Ricostruzione di 3-Dimensional Volume Istologia e la sua applicazione per studiare mouse ghiandole mammarie

Riepilogo

We present an image registration approach for 3-dimensional (3D) histology volume reconstruction, which facilitates the study of the changes of an organ at the level of macrostructures made up of cells . Using this approach, we studied the 3D changes between wild-type and Igfbp7-null mammary glands.

Abstract

Ricostruzione del volume Istologia facilita lo studio della forma 3D e variazione di volume di un organo a livello di macrostrutture costituiti di cellule. Può anche essere usato per studiare e validare nuove tecniche e algoritmi di imaging medico volumetrico e terapie. Creazione di atlanti 3D ad alta risoluzione di diversi organi ^1,2,3 è un'altra applicazione di ricostruzione del volume istologia. Ciò fornisce una risorsa per indagare strutture tissutali e la relazione spaziale tra le varie funzioni cellulari. Vi presentiamo un metodo di registrazione di immagini per la ricostruzione del volume istologia, che utilizza una serie di immagini blockface ottiche. Il volume istologia ricostruito rappresenta una forma affidabile del campione trasformati senza propagate errore di registrazione post-processing. I ematossilina eosina (H & E) sezioni colorate di due ghiandole mammarie topo sono stati registrati per le loro immagini blockface corrispondenti utilizzando punti di confine estratti dal ndrges del campione nelle immagini di istologia e blockface. La precisione della registrazione è stata valutata visivamente. L'allineamento delle macrostrutture delle ghiandole mammarie stata anche valutata visivamente ad alta risoluzione.

Questo studio delinea le diverse fasi di questa immagine registrazione conduttura, che vanno dalla escissione della ghiandola mammaria fino alla ricostruzione 3D del volume istologia. Mentre le immagini di istologia 2D rivelano le differenze strutturali tra coppie di sezioni, il volume istologia 3D offre la possibilità di visualizzare le differenze di forma e di volume delle ghiandole mammarie.

Introduzione

IGFBP7 (insulina come la proteina legante il fattore di crescita 7) è un membro della famiglia delle proteine ​​IGF-binding, e ha dimostrato di legarsi al recettore IGF1 ^4. Down-regolazione di IGFBP7 è noto essere correlata con la prognosi nel cancro al seno ^5, mentre la reintroduzione del IGFBP7 in modelli di tumore dello xenotrapianto inibisce notevolmente la crescita dei tumori ⁶ attraverso l'induzione di apoptosi e senescenza cellulare ^7. Al fine di studiare gli effetti di IGFPB7, un mouse IGFBP7-null è stato creato ⁵ (dati non pubblicati). Mentre questi topi non sviluppano tumori, mostrano cambiamenti nella istologia delle ovaie, muscoli e nel fegato, nonché difetti di sviluppo della ghiandola mammaria patterning (dati non pubblicati). Il fenotipo difettoso è stato indicato come i topi nulli hanno dimensioni dei cuccioli più piccoli e sono in grado di sostenere più cucciolate di grandi dimensioni (dati non pubblicati).

Volumi di istologia 3D hanno il potenziale di fornire informat utiliion per le analisi quantitative e comparative e la valutazione di risultati patologici in immagini mediche volumetriche. Confocale tridimensionale, microscopia a due fotoni può fornire cellule di alta risoluzione informazioni morfologica della ghiandola alla misura locale ^14, ma ha un limitato campo di vista e profondità. Ricostruzione del volume Istologia fornisce ulteriori informazioni su una maggiore estensione spaziale. Utilizzando approcci tradizionali certa distorsione è anticipata durante la preparazione di sezioni istologiche, come il restringimento, espansione, lacrime e pieghe. Queste distorsioni rendono difficile registrare immagini istologiche seriali in una pila 3D per ricostruire un volume 3D. Poiché il numero di sezioni consecutive con difetti aumenta le somiglianze tra sezioni intatte ridotta e conseguentemente rende il processo di registrazione più complicato.

Diversi metodi sono stati proposti per registrare sezioni istologiche e per creare un istologia vo continualume. Alcune tecniche dipendono da variazioni di intensità ^8, e altri sono basati sulla forma delle sezioni ^9. Per alcuni esemplari le strutture anatomiche possono essere utilizzate come punti di riferimento ^10,11 insieme basato limite-metodi di registrazione ^12,13. Ma queste strutture interne potrebbero non essere rilevabile durante l'intero volume e per alcuni esemplari presenti strutture anatomiche affidabili possono essere identificati. Alcuni gruppi hanno utilizzato un approccio di registrazione pair-wise e registrato le immagini istologia consecutive una all'altra utilizzando profili o strutture anatomiche ^16-18. Registrazione sezioni istologiche seriali l'un l'altro senza l'uso di immagini di riferimento può propagare errore di registrazione e cambiare la forma reale del volume istologia. Approccio registrazione Pair-saggio si basa sulla coerenza della forma delle sezioni istologici e le strutture interne per tutta la pila di immagini; quindi richiede denso campionamento del campione, chepotrebbe non sempre è possibile, ad esempio, per i campioni clinici.

In questo gasdotto usiamo immagini blockface come un insieme di immagini di riferimento per il volume istologia ricostruzione ^19. Blockface immagini sono prese dei blocchi di tessuto paraffina dopo il montaggio sul microtomo e prima di ogni sezione viene tagliata. Così, danni a individuo sezioni seriali taglio non interferisca con la registrazione di sezioni seriali ^8,11,15. Catturiamo le immagini blockface in modo diverso dagli altri gruppi. Le immagini dei volti blocco ottico vengono raggiunti con un telecentrico per eliminare o minimizzare la canna e prospettiva distorsione, che di solito si verifica quando si utilizzano lenti regolari in ottica. Questo è uno dei vantaggi del metodo proposto rispetto agli altri metodi pubblicati, che eseguono l'imaging blockface utilizzando lenti regolare. Le immagini sono riprese con una leggera angolazione obliqua di utilizzare la riflessione della superficie del blocco per migliorare il contrasto tra il TISSsuperficie ue e paraffina e di eliminare l'ombra del tessuto in profondità sotto la superficie paraffina. Un filtro fotografico è anche usato per polarizzare la luce proveniente dalla superficie del blocco e il tessuto per bilanciare il contrasto ^19. Per correggere lo spostamento del blocco sul microtomo rotativo da due a tre fori sono realizzati negli angoli del blocco, che sono facilmente rilevabili nelle immagini blockface. I centroidi di questi fori sono usati insieme con la registrazione rigida a base di riferimento-per allineare le immagini blockface.

Protocollo

1. Specimen

1. Accise le ghiandole mammarie chirurgicamente da wild-type CDH1 nonché IGFBP7-null mice tre giorni dopo l'instaurarsi della lattazione.
2. Stendere le ghiandole su vetrini per contribuire a recuperare nativo della ghiandola mammaria morfologia.

2. Fissazione e Tissue Processing

1. Fissare le ghiandole mammarie in folle tamponata 4% PFA O / N a 4 ^{° C.}
2. Conservare le ghiandole in etanolo al 70% prima del trattamento del tessuto.
3. Trasferire le ghiandole a piccole cassette di trasformazione del tessuto.
4. Elaborare i tessuti utilizzando un processore tessuto automatizzato
   1. Disidratare tessuti ascendente etanolo e xilene bagni di etanolo al 70% per 45 minuti, 2 volte in etanolo al 95% per 45 minuti, 3 volte in 100% di etanolo per 1 ora e 2 volte in xilene per 45 min.
   2. Permeare i tessuti con paraffina 3 volte per 1 ora ogni sotto vuoto con pressione applicata.
5. Incorporare i tessuti in paraffina per formare blocchi, Per il sezionamento.

3. Istologia ed Blockface Imaging

1. Tagliare i blocchi di paraffina utilizzando un microtomo rotativo fino a quando la paraffina in eccesso viene rimosso.
2. Utilizzare una fresatrice verticale per perforare fori di 1 mm in almeno due angoli del blocco di paraffina perpendicolare alla cassetta.
3. Montare il blocco tessuto sul microtomo rotativo.
4. Impostare il sistema di imaging blockface ¹⁹ davanti al microtomo.
5. Immagine blockface ottica catturare prima del sezionamento.
6. Tagliare i nastri di quattro sezioni a 5 micron di spessore sul microtomo.
   1. Trasferire i nastri al bagno di acqua fredda.
   2. Separare la seconda e la quarta sezione del nastro e montarli su vetrini da microscopio. Scegliendo la seconda e la quarta sezione fornisce un divario tra 5 micron sezioni.
   3. Espandere ciascuna sezione in un bagno di acqua calda (48 ^{° C)} per unwrinkle esso, poi ri-montarlo sul vetrino da microscopio.
      NOTA: CUtting, montaggio, unwrinkling sezioni causare alcune distorsioni della sezione, come la lacrima, piega, restringimento e l'espansione. Questi manufatti complicano la registrazione delle sezioni istologici.
   4. Macchiare le sezioni con H & E con un Stainer automatico.
   5. I vetrini coprioggetto utilizzando un montavetrini automatico.
   6. Digitalizzare le diapositive utilizzando uno scanner diapositiva istologia digitale alla risoluzione di interesse. Per questo protocollo è l'ingrandimento 20x e la risoluzione è 0.47 micron.
   7. Down-campionare le immagini istologici per la risoluzione delle immagini blockface, 18 micron.

4. Immagine registrazione

1. Immagine Segmentazione e punto di selezione
   1. In blockface immagini misurano i valori di pixel dei fori di registrazione e usa il valore medio come una soglia fissa per segmentare i fori di registrazione negli angoli del blocco di paraffina.
   2. Da alcune parti aggiuntive potrebbero anche essere segmentati dacon il limite fissato, utilizzare la circolarità e l'area degli oggetti segmentati per trovare i buchi ed eliminare gli oggetti extra. Per fare questo, scrivere un piccolo codice e trovare il rapporto di (4π x area) / (perimetro) ² per gli oggetti segmentati. Questo rapporto per oggetti rotondi è 1.
   3. Per ogni ghiandola mammaria, selezionare un'immagine blockface come riferimento e allineare il resto delle immagini blockface al riferimento utilizzando il centro dei fori di registrazione e tecniche di registrazione basato limite.
   4. Per le immagini blockface allineate, segmento manualmente o estrarre il tessuto dallo sfondo. Utilizzare l'oggetto più consistente nella maschera per il resto del protocollo.
   5. Per H & E sezioni seguire le istruzioni riportate di seguito per la segmentazione automatica.
      1. Utilizzare Otsu soglia tecnica ²⁰ alle immagini segmento dallo sfondo e creare maschere binari delle immagini istologici.
      2. Individuare e selezionare l'oggetto più consistente in ogni maschera usando l'histogram degli oggetti etichettati.
      3. Estrarre i un pixel di larghezza punti di confine sia da istologia e maschere blockface.
      4. Utilizzare algoritmo codice catena ^21, per rappresentare i punti di confine da una sequenza di lineare a tratti adatta.
2. Registrazione rigida iniziale
   1. Utilizzare Fourier descrittori algoritmo ^22, per trovare la rigida iniziale trasformazione tra i punti di confine di istologia e le loro immagini blockface corrispondenti. Questo iniziale di trasformare comprende i fattori di conversione, rotazione e scala.
   2. Trasformare ogni immagine istologia con l'iniziale di trasformazione ottenuto dal passaggio precedente.
3. Affinamento della registrazione rigido
   1. Rimuovere le sezioni ad alta curvatura del bordo dal profilo istologico usando un filtro palla che rotola ^23.
   2. Selezionare 500 punti dei restanti istologici punti di confine in modo casuale con distribuzione uniforme.
   3. Trasformare il laistologia punti di confine casuali con la trasformazione iniziale ottenuto da descrittori di Fourier.
   4. Selezionare l'intero insieme di blockface punti di confine e utilizzare iterativi più vicini Points (ICP) ²⁴ algoritmo per trovare la trasformazione rigida tra i punti blockface di confine, di destinazione e di istologia punti di confine casuali.
   5. Trasforma le immagini istologici allineate ottenuti dalla fase precedente e la pila di immagini di istologia allineate crea il volume istologia.
   6. Utilizzare un software di visualizzazione 3D per creare una immagine visiva del volume istologia.
4. Visualizzazione della Pila di immagini a ingrandimento 5x
   1. Down-assaggiare le immagini istologici originali a 5x ingrandimento.
   2. Ritagliare la regione di interesse in una delle immagini istologici.
   3. Calcolare la posizione di tale regione in altre immagini istologici 5x utilizzando la combinazione delle trasformazioni rigide delle due fasi di registrazione.
   4. Ritagliare la regions di interesse per la stessa regione dimensioni in tutte le altre immagini di istologia.
   5. Infine definire l'allineamento tra le regioni manualmente. Scrivere un programma che sovrappone due immagini e permette di selezionare i valori di rotazione e traslazione di una delle immagini sopra l'altra e quindi salva l'immagine trasformata quando l'allineamento è accettata.
   6. Guarda le pile delle regioni istologici 5x allineati utilizzando un software di visualizzazione 3D.

Risultati

Un inconveniente di tradizionali tecniche di microscopia è che la comprensione di un organo a livello microscopico è limitata ad un campo di vista alla volta. Anche "totale informative" slides, che forniscono intere sezioni di scorrimento, non riescono a fornire informazioni tridimensionali. Con lo sviluppo di tutta la diapositiva, tecnologie di scansione dinamica, la nostra capacità di vedere una sezione nella sua interezza è aumentata, tuttavia estrapolando richiede strutture 3D ricostruzione del volume ...

Discussione

In questo studio, abbiamo sviluppato una registrazione workflow un'immagine di ricostruire un volume istologia 3D da immagini seriali istologia 2D, che non richiede punti di riferimento interni scelti a caso o marcatori fiduciali impiantati all'interno del tessuto, che potrebbero distorcere il tessuto. Con il metodo descritto, immagini blockface ottici stessi vengono utilizzati come immagini di riferimento prima del sezionamento. Usiamo fori esterni praticati nel blocco di paraffina per aiutare ad allineare le i...

Materiali

Name	Company	Catalog Number	Comments
16% PFA	VWR International	15710	16% Paraformaldehyde solution
Small tissue processing cassettes	VWR International	CA95029-956
Leica ASP300 Automated Tissue processor	Leica	14047643515
100% ethanol	Fisher Scientific	S25307B
Xylene	VWR International	CA95057-822
Paraffin	Thermo Fisher	39501006	Paraplast Tissue Embedding Medium
Leica EG 1160 Embedding Centre	Leica
Leica rotary microtome	Leica
Milling machine	Argo
Microscope slides	VWR International	CA48312-015
H&E stain	VWR International
Automatic stainer
Coverslips	VWR International	48404-452
MEDITE RCM 7000 Glass Coverslipper	MEDITE
Leica SCN400 slide scanner	Leica
MATLAB	MathWorks Inc	MATLAB 2007b	Development software
MeVisLab	MeVis Medical Solutions AG	MeVisLab 2.1	3D visualization software