L’objectif général de cet article est de rapporter le protocole appliqué pour induire une péri-implantite chez la souris par ligature et d’observer son efficacité par évaluation tissulaire et perte osseuse autour des implants. Les procédures suivantes ont été effectuées dans une salle d’opération conforme à toutes les normes de biosécurité et de protection. Toutes les procédures ont été effectuées sous un grossissement microscopique de 10X et effectuées par des opérateurs formés et calibrés.
Toutes les chirurgies ont été effectuées sous anesthésie par inhalation avec de l’isoflurane et de l’oxygène. Un assistant opérateur était nécessaire pour stabiliser l’animal et maintenir l’ouverture de la bouche. Pour éviter l’irritation des yeux, un lubrifiant ophtalmique a été utilisé avant de commencer l’extraction.
Pour cette méthode, 18 souris mâles C57BL/6J âgées de trois semaines ont été utilisées et ont subi des extractions dentaires, la pose d’implants et l’induction d’une péri-implantite. Extraction dentaire. Pour les extractions dentaires, un explorateur 5 dents a été introduit entre la première et la deuxième molaire pour commencer l’élévation et la luxation.
Ensuite, l’explorateur dentaire a été introduit dans le site mésial de la première molaire. Après l’élévation, la pince à pointe et la pince à suture ont été utilisées pour retirer la première molaire. Ensuite, l’explorateur dentaire a été introduit entre la deuxième et la troisième molaire pour élever et luxer la deuxième molaire.
Après les extractions dentaires, l’hémostase complète a été obtenue en utilisant un applicateur stérile à bout de coton pendant une minute. Immédiatement après l’extraction, tous les animaux ont reçu des analgésiques, administrés par injection sous-cutanée. De plus, pendant quatre semaines après les extractions, la nourriture régulière a été remplacée par une alimentation molle et un antibiotique a été administré par voie orale, incorporant le médicament dans l’eau potable.
Pose d’implants. À l’aide d’une lame 15c, une incision mésiodistale a été pratiquée à travers le tissu kératinisé dans la zone correspondant aux dents précédemment présentes. Les molaires maxillaires droites étaient la référence spatiale.
Les lambeaux buccaux et palatins de pleine épaisseur ont été relevés à l’aide d’un explorateur dentaire 5, assurant une élévation complète du lambeau. L’ostéotomie a été réalisée à l’aide d’une micro-perceuse à main en carbure de 0,3 millimètre de diamètre fixée à un étau à goupille et activée par rotation dans le sens des aiguilles d’une montre. Les sites d’ostéotomie étaient d’environ un millimètre de profondeur dans les alvéoles d’extraction cicatrisées.
Après cela, des implants en titane, un par animal, ont été auto-taraudés dans la région des première et deuxième molaires maxillaires gauches en utilisant un mouvement de vissage dans le sens des aiguilles d’une montre. Les implants ont eu une période de guérison de quatre semaines au cours de laquelle les souris ont reçu des antibiotiques et ont été nourries comme décrit précédemment. Induction de la péri-implantite.
La péri-implantite a été induite en plaçant une ligature de soie 6-0 autour de chaque fixation, immédiatement apicale à la tête de l’implant. Les ligatures ont été maintenues pendant deux semaines pour développer une péri-implantite. Les ligatures étaient vérifiées tous les deux jours pour s’assurer qu’elles étaient toujours présentes.
S’il manquait, une nouvelle ligature était placée. Après cette période, tous les animaux ont été sacrifiés. Les maxillaires ont été récoltés, photographiés au microscope optique, fixés dans du formol à 10 % pendant 24 heures, puis stockés dans de l’éthanol à 70 %.
L’évaluation clinique a été réalisée en prenant des photos immédiatement après les sacrifices à l’aide de la microscopie optique. Par rapport au groupe témoin, une inflammation, la formation de poches et une augmentation de l’œdème des tissus mous ont été observées autour de l’implant dans le groupe péri-implantite. Aucune preuve de complications phénotypiques cliniques graves n’a été observée.
Deux semaines après la mise en place de la ligature, en comparant les groupes sans ligature et ligature, il y avait des différences significatives dans la hauteur des os observées par analyse linéaire et le volume de perte osseuse observé par analyse volumétrique. Pour déterminer les changements cellulaires, des échantillons décalcifiés ont été sectionnés et colorés avec de l’hématoxyline et de l’éosine. En conséquence, une migration épithéliale apicale et une perte osseuse plus importantes ont été observées dans les échantillons de péri-implantite par rapport au groupe témoin.
Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’induire une péri-implantite dans un modèle de souris, ainsi que d’identifier les différences cliniques, microtomographiques et histologiques trouvées. Bien que cette méthode ne représente pas tous les aspects de la péri-implantite, elle est indispensable pour établir une relation de cause à effet, en fournissant des informations sur la cicatrisation des tissus et en soutenant les études concernant la perte osseuse et la maladie péri-implantaire.
