JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

כאן מוצג הליך מהיר וסטנדרטי להקמת קהילות ביופילם סינרגטיות מרובות מינים מקרקעות ריזוספרה שונות. זהו פרוטוקול ייחודי שנועד לחקור ולדמות את המיקרוביוטה המורכבת של קרקע ריזוספרה.

Abstract

הביופילם הרב-מיני הוא אורח חיים טבעי ודומיננטי של חיידקים בטבע, כולל באדמת ריזוספרה, אם כי ההבנה הנוכחית שלו מוגבלת. כאן, אנו מספקים גישה להקמת קהילות ביופילם סינרגטיות של מינים מרובים. הצעד הראשון הוא לחלץ תאים מאדמת ריזוספרה בשיטת הצנטריפוגה הדיפרנציאלית. לאחר מכן, תאי אדמה אלה מחוסנים לתוך מדיום התרבית כדי ליצור ביופילם כדורי. לאחר 36 שעות של דגירה, הרכב החיידקים של הביופילם והתמיסה שמתחתיו נקבעים באמצעות שיטת ריצוף הגן rRNA 16S. בינתיים, בידוד חיידקים בתפוקה גבוהה מביופילם כדורי מתבצע בשיטת הדילול המגביל. לאחר מכן, 5 טקסי החיידקים המובילים נבחרים עם השפע הגבוה ביותר בנתוני ריצוף הגן rRNA 16S (דגימות ביופילם pellicle) לשימוש נוסף בבניית קהילות ביופילם מרובות מינים. כל השילובים של 5 טקסי החיידקים נקבעו במהירות באמצעות צלחת בת 24 בארות, שנבחרה עבור יכולת היווצרות הביופילם החזקה ביותר על ידי בדיקת צביעת הקריסטל הסגול, וכומתה על ידי qPCR. לבסוף, קהילות הביופילם הסינתטיות החזקות ביותר של חיידקים מרובי מינים הושגו באמצעות השיטות לעיל. מתודולוגיה זו מספקת הדרכה אינפורמטיבית לביצוע מחקר על ביופילם מרובה מינים של ריזוספרה וזיהוי קהילות מייצגות לחקר העקרונות השולטים באינטראקציות בין מינים אלה.

Introduction

ביופילמים מייצגים קהילות מיקרוביאליות מורכבות המודבקות על משטחים או מקושרות לממשקים. קיימת הכרה רחבה בכך שרוב החיידקים שנתקלים בהם בסביבות שונות, כגון סביבות טבעיות, סביבות קליניות והקשרים תעשייתיים, שורדים בתוך קהילות ביופילם1. באדמה, הריזוספרה – המקיפה את פני השטח של השורש ואת האזור הסמוך לו בעובי 2 מ"מ – יוצרת נישה אקולוגית עם זמינות מוגברת של חומרי מזון. חיידקים ספציפיים פיתחו אסטרטגיות לניצול נישה זו, טיפוח התרבות מיקרוביאלית וטיפוח היווצרות קהילות ביופילם בריזוספרה2.

מיקרובים ריזוספרה נחשבים ל"גנום השני" של צמחים3. מיקרואורגניזמים מעודדי גדילה של צמחים (PGPM) עוסקים בסימביוזה הדדית עם צמחים, ומספקים פונקציות משמעותיות לקידום צמיחה ובקרה ביולוגית4. מצד אחד, PGPM יכול לספק חומרים מזינים לשורשי הצמח, לשפר את ספיגת החומרים המזינים, להגן מפני פתוגנים ולפרק מזהמים באדמת הריזוספרה5. מצד שני, PGPM משתמש בהפרשה של שורשי צמחים כמקור תזונתי לצמיחה ואבולוציה, ובכך משפיע על אדמת הריזוספרה ועל מערכת השורשים באמצעות חילוף החומרים שלהם. ראוי לציין כי התנאי המוקדם לכל הפונקציות הללו הוא התיישבות יעילה של PGPM בריזוספרה הצמח, יצירת ביופילמים יציבים6.

ביופילם ריזוספרה משפיע על תהליך ההרכבה של מיקרובים ריזוספרה, והמאפיינים הרקתיים והמרחביים של הרכבת מיקרובי ריזוספרה קשורים קשר הדוק לאינטראקציה שלביופילם 7 של מינים מרובים. הוא משמש כמרכז של אינטראקציות צמחים-מיקרוביום, ומספק להם נישה יציבה ונשלטת לאינטראקציה יעילה. לכן, חקר ביופילם של ריזוספרה הוא גם כיוון חשוב להשגת תובנה לגבי האינטראקציה בין צמחים למיקרובים.

עם זאת, כיום יש מעט מחקר על ביופילמים מרובי מינים של ריזוספרה. המורכבות הגבוהה של הרכב המיקרוביום מקשה לענות על שאלות אקולוגיות בסיסיות סביב קהילות מיקרוביאליות טבעיות8. בתהליך הניסויים יש לקחת בחשבון תנאים רבים, כגון סוג הקרקע, סוג הצמח והמספר הגדול של קהילות מיקרוביות. גורמים שונים מגבילים את המחקר של ביופילמים מרובי מינים של ריזוספרה.

כדי להמשיך ולחקור קהילות ביופילם רב-מינים מאדמת ריזוספרה, כגון אינטראקציות סינרגטיות בין מינים או הזנה צולבת של מטבוליטים8, רצוי לבנות באופן מלאכותי קהילה מיקרוביאלית סינתטית פשוטה, מייצגת, יציבה וניתנת להסרה בתנאי מעבדה 9,10. כאן, פרוטוקול סטנדרטי משלב כמה מהטכניקות המיקרוביולוגיות והביואינפורמטיות העדכניות ביותר.

Protocol

פרוטוקול זה ישים בדרך כלל למיקרוביוטה של קרקע ריזוספרה מצמחים שונים. כאן, מלפפון משמש כדוגמה. פרטים על הריאגנטים והציוד ששימשו למחקר מפורטים בטבלת החומרים.

1. בידוד חיידקים

  1. בידוד קרקע ריזוספרה
    1. תרבות מלפפונים
      1. יש לחטא זרעי מלפפון בתמיסת 75% אתנול ונתרן היפוכלוריט 2% (NaClO), ולאחר מכן לשטוף אותם במים סטריליים11.
      2. להנביט את הזרעים בתנאים סטריליים ולבחור את אלה המגיעים לשלב שני העלים12. לאחר מכן, השתילו את שתילי המלפפון המונבטים באופן עקבי בעציצים המכילים 2 ק"ג אדמה שחורה.
        הערה: שני סוגים של אדמה שחורה ממקומות שונים בצפון מזרח סין משמשים להפחתת טעויות שיטתיות.
    2. הכנת תרחיף קרקע
      1. הכן חיץ PBS-S באמצעות הנוסחה: 6.33 גרם של NaH2PO4· H2O, 16.5 גרם של Na2HPO4·7H2O, 200 μL של סילווט L-77, ו-1 ליטר מים מזוקקים.
      2. כאשר השתילים מגיעים לשלב12 בעל ארבעת העלים, הופכים את העציץ ומבודדים את השורשים יחד עם אדמת ריזוספירה בעובי 2 מ"מ באמצעות כפפות מעוקרות.
      3. מקם את השורשים בחיץ PBS-S של 30 מ"ל בצינור צנטריפוגה של 50 מ"ל. לאחר ניעור של 20 דקות, סננו את המתלה דרך מסנן תאי ניילון בגודל 100 מיקרומטר כדי להסיר שורשים ומשקעים גדולים.
      4. מעבירים את התסנין לצינור צנטריפוגה נוסף של 50 מ"ל, צנטריפוגות אותו ב 3200 x גרם למשך 15 דקות בטמפרטורת החדר, ומאחסנים אותו באופן זמני ב -4 מעלות צלזיוס.
  2. מיצוי של תאי חיידקים בקרקע ריזוספרה.
    הערה: מתודולוגיה זו מאמצת את שיטת הצנטריפוגה הדיפרנציאלית13, אם כי שיטת הצנטריפוגה ההדרגתית של צפיפות Nycodenz14 חלה גם על שלב זה.
    1. דללו את תרחיף הקרקע בתמיסת 0.2% Na4P2O7 ל-500 מ"ל וצנטריפוגה ב-1,000 x גרם למשך 10 דקות כדי להפריד תחילה אורגניזמים מהקרקע.
    2. הומוגניזציה מחדש של המשקע, צנטריפוגה אותו באותה מהירות נמוכה במשך 60 שניות, ולחזור על התהליך שלוש פעמים. ערבבו את הסופרנאטנטים, צנטריפוגו אותם במהירות של 12,000 x גרם למשך 20 דקות, ואז השליכו את הסופרנאטנט.
    3. להשהות מחדש את המשקע ב 50 מ"ל של חיץ PBS-S, המהווה את השעיית תאי חיידקי הקרקע ריזוספרה.

2. ריצוף וזיהוי מיקרוביוטה של ביופילם ריזוספירה

  1. הכנת מדיה
    הערה: מרק סויה טריפטי (TSB) וחומרים עם מינימום מלחים גליצרול גלוטמט (MSgg) זמינים באופן מסחרי. הניסוחים שלהלן הם לעיון בלבד.
    1. הכן TSB בינוני באמצעות הנוסחה הבאה: 15 מיקרוגרם / מ"ל טריפטון, 5 מיקרוגרם / מ"ל פפטון סויה, 5 מיקרוגרם / מ"ל NaCl, pH = 7.
    2. הכן מדיום MSgg באמצעות הניסוח הבא: 5 mM KH2PO4, 100 mM 3-(N-morpholino) פרופאן חומצה סולפונית (MOPS), 2 mM MgCl2, 700 μM CaCl2, 50 μM MnCl2, 50 μM FeCl3, 1 μM ZnCl2, 2 μM תיאמין, 0.5% גליצרול, 0.5% גלוטמט, 50 מיקרוגרם / מ"ל טריפטופן, 50 מיקרוגרם / מ"ל פנילאלנין, pH = 7.
    3. כדי להכין מדיית TSB-MSgg, ערבב מדיית TSB עם מדיית MSgg ביחס של 1:1 (v/v)15.
  2. קוקולטורה של ביופילם פליקל
    1. לדגור על תרחיף התא בתווך TSB ב 30 ° C במשך הלילה (בדרך כלל 12 שעות) כדי להפעיל את החיידקים.
    2. מניחים מסנני תאי ניילון בגודל 100 מיקרומטר על צלחות 24 בארות. לדגור על החיידקים במדיה TSB ולהגדיר שלוש חזרות. לטפח את biofilm pellicle במשך 36 שעות ב 30 ° C.
      הערה: אם הביופילם הכדורי מהשלב האחרון אינו מעובד היטב, מדיום TSB-MSgg הוא תחליף יעיל למדיום TSB.
    3. הסר את המסנן המכיל את הביופילם הכדורי. הוסף 2 מ"ל של חיץ PBS-S לצלחת תא חדשה של 24 בארות, מקם לתוכו את מסנן 24 הבארות כדי לשטוף את הביופילם, והסר את התאים החופשיים. חזרו על תהליך הכביסה שלוש פעמים.
  3. מיצוי DNA של ביופילם כדורי
    1. חלץ את גנום הביופילם באמצעות ערכת DNA בהתאם להוראות היצרן.
  4. ריצוף בתפוקה גבוהה
    הערה: חברות ביוטכנולוגיה יכולות לסייע בהשלמת ניסויי ריצוף עבור רוב המעבדות. אם יש צורך בהרכב מיקרוביאלי בתמיסה הנותרת, רצף אותו בשלב זה. שלב הרצף משתנה בהתאם למכשירים. פעל בהתאם להוראות היצרן. שלב 2.4.1 מיועד להמחשה בלבד.
    1. להגביר את אזורי V3-V4 של הגן 16S rRNA בהתבסס על מסד הנתונים עם רצפי גנים 16S rRNA באורך מלא. צור OTUs של מינים לפי מספר הרצפים המינימלי לכל מדגם16. קבץ את ביאורי סיווג המינים ורכוש את הרכבי הקהילות מכל מדגם.
    2. בהתבסס על נתוני הריצוף, בחרו את חמשת הזנים המובילים מבחינת השפע היחסי שלהם.
  5. בידוד חיידקים בתפוקה גבוהה ותרבית
    הערה: שלב זה מתוכנן על פי המתודולוגיה המיקרוביולוגית והביואינפורמטית העדכנית ביותר17. שיטת הצלחת המצופה בדילול זמינה כאן לבידוד חיידקים, אם כי היא גוזלת יותר זמן ופחות ממוקדת בהשוואה לטכניקות בעלות תפוקה גבוהה.
    1. מערבבים את הביופילם המתורבת. השתמשו בדילול מגביל כדי להבטיח שלא יותר מ-30% מהבארות בצלחת בת 24 הקידוחים יראו צמיחת חיידקים.
      הערה: כדי לקבוע את הדילול המתאים ביותר, בצע ניסויים מקדימים באמצעות מגוון רחב של קצבי דילול. הדילול האופטימלי צריך להכיל לא יותר משני חיידקים למיליליטר, המייצגים דגירה חיידקית בפחות מ -30% מהבארות.
    2. הגבירו את גן ה-rRNA 16S של החיידקים תוך הוספת תוויות לבארות וללוחות וריצוף שלהם באמצעות פלטפורמת Illumina בעלת התפוקה הגבוהה17.
    3. בצע ניתוחים ביואינפורמטיים באמצעות תוכנה זמינה מסחרית כדי לקבל מידע טקסונומי על טוהר ומינים עבור כל תרבות.
    4. טפחו את חמשת החיידקים הטהורים השופעים ביותר על ידי תרבית קו רציף והשתמשו בגליצרול כדי לשמר את החיידקים בטמפרטורה של -80°C.

3. בניית קהילות מיקרוביאליות סינתטיות

  1. תרבות ביופילם משוחזרת
    הערה: לקבלת פרטים, עיין ב- Ren et al.18. 5 הזנים מתאימים ל-31 שילובים סינתטיים, כולל 5 מינים בודדים, 10 שני מינים, 10 שלושה מינים, 5 ארבעה מינים וקונסורציום אחד של חמישה מינים.
    1. דוגרים על 5 הזנים בתווך TSB עד שה-OD600 שלהם מגיע ל-1 כדי להפעיל אותם.
    2. הכינו מספר צלחות 24 בארות עם TSB בינוני והניחו עליהן מסנני תאי ניילון בגודל 100 מיקרומטר.
      הערה: אם הביופילם מהשלב האחרון אינו מעובד היטב, מדיום TSB-MSgg הוא תחליף יעיל למדיום TSB.
    3. לדגור על 31 שילובים של קהילות סינתטיות במדיום. ודא שמספר החיידקים החיסוני עקבי בכל באר. הגדר שלוש חזרות לכל שילוב.
    4. טפחו את הביופילם בטמפרטורה של 30°C למשך 36 שעות.
  2. כימות של ביופילם כדורי
    1. בצע את אותו הליך כמו בשלב 2.2.3.
    2. מעבירים את הביופילם לצלחת חדשה בת 24 בארות המכילה 180 מיקרוליטר של תמיסת קריסטל סגול ומכתימים אותה למשך 20 דקות.
    3. העבירו את הדגימה המוכתמת לצלחת אחרת בת 24 בארות המכילה 200 מיקרוליטר של 96% אתנול, פזרו אותה למשך 30 דקות ומדדו OD590.

4. כימות מספר תא פליקל

הערה: כדי לקבוע את היחס של כל מין ואת ספירת התאים בתמיסה הכדורית והנותרת, יש צורך ב- PCR כמותי. לקבלת פרטים, עיין ב- Sun et al.16.

  1. תכננו פריימרים ספציפיים לזנים עבור קהילות החיידקים הסינתטיים שנבחרו.
  2. השתמש ברוארי כדי לבצע השוואות גנום ולגלות את הגנים הספציפיים לזן של עותק יחיד של כל מבודד. ודא כי פריימרים ממוקדים לגנים אלה.
  3. ליגזה את השברים המוגברים לפלסמידים PMD19T. צור עקומות סטנדרטיות באמצעות פלסמידים המכילים מקטעים מתאימים כתבניות.
  4. בצע את אותם השלבים שהוזכרו בשלב 2.2.
  5. הכן רכיבי תגובה באופן הבא: 7.2 μL של H2O, 10 μL של 2x qPCR Master mix, 0.4 μL של 10 μM של כל פריימר, ו- 2 μL DNA של תבנית.
  6. בצע PCR עם מכשיר PCR בזמן אמת בתנאים הבאים: 95 ° C למשך 10 דקות, 40 מחזורים של 95 ° C עבור 30 שניות, ו- 60 ° C במשך 45 שניות, ולאחר מכן קטע עקומת התכה סטנדרטי.
  7. בצע שישה שכפולים ביולוגיים עבור כל טיפול.

תוצאות

בעקבות ההליך שהוזכר, נצפים שיפועים משמעותיים ביכולת יצירת הביופילם ממיקרוביוטת הקרקע של ריזוספרה מלפפון (איור 1). ריצוף אמפליקון ביופילם אישר את המין בכדורית (איור 2). בהתבסס על מיפוי החום של נתוני ריצוף, נבחרו חמשת מיני החיידקים המובילים שהשפע שלהם בכדורית ...

Discussion

בהתאם לפרוטוקול, נבנות סדרה של קהילות ביופילם סינתטיות חזקות המבוססות על המיקרוביוטה באדמת ריזוספרה מצמחים שונים. באמצעות טכניקות PCR כמותיות, הרכב כל קהילה מפוענח בבירור. הביומסה של הביופילם מצביעה על עוצמת האינטראקציות המטבוליות הפוטנציאליות שלהם, אם כי תכונות ומנגנונים שונים מאחורי ש?...

Disclosures

למחברים אין ניגודי עניינים לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה כספית על ידי הקרן הלאומית למדעי הטבע של סין (42307173 ו-42107328) והתוכנית הלאומית למחקר ופיתוח מפתח (2022YFD1500202 ו-2022YFF1001800). P.W, Z.X עיצבו את המחקר. P.W, B.X, Z.C, J.X ו-N.Z ניתחו את הנתונים ויצרו את הנתונים. פ"ו כתב את הטיוטה הראשונה של כתב היד. Z.X., R.Z. ו-Q.S. תיקנו את כתב היד.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
0.2 % Na4P2O7 solutionSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd.20041418Used to dilute the soil suspension.
100 μm Nylon Cell FilterSangon Biotech (Shanghai) Co.,Ltd.F613463-0001Used to filter culture solution and separate pellicle biofilm.
2% NaClO solutionSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd.L03336903Used to sterilize the seeds.
24-well PlateMerck & Co., Inc.PSRP010Used for micobial cultivation and pellicle biofilm separation.
3-(N-morpholino) propane sulfonic acid (MOPS)Bioolook Scientific Research Special2360010Used to prepare MSgg media.
50 mL Centrifuge TubeBeijing Su-bio Biotech Co., Ltd.62.547.254Properly-sized centrifuge tubes for our protocol.
75% C2H5OH solutionSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd.801769680Used to sterilize the seeds.
Acinetobacter baumannii XL-1Nanjing Agricultural UniversityN/AStrains isolated from rhizosphere soil.
Bacillus velezensis SQR9Nanjing Agricultural UniversityN/AStrains isolated from rhizosphere soil.
Bacteria DNA KitNanjing Dinsi Biotechnology Co.,Ltd.D3350020000K04U021Used to extract bacterial DNA.
Black Soil INanjing Agricultural UniversityN/ABlack soil from Jilin Province.
Black Soil IINanjing Agricultural UniversityN/ABlack soil from Heilongjiang Province.
Burkholderia cenocepacia XL-2Nanjing Agricultural UniversityN/AStrains isolated from rhizosphere soil.
CaCl2Xilong Scientific Co.,Ltd.10035048Used to prepare MSgg media.
CentrifugeSangon Biotech (Shanghai) Co.,Ltd.G508009-0001High-speed centrifuge.
ChamQ SYBR qPCR Master MixVazyme Biotech Co.,Ltd.Q311-02Used for DNA amplification in qPCR.
Clean BenchSuzhou Antai Airtech Co., Ltd.NB026143Used for aseptic operation.
Constant Temperature IncubatorShangHai CIMO Medical Instrument Co.,LtdGNP-9080BS-figure-materials-2598Used for microbial cultivation.
Cristal Violet DyeSangon Biotech (Shanghai) Co.,Ltd.A600331Used for pellicle biofilm staining and quantifivation.
Cucumber SeedNanjing Agricultural UniversityN/A"Jinchun I" cucumber seed.
Culturome v 1.0The Institute of Genetics and Developmental Biology of the Chinese Academy of SciencesN/AUsed for high-throughput rhizosphere soil bacterial cultivation and identification
FeCl3Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd10011918Used to prepare MSgg media.
FridgeHefei Midea Refrigerator Co.,Ltd.BCD-556WKPM(Q)Used for strain preservation.
GlutamateBioolook Scientific Research Special2180020Used to prepare MSgg media.
GlycerolSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd10010618Used to prepare MSgg media.
Hydroponic Planting BasketYulv Furniture Store6526262626Used for cucumber hydroponics.
KH2PO4Xilong Scientific Co.,Ltd.10017618Used to prepare MSgg media.
MgCl2Xilong Scientific Co.,Ltd.7791186Used to prepare MSgg media.
MnCl2Xilong Scientific Co.,Ltd.10400101Used to prepare MSgg media.
Msgg MediumShanghai Bioesn Biotechnology Co.,Ltd.BES20791KBPellicle biofilm culture medium.
Na2HPO4·7H2OMerck & Co., Inc.S9390-100GUsed to prepare TSB media.
NaCIChinasun Specialty Products co., Ltd.HS0416Used to prepare TSB media.
NaH2PO4·H2OMerck & Co., Inc.S9638-25GUsed to prepare TSB media.
PBS-S BufferSangon Biotech (Shanghai) Co.,Ltd.E607008-0001Basic buffer for living tissues.
PhenylalanineRYONRT3486L005Used to prepare MSgg media.
PipetteBeijing Labgic Technology Co.,Ltd.BS-1000-TUsed for strain inoculation.
PMD19T PlasmidTakara Biomedical Technology (Beijing) Co.,Ltd.D102AUsed to generate qPCR standard curves.
PotSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd.YHHWS2401Used for cucumber soil culture.
Primer for qPCRSangon Biotech (Shanghai) Co.,Ltd.N/AUsed for DNA amplification in qPCR.
Real-Time PCR InstrumentThermo Fisher Scientific (China) Co.,Ltd.4484073Used to perform qPCR on selected pellicle biofilm.
RoaryThe Wellcome Trust SangerInstituteN/AUsed to design primers of qPCR
ShakerShanghai Zhichu Instrument Co.,LtdZQTY-50SUsed for solution mixing and microbial cultivation.
Silwet L-77Cytiva Bio-technology(Hangzhou) Co., Ltd.SL77080596Used to prepare TSB media.
Soy peptoneQingdao Hi-tech Industrial Park Hope Bio-technology Co., LtdHB8275Used to prepare TSB media.
SpectrophotometerShanghai Yidian Analysis Instrument Co.,Ltd.76713100010Used for pellicle biofilm cristal violet quantifivation.
Sterile WaterSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd.SW150302Used to wash the pellicle biofilm.
Sterilized Nitrile GlovesBeijing Labgic Technology Co.,Ltd.223016852LLZAUsed for basic experimental operations.
Template DNASangon Biotech (Shanghai) Co.,Ltd.N/AUsed for DNA amplification in qPCR.
ThiamineBioolook Scientific Research Special2180020Used to prepare MSgg media.
TryptoneThermo Fisher ScientificLP0042BUsed to prepare TSB media.
TryptophanBioolook Scientific Research Special2190020Used to prepare MSgg media.
TSB MediumGuangdong Huankai Microbial Sci. & Tech. Co.,Ltd.024048Broad-spectrum bacterial medium.
TSB-Msgg MeidiumNanjing Agricultural UniversityN/AMixed medium for pellicle biofilm culture with wider applicability.
ZnCl2Nanjing Chemical Reagent Co.,LtdC0310520123Used to prepare MSgg media.

References

  1. Davey, M. E., O'Toole, G. A. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics. Microbiol Mol Biol Rev. 64 (4), 847-867 (2000).
  2. Campbell, R., Greaves, M. P., Lynch, J. Anatomy and community structure of the rhizosphere. Rhizosphere. , 11-34 (1990).
  3. Berendsen, R. L., Pieterse, C. M., Bakker, P. A. The rhizosphere microbiome and plant health. Trends Plant Sci. 17 (8), 478-486 (2012).
  4. Lugtenberg, B., Kamilova, F. D. Plant-growth-promoting rhizobacteria. Annu Rev Microbiol. 63, 541-556 (2009).
  5. Compant, S., Clément, C., Sessitsch, A. Plant growth-promoting bacteria in the rhizo- and endosphere of plants: Their role, colonization, mechanisms involved and prospects for utilization. Soil Biol Biochem. 42, 669-678 (2010).
  6. Bais, H. P., Fall, R. R., Vivanco, J. M. Biocontrol of Bacillus subtilis against infection of Arabidopsis roots by Pseudomonas syringae is facilitated by biofilm formation and surfactin production. Plant Physiol. 134 (1), 307-319 (2004).
  7. Trivedi, P., Leach, J. E., Tringe, S. G., Sa, T., Singh, B. K. Plant-microbiome interactions: From community assembly to plant health. Nat Rev Microbiol. 18, 607-621 (2020).
  8. Sun, X., et al. Bacillus velezensis stimulates resident rhizosphere Pseudomonas stutzeri for plant health through metabolic interactions. ISME J. 16, 774-787 (2021).
  9. Pandhal, J., Noirel, J. Synthetic microbial ecosystems for biotechnology. Biotechnol Lett. 36, 1141-1151 (2014).
  10. Grosskopf, T., Soyer, O. S. Synthetic microbial communities. Curr Opin Microbiol. 18, 72-77 (2014).
  11. Lundberg, D. S., et al. Defining the core Arabidopsis thaliana. root microbiome. Nature. 488, 86-90 (2012).
  12. Bai, Y., et al. Functional overlap of the Arabidopsis leaf and root microbiota. Nature. 528, 364-369 (2015).
  13. Bakken, L. R. Separation and purification of bacteria from soil. Appl Environ Microbiol. 49 (6), 1482-1487 (1985).
  14. Yang, O., et al. Direct cell extraction from fresh and stored soil samples: Impact on microbial viability and community compositions. Soil Biol Biochem. 155, 108178 (2021).
  15. Ren, D., et al. High-throughput screening of multispecies biofilm formation and quantitative PCR-based assessment of individual species proportions, useful for exploring interspecific bacterial interactions. Microb Ecol. 68, 146-154 (2013).
  16. Sun, X., et al. Metabolic interactions affect the biomass of synthetic bacterial biofilm communities. mSystems. 8, e01045-e01123 (2023).
  17. Zhang, J., et al. High-throughput cultivation and identification of bacteria from the plant root microbiota. Nat Protoc. 16, 988-1012 (2021).
  18. Ren, D., Madsen, J. S., Sørensen, S. J., Burnolle, M. High prevalence of biofilm synergy among bacterial soil isolates in cocultures indicates bacterial interspecific cooperation. ISME J. 9, 81-89 (2015).
  19. Liu, Y., et al. Root colonization by beneficial rhizobacteria. FEMS Microbiol Rev. 48 (1), 066 (2024).
  20. Palková, Z. Multicellular microorganisms: Laboratory versus nature. EMBO Rep. 5, 470-476 (2004).
  21. Xu, Z., et al. Chemical communication in plant-microbe beneficial interactions: a toolbox for precise management of beneficial microbes. Curr Opin Microbiol. 72, 102269 (2023).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

JoVE20716S RRNAQPCR

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved