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Le présent protocole décrit les mesures du pH dans les organoïdes gastriques dérivés de tissus humains à l’aide de microélectrodes pour la caractérisation spatio-temporelle de la physiologie intraluminale.
L’optimisation et la caractérisation détaillée des modèles d’organoïdes gastro-intestinaux nécessitent des méthodes avancées d’analyse de leurs environnements luminaux. Cet article présente une méthode hautement reproductible pour la mesure précise du pH dans la lumière d’organoïdes gastriques humains 3D via des microélectrodes contrôlées par micromanipulateur. Les microélectrodes de pH sont disponibles dans le commerce et se composent d’embouts en verre biseautés de 25 m de diamètre. Pour les mesures, la microélectrode de pH est avancée dans la lumière d’un organoïde (>200 μm) qui est suspendu dans Matrigel, tandis qu’une électrode de référence repose immergée dans le milieu environnant dans la plaque de culture.
En utilisant de telles microélectrodes pour profiler les organoïdes dérivés du corps gastrique humain, nous démontrons que le pH luminal est relativement constant dans chaque puits de culture à ~7,7 ± 0,037 et que des mesures continues peuvent être obtenues pendant un minimum de 15 min. Dans certains organoïdes plus grands, les mesures ont révélé un gradient de pH entre la surface épithéliale et la lumière, ce qui suggère que les mesures de pH dans les organoïdes peuvent être réalisées avec une haute résolution spatiale. Dans une étude précédente, des microélectrodes ont été utilisées avec succès pour mesurer les concentrations d’oxygène luminal dans les organoïdes, démontrant la polyvalence de cette méthode pour l’analyse des organoïdes. En résumé, ce protocole décrit un outil important pour la caractérisation fonctionnelle de l’espace luminal complexe au sein des organoïdes 3D.
Les organoïdes, c’est-à-dire des structures multicellulaires miniatures dérivées de cellules souches, ont révolutionné notre capacité à étudier la physiologie humaine et commencent à remplacer les modèles animaux, même dans les contextes réglementaires1. Depuis la description initiale des organoïdes intestinaux par Sato et al. en 2009, la technologie des organoïdes est devenue immensément populaire2. Un grand nombre d’études ont caractérisé en détail la composition cellulaire et la fonction de modèles d’organoïdes 3,4,5,6.<....
Ce protocole nécessite des organoïdes 3D d’au moins 200 μm de diamètre qui ont une lumière distincte et qui sont intégrés dans une matrice extracellulaire artificielle (ECM, par exemple, Matrigel). Des tissus gastriques humains pour la dérivation d’organoïdes ont été obtenus avec l’approbation du Conseil d’examen institutionnel de l’Université d’État du Montana et le consentement éclairé de patients subissant une endoscopie supérieure à Bozeman Health (protocole # 2023-48-FCR, à D.B.) ou en tant qu’échantillons exemptés d’estomac entier ou de gastrectomie en manchon du National Disease Research Interchange (protocole #DB062615-EX). Le tableau 1 fourni....
La sécrétion d’acide est une fonction cruciale de l’estomac humain. Cependant, la question de savoir dans quelle mesure la sécrétion d’acide peut être modélisée dans les organoïdes est encore un sujet de débat 6,32,33,34. Nous avons donc développé le protocole détaillé ci-dessus pour mesurer avec précision la production d’acide dans les organoïdes gastriques. Notamment, n.......
L’accès limité à l’espace luminal des organoïdes a sévèrement limité notre compréhension de la dynamique physiologique de ce microenvironnement. Un outil fiable pour les analyses fonctionnelles de la physiologie luminale élargira notre capacité à exploiter les organoïdes comme modèles in vitro pour la physiologie, la pharmacologie et la recherche sur les maladies. Les organoïdes sont des modèles physiologiquement pertinents qui offrent un potentiel supplémentaire de reproduction de la variabi.......
Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.
Les auteurs tiennent à remercier Ellen Lauchnor, Phil Stewart, Ph. D., et Bengisu Kilic pour leurs travaux antérieurs et leur aide avec les microcapteurs O2 ; Andy Sebrell pour sa formation en culture d’organoïdes et en micromanipulation ; Lexi Burcham pour son aide à la culture d’organoïdes, à la préparation des milieux, à l’enregistrement des données et à l’organisation ; et la Dre Susy Kohout pour des conseils généraux en électrophysiologie. Nous tenons à remercier la Dre Heidi Smith pour son aide en matière d’imagerie et à reconnaître le Centre d’ingénierie des biofilms de l’Université d’État du Montana, qui est soutenu par le financement du programme ....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
3 M KCl | Unisense | ||
5 mL Wobble-not Serological Pipet, Individually Wrapped, Paper/Plastic, Bag, Sterile | CellTreat | 229091B | |
10 mL Wobble-not Serological Pipet, Individually Wrapped, Paper/Plastic, Bag, Sterile | CellTreat | 229092B | |
15 mL Centrifuge Tube - Foam Rack, Sterile | CellTreat | 229412 | |
24 Well Tissue Culture Plate, Sterile | CellTreat | 229124 | |
25 mL Wobble-not Serological Pipet, Individually Wrapped, Paper/Plastic, Bag, Sterile | CellTreat | 229093B | |
35 mm Dish | No. 1.5 Coverslip | 20 mm Glass Diameter | Uncoated | MatTek | P35G-1.5-20-C | |
50 mL Centrifuge Tube - Foam Rack, Sterile | CellTreat | 229422 | |
70% Ethanol | BP82031GAL | BP82031GAL | |
70 μm Cell Strainer, Individually Wrapped, Sterile | CellTreat | 229483 | |
1,000 µL Extended Length Low Retention Pipette Tips, Racked, Sterile | CellTreat | 229037 | |
Amphotericin B (Fungizone) Solution | HyClone Laboratories, Inc | SV30078.01 | |
Biosafety Cabinet | Nuaire | NU-425-600 | Class II Type A/B3 |
Bovine Serum Albumin | Fisher Bioreagents | BP1605-100 | |
Cell recovery solution | Corning | 354253 | Cell dissociation solution |
DMEM/F-12 (Advanced DMEM) | Gibco | 12-491-015 | |
Dulbecco's Modification of Eagles Medium (DMEM) | Fisher Scientific | 15017CV | |
Fetal Bovine Serum | HyClone Laboratories, Inc | SH30088 | |
G418 Sulfate | Corning | 30-234-CR | |
Gentamycin sulfate | IBI Scientific | IB02030 | |
HEPES, Free Acid | Cytiva | SH30237.01 | |
HP Pavillion 2-in-1 14" Laptop Intel Core i3 | HP | M03840-001 | |
Hydrochloric acid | Fisher Scientific | A144C-212 | |
Incubator | Fisher Scientific | 11676604 | |
iPhone 12 camera | Apple | ||
L-glutamine | Cytiva | SH3003401 | |
Large Kimberly-Clark Professional Kimtech Science Kimwipes Delicate Task Wipers, 1-Ply | Fisher Scientific | 34133 | |
M 205 FA Stereomicroscope | Leica | ||
Matrigel Membrane Matrix 354234 | Corning | CB-40234 | |
MC-1 UniMotor Controller | Unisense | ||
Methyl red | |||
MM33 Micromanipulator | Marzhauser Wetzlar | 61-42-113-0000 | Right handed |
MS-15 Motorized Stage | Unisense | ||
Nanoject-II | Drummond | 3-000-204 | nanoliter autoinjector |
Penicillin/Streptomycin (10,000 U/mL) | Gibco | 15-140-148 | |
pH Microelectrodes | Unisense | 50-109158, 25-203452, 25-205272, 25-111626, 25-109160 | SensorTrace software is not compatible with Apple computers |
Reference Electrode | Unisense | REF-RM-001652 | SensorTrace software is not compatible with Apple computers |
SB 431542 | Tocris Bioscience | 16-141-0 | |
Smartphone Camera Adapter | Gosky | ||
Specifications Laboratory Stand LS | Unisense | LS-009238 | |
Trypsin-EDTA 0.025%, phenol red | Gibco | 25-200-056 | |
UniAmp | Unisense | 11632 | |
United Biosystems Inc MINI CELL SCRAPERS 200/PK | Fisher | MCS-200 | |
Y-27632 dihydrochloride | Tocris Bioscience | 12-541-0 | |
µSensor Calibration Kit | Unisense/ Mettler Toledo | 51-305-070, 51-302-069 | pH 4.01 and 9.21, 20 mL packets |
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