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Ce protocole décrit une méthode pour greffer une bille magnétique dans le cœur du poisson-zèbre en développement par microchirurgie, permettant la manipulation des forces mécaniques in vivo et déclenchant un afflux de calcium dépendant d’un stimulus mécanique dans les cellules endocardiques.
Les forces mécaniques fournissent en permanence une rétroaction aux programmes morphogénétiques des valves cardiaques. Chez le poisson-zèbre, le développement des valves cardiaques dépend de la contraction cardiaque et des stimuli physiques générés par le cœur battant. L’hémodynamique intracardiaque, pilotée par le flux sanguin, apparaît comme une information fondamentale façonnant le développement du cœur embryonnaire. Ici, nous décrivons une méthode efficace pour manipuler les forces mécaniques in vivo en greffant une perle magnétique de 30 à 60 m de diamètre dans la lumière cardiaque. L’insertion de la bille est réalisée par microchirurgie chez des larves anesthésiées sans perturber la fonction cardiaque et permet une modification artificielle des conditions limites, modifiant ainsi les forces d’écoulement dans le système. Par conséquent, la présence de la bille amplifie les forces mécaniques subies par les cellules endocardiques et peut déclencher directement un afflux de calcium dépendant d’un stimulus mécanique. Cette approche facilite l’étude des voies de mécanotransduction qui régissent le développement cardiaque et peut fournir des informations sur le rôle des forces mécaniques dans la morphogenèse des valves cardiaques.
Depuis son introduction à lafin des années 19701, le poisson-zèbre (Danio rerio) est devenu un puissant système modèle pour étudier les subtilités du développement cardiaque et des cardiopathies congénitales. Contrairement à la plupart des vertébrés, y compris les embryons de souris et de poussins, qui dépendent d’un système cardiovasculaire fonctionnel et ne peuvent pas survivre à des malformations cardiaques précoces, le poisson-zèbre offre un avantage unique en permettant l’étude de phénotypes cardiaques graves. Cela est dû à leur petite taille, qui facilite un apport suffisant en oxygène par diffus....
Les procédures de travail avec les embryons de poisson-zèbre décrites dans ce protocole sont conformes à la directive européenne 2010/63/UE et aux directives du ministère de l’Intérieur dans le cadre de la licence de projet PP6020928.
1. Obtention d’embryons de poisson-zèbre pour la greffe de perles
Des exemples de greffes de billes réussies sont présentés dans la figure 3, la vidéo 3 et la vidéo 4. La perle magnétique a été correctement positionnée dans l’oreillette du cœur du poisson zèbre, ce qui a permis une circulation sanguine sans obstruction et aucune hémorragie observée. De plus, les parois du cœur ont conservé leur intégrité structurelle sans s’effondrer (Figure 3
Étapes critiques du protocole et dépannage
Montage d’embryons de poisson-zèbre
La quantité d’agarose utilisée pour monter les embryons est importante. Le dôme formé ne doit pas être excessivement grand, car cela peut entraver la manipulation de la perle de la surface vers les embryons. À l’inverse, il ne doit pas être trop petit ; Le fait d’avoir plusieurs billes au sommet.......
Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à déclarer.
Nous remercions les membres du laboratoire Vermot pour les discussions et les commentaires sur le protocole. Nous sommes reconnaissants envers tous les membres du personnel de l’installation piscicole de l’Imperial College de Londres. Ce projet a reçu un financement du Conseil européen de la recherche (ERC) dans le cadre du programme de recherche et d’innovation Horizon 2020 de l’Union européenne : GA N°682939, Additional Ventures (numéro de bourse 1019496), le MRC (MR/X019837/1) et le BBSRC (BB/Y00566X/1). CV-P a été soutenu par une bourse du département de bio-ingénierie (Imperial College London). HF a été soutenu par le JSPS KAKENH....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Materials | |||
Essential equipment for zebrafish raising, breeding, and embryo collection | |||
Glass-bottom dish (35 mm x 15 mm) | VWR International | 734-2905 | |
Heat block | Eppendorf | EP5382000031 | Eppendorf ThermoMixer C |
Jewelers forceps | Sigma-Aldrich | F6521-1EA | Dumont No. 5, L 4 1/4 in., Inox alloy |
Microcentrifuge tubes 2 mL | Eppendorf | 30120094 | |
Pasteur pipette | |||
Petri dish | |||
Stereomicroscope | |||
Reagents | |||
4 mg/mL tricaine stock solution | |||
Danieau's medium (60x stock solution) | |||
PureCube Glutathione MagBeads | Cube Biotech | 32201 | |
PTU (1-phenyl-2-thiourea) | Sigma-Aldrich | P7629 | |
UltraPure low melting point agarose | Invitrogen | 16520-050 | |
Danieau's medium (60x stock solution) | |||
34.8 g NaCl | Sigma-Aldrich | S3014 | |
1.6 g KCl | Sigma-Aldrich | P9541 | |
5.8 g CaCl2·2H2O | Sigma-Aldrich | C3306 | |
9.78 g MgCl2·6H2O | Sigma-Aldrich | 442611-M | |
Dissolve the ingredients in H2O to a final volume of 2 L. Adjust the pH to 7.2 using NaOH, then autoclave. | |||
4 mg/mL tricaine stock solution | |||
400 mg of tricaine powder (Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate salt) | Sigma-Aldrich | A5040 | |
97.9 mL double-distilled H2O | |||
2.1 mL 1 M Tris (pH 9) | |||
Adjust the pH to 7, then aliquot and store at -20 °C. |
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