directrices en matière de reproduction et de grossesse chronométrée afin d’augmenter les chances de grossesses synchronisées avec les génotypes souhaités. Les étapes d’optimisation du processus d’isolement des embryons couplées à un protocole de génotypage le jour même (3 h) permettent de réaliser des cellules uniques à base de microgouttelettes le même jour, garantissant ainsi une grande viabilité des cellules et des résultats robustes. Cette méthode comprend en outre des lignes directrices pour l’isolement optimal des noyaux à partir d’embryons. Ainsi, ces approches augmentent la faisabilité des approches unicellulaires d’embryons mutants au stade de la gastrulation. Nous prévoyons que cette méthode facilitera l’analyse de la façon dont les mutations façonnent le paysage cellulaire de la gastrula.
La gastrulation est un processus fondamental nécessaire au développement normal. Ce processus rapide et dynamique se produit lorsque les cellules pluripotentes se transforment en précurseurs spécifiques à la lignée qui définissent la formation des organes. Pendant des années, la gastrulation a longtemps été définie comme la formation de trois populations largement homogènes : le mésoderme, l’ectoderme et l’endoderme. Cependant, les technologies à haute résolution et un nombre émergent de modèles de cellules souches embryonnaires 1,2 révèlent une hétérogénéité sans précédent parmi les couches germinales précoce....
Ce protocole et toutes les expériences sur les animaux décrites ont été officiellement approuvés et conformes aux directives institutionnelles établies par le Comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux de l’Université Temple, qui suit les directives internationales de l’Association pour l’évaluation et l’accréditation des soins aux animaux de laboratoire. Toutes les souris décrites appartenaient à la souche de fond C57/BL6N. Aucune préoccupation pour la santé animale n’a été observée dans ces études.
1. Colonie de reproduction et grossesses programmées
La méthodologie conçue dans cet article est spécifiquement destinée à améliorer la préparation d’échantillons d’embryons pour les omiques unicellulaires de E6.5 à E8. Ce pipeline robuste se compose de cinq étapes principales : les grossesses synchronisées, les isolements d’embryons, le génotypage le jour même, la dissociation cellulaire et l’évaluation de la viabilité cellulaire (Figure 1A). Bien que les données présentées se concentrent sur des points temporels de .......
Cet article présente un pipeline robuste pour l’obtention de suspensions de cellules uniques et de noyaux de haute qualité à partir d’embryons de souris gaztrulants, spécialement conçues pour faciliter les études sur les mécanismes de spécification du destin cellulaire dans le développement précoce. Cette méthode comble une lacune cruciale dans le domaine de la gastrulation en optimisant l’analyse des embryons nécessitant des génotypes, tels que le sexe ou les gènes somatiques. En utilisant des modèl.......
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Nous remercions le centre de génomique du Fox Chase Cancer Center et les membres du laboratoire du Dr Johnathan Whetstine, Zach Gray, Madison Honer et Benjamin Ferman, pour leur soutien technique aux expériences de séquençage. Nous remercions les membres du laboratoire du Dr Estaras et d’Alex Morris, un étudiant diplômé en rotation qui a contribué à l’analyse initiale des études sur cellule unique. Ce travail est financé par les subventions des NIH R01HD106969 et R56HL163146 à Conchi Estaras. De plus, Elizabeth Abraham a été soutenue par la subvention de formation T32 5T32HL091804-12.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
10 cm Petri dish | Genesee Scientific | 25-202 | |
1000 µL Reach Barrier Tip | Genesee Scientific | 23-430 | |
20 µL Reach Barrier Tip | Genesee Scientific | 24-404 | |
300 µL Reach Barrier Tip | Genesee Scientific | 24-415 | |
37 µm Reversible Strainer, small | Stem Cell | 27215 | |
6 cm Petri dish | Genesee Scientific | 25-260 | |
8-strip PCR tubes | Genesee Scientific | 27-125U | |
Agarose | Apex Bioresearch Product | 20-102 | |
Benchmark Scientific BSH300 MyBlock Mini Dry Bath | Genesee | 31-437 | |
Benchmark Scientific Z216-MK Z216MK Hermle Refrigerated Microcentrifuge | Genesee | 33-759R | |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma-Aldrich | A2153 | |
Chromium Controller | 10X | PN-1000127 | |
Chromium Next GEM Single Cell 3' Reagent Kits v3.1 | 10X | PN-1000269 | |
Countess 3 Automated Cell Counter | Invitrogen | AMQAX2000 | |
Countess Cell Couning Chamber Slides | Invitrogen | C10283 | |
D1000 Reagents | Agilent | 5067-5583 | |
D1000 ScreenTape | Agilent | 5067-5582 | |
Digitonin | ThermoFisher Scientific | BN2006 | |
DirectPCR yolk sac | Viagen | 201-Y | |
Dithiothreitol (DTT) | ThermoFisher Scientific | R0861 | |
DNA LoBind Tube 1.5 mL | Eppendorf | 22431021 | |
Dubecco's Modificiation of Eagle's Medium (DMEM, 1x) | CORNING | 10-013-CV | |
Dulbecco's PBS | GenClone | 25-508 | |
Dumont #5 Fine Forceps | Fine Science Tools | 11254-20 | |
Dumont #5SF Forceps | Fine Science Tools | 11252-00 | |
Ethanol | Koptec | V1401 | |
EVOS M7000 Imaging System | Invitrogen | AMF7000 | |
Fine Scissors - Sharp | Fine Science Tools | 14060-11 | |
GoTaq G2 Green Master Mix | Promega | M7823 | |
Graefe Forceps | Fine Science Tools | 11049-10 | |
MgCl2 | ThermoFisher Scientific | AC223211000 | |
MiniAmp Thermal Cycler | Applied Biosystems | A37834 | |
NaCl | Fisher Chemical | S271-500 | |
NextSeq 1000/2000 P2 Reagents (100 Cycles) v3 | Illumina | 20046811 | |
NextSeq2000 | Illumina | ||
Nikon SMZ 1000 Stereo Microscope | Nikon | ||
Nondiedt P40 | Sigma-Aldrich | 74385 | |
Nuclease-free Water | GenClone | 25-511 | |
Optical Tube 8x Strip (401428) | Agilent | 401428 | |
Optical Tube Cap 8x Strip (401425) | Agilent | 401425 | |
Poseidon 31-511, HS24 Microcentrifuge, with 24 x 1.5/2.0 mL rotor, 1 Centrifuge/Unit | Genesee | 31-511 | |
Proteinase K | Sigma-Aldrich | P6556 | |
Qubit dsDNA Quantification Assay Kits | Invitrogen | Q32851 | |
Qubit Flex 3 | Invitrogen | ||
RNase inhibitor | Fisher Scientific | 12-141-368 | |
Standard Pattern Forceps | Fine Science Tools | 11000-12 | |
Tape Station Loading tips | Agilent | 5067-5598 | |
Tapestation 4150 | Agilent | G2992AA | |
Tris-HCL (Ph7) | Quality Biological | 351-007-101 | |
Trypan Blue Stain 0.4% | Theromo Fisher Scientific | T10282 | |
Tryple Express | Gibco | 12604-021 | |
Tween-20 | Bio-Rad | 1662404 | |
Vortex mixer IKA MS3 with 96-well sample plate adapter | IKA | 3617000 |
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