이 기사의 전반적인 목표는 인찰에 의해 마우스의 임플란트 주위염을 유도하는 데 적용된 프로토콜을 보고하고 임플란트 주변의 조직 평가 및 뼈 손실을 통해 그 효과를 관찰하는 것입니다. 다음 절차는 모든 생물 안전 및 보호 표준을 준수하는 수술실에서 수행되었습니다. 모든 절차는 10X 현미경 배율로 수행되었으며 교육을 받고 보정된 작업자가 수행했습니다.
모든 수술은 이소플루란과 산소를 사용한 흡입 마취 하에 이루어졌습니다. 동물을 안정시키고 입을 벌리기 위해 보조 작업자가 필요했습니다. 눈의 자극을 방지하기 위해 발치를 시작하기 전에 안과 윤활제를 사용했습니다.
이 방법을 위해 18주 된 3주 된 C57BL/6J 수컷 마우스를 사용하여 치아 발치, 임플란트 식립 및 임플란트 주위 유도를 받았습니다. 치아 발치. 치아 발치의 경우 첫 번째 어금니와 두 번째 어금니 사이에 5개의 치과 탐색기를 도입하여 거상과 탈구를 시작했습니다.
다음으로, 치과 탐험가는 첫 번째 어금니의 근심 부위에 도입되었습니다. 상승 후, 팁 겸자와 봉합사 묶는 겸자를 사용하여 첫 번째 어금니를 제거했습니다. 다음으로 두 번째 어금니와 세 번째 어금니 사이에 치과 탐색기를 도입하여 두 번째 어금니를 들어 올리고 탈구했습니다.
치아 발치 후, 멸균 면촉 어플리케이터를 1분 동안 사용하여 완전한 지혈을 달성했습니다. 추출 직후, 모든 동물은 진통제를 투여받았고, 피하 주사를 통해 투여되었다. 또한, 발치 후 4주 동안은 일반 음식을 부드러운 식사로 대체하고, 항생제를 경구 투여하여 약물을 식수에 섞었다.
임플란트 식립. 15c 칼날을 사용하여 이전에 존재하는 치아에 해당하는 부위의 각질화된 조직을 통해 근심 절개를 했습니다. 오른쪽 상악 어금니가 공간 기준이었습니다.
협측 및 구개 전체 두께 플랩은 5개의 덴탈 익스플로러를 사용하여 들어 올려 완전한 플랩 상승을 보장합니다. 절골술은 핀 바이스에 부착된 직경 0.3mm의 카바이드 마이크로 핸드 드릴을 사용하여 수행되었으며 시계 방향 회전을 통해 활성화되었습니다. 절골 부위는 치유된 발치 소켓에 약 1mm 깊이로 들어가 있었습니다.
그 후, 티타늄 보형물을 동물 당 하나씩 시계 방향으로 나사 조이는 동작을 사용하여 첫 번째 및 두 번째 상악 왼쪽 어금니 부위에 자체 두드링되었습니다. 임플란트는 4주간의 치유 기간을 가졌는데, 이 기간 동안 쥐에게 항생제를 투여하고 앞서 설명한 대로 먹이를 주었다. 임플란트 주위염 유도.
임플란트 주위염은 임플란트 헤드의 정점에 있는 각 고정 장치 주위에 실크 합자를 6-0으로 배치하여 유도했습니다. 합자는 주위염을 개발하기 위해 2주 동안 유지되었습니다. 합자가 여전히 존재하는지 확인하기 위해 이틀에 한 번씩 합자를 검사했습니다.
누락된 경우 새 합자가 배치되었습니다. 이 기간이 지나면 모든 동물이 희생 제물로 바쳐졌습니다. 상악골을 채취하고, 광학 현미경을 사용하여 사진을 찍고, 24시간 동안 10% 포르말린에 고정한 다음, 70% 에탄올에 보관했습니다.
임상평가는 희생 직후 광학 현미경을 사용하여 사진을 찍는 방식으로 수행되었습니다. 대조군과 비교했을 때, 임플란트 주위염 그룹에서 임플란트 주변의 염증, 주머니 형성 및 연조직 부종 증가가 관찰되었습니다. 중증 임상적 표현형 합병증의 증거는 관찰되지 않았다.
합자 배치 2주 후, 비합자 그룹과 합자 그룹을 비교할 때 선형 분석을 통해 관찰된 뼈 높이와 체적 분석을 통해 관찰된 골 손실 부피에 유의한 차이가 있었습니다. 세포 변화를 측정하기 위해 석회질을 제거한 샘플을 절편하고 헤마톡실린과 에오신으로 염색했습니다. 그 결과, 대조군과 비교했을 때 임플란트 주위 샘플에서 더 많은 정점 상피 이동과 뼈 손실이 관찰되었습니다.
이 비디오를 시청한 후에는 마우스 모델에서 임플란트 주위염을 유도하는 방법과 발견된 임상적, 현미경 단층 촬영 및 조직학적 차이를 식별하는 방법에 대해 잘 이해해야 합니다. 이 방법이 임플란트 주위의 모든 측면을 대표하는 것은 아니지만, 조직 치유에 대한 정보를 제공하고 골 손실 및 임플란트 주위 질환에 관한 연구를 지원하는 인과 관계를 확립하는 데 필수적입니다.
