Method Article
Questo protocollo fornisce istruzioni dettagliate su come costruire, sterilizzare, assemblare, utilizzare e riutilizzare le colonne autostradali fungine per arricchire le coppie batterio-fungine che interagiscono attraverso le autostrade fungine da diversi substrati ambientali.
Le interazioni batterio-fungine (BFI) svolgono un ruolo fondamentale nel plasmare la composizione della comunità microbica, le funzioni biogeochimiche, le dinamiche spaziali e la dispersione microbica. Le reti miceliali create da funghi filamentosi o altri microrganismi filamentosi (ad esempio, oomiceti) agiscono come "autostrade fungine" che possono essere utilizzate dai batteri per il trasporto in ambienti eterogenei, facilitando notevolmente la loro mobilità e garantendo loro l'accesso a regioni che possono essere difficili o impossibili da raggiungere da sole (ad esempio, a causa di sacche d'aria all'interno del suolo). Diversi dispositivi e protocolli sperimentali sono stati creati per studiare queste autostrade fungine, comprese le colonne autostradali fungine. La colonna autostradale fungina progettata dal nostro gruppo può essere utilizzata per una varietà di applicazioni in situ o in vitro , nonché con diversi tipi di campioni associati all'ambiente e all'ospite. In questo articolo, descriviamo i metodi per eseguire esperimenti con queste colonne, tra cui la progettazione, la stampa, la sterilizzazione e la preparazione dei dispositivi. Qui vengono discusse anche le opzioni per l'analisi dei dati ottenuti dall'uso di questi dispositivi e vengono offerti consigli per la risoluzione dei problemi relativi alle potenziali insidie associate agli esperimenti che utilizzano colonne autostradali fungine. Questi dispositivi possono essere utilizzati per ottenere una comprensione più completa della diversità, dei meccanismi e delle dinamiche dei BFI autostradali fungini per fornire preziose informazioni sulle dinamiche strutturali e funzionali all'interno di ambienti complessi (ad esempio, suoli) e in diversi habitat in cui coesistono batteri e funghi.
Le interazioni batterio-fungine (BFI) sono estremamente importanti nel plasmare le proprietà strutturali, spaziali e funzionali dei microbiomi ambientali. Ad esempio, la crescita e l'espansione di funghi filamentosi o di altri microrganismi filamentosi simili a funghi genera una rete biologica che può funzionare come una "autostrada" per facilitare il movimento di altri microrganismi, come i batteri. L'eterogeneità e la saturazione incoerente all'interno dei substrati ambientali possono ostacolare la motilità batterica; Tuttavia, i batteri possono utilizzare queste autostrade per facilitare l'accesso ad altre aree dell'ambiente 1,2. Queste interazioni sono fondamentali per comprendere le dinamiche spaziali delle comunità microbiche. Diverse tecniche e metodi sono stati utilizzati per esaminare le autostrade fungine, tuttavia, sono in gran parte limitati a indagini di laboratorio 3,4.
In un metodo basato su piastra, un'ampia sezione di agar viene rimossa dal centro della piastra di Petri, creando uno spazio tra due isole di agar. Le ife fungine possono attraversare questo divario, fornendo i mezzi per i batteri compatibili per passare da un'isola di agar all'altra5. Altri metodi modificati della capsula di Petri includono piastre invertite in cui il terreno viene posto nel coperchio in modo che le ife fungine possano crescere verticalmente e colonizzare il terreno senza contatto diretto, fornendo i mezzi per il trasporto batterico 5,6. Un metodo basato su goccioline di terreno di crescita che è stato recentemente sviluppato può essere utilizzato per valutare il trasporto ifale selettivo dei batteri verso determinati profili nutrizionali7. Sono stati utilizzati anche dispositivi a ponte e a sentiero batterico per studiare l'effetto di fattori abiotici sul movimento batterico8. Sebbene siano stati utilizzati diversi metodi e tecniche per studiare le autostrade fungine, rimane la necessità di dispositivi standardizzati che mantengano un microambiente sterile, promuovendo al contempo la creazione di autostrade fungine da substrati ambientali complessi come sterco, suolo e rizosfere.
Il nostro gruppo ha progettato una versione stampata in 3D di colonne autostradali fungine in cui i funghi possono trasportare i batteri da un'estremità all'altra9. Questi dispositivi sono assemblati da quattro componenti stampati: la colonna stessa con una forma a clessidra e una complessa struttura reticolare interna, un anello filettato e due tappi (un tappo grande e un tappo piccolo), nonché un pezzo di rete di nylon sterilizzata (Figura 1). La colonna assemblata viene aggiunta direttamente al substrato ambientale desiderato. La colonna consente quindi ai microbi di colonizzare un tappo del terreno di crescita dell'agar noto come tappo del terreno di coltura "esca" che si trova nella parte inferiore della colonna e a contatto con il substrato ambientale attraverso la rete. Questo pezzo di rete di nylon esclude altri abitanti del suolo che possono trasportare batteri, limitando così il movimento batterico all'interno delle colonne verso le autostrade fungine. Una volta che questo tappo dell'esca è stato colonizzato, i funghi filamentosi possono estendersi e crescere attraverso il reticolo interno all'interno del centro della colonna che è progettato per creare un sistema insaturo che assomiglia al suolo (o altri mezzi insaturi) e ridurre al minimo la potenziale contaminazione dal mezzo dell'esca. I funghi quindi crescono e colonizzano il tappo del mezzo bersaglio nella parte superiore della colonna. Le colonne possono essere inoculate con isolati fungini specifici per testare la loro capacità di trasportare batteri, oppure possono essere lasciate non inoculate per identificare quali funghi del substrato sono in grado di trasportare batteri. Gli organismi che raggiungono il terreno bersaglio possono essere ulteriormente coltivati, isolati e sottoposti ad analisi di sequenziamento (sia da colture pure che da comunità miste utilizzando approcci di sequenziamento ampliconico o metagenomico). Nel complesso, le colonne forniscono un metodo standardizzato, riproducibile, riutilizzabile e intuitivo per interrogare le autostrade fungine in diversi substrati. Questi dispositivi possono essere utilizzati per la ricerca e come strumento didattico in classe e, in questo articolo, forniamo passaggi didattici per il loro utilizzo basati sugli esperimenti eseguiti in passato. Sebbene questo metodo faciliti la standardizzazione del protocollo, la progettazione e la costruzione dei dispositivi possono essere modificate per altre applicazioni e substrati aggiuntivi.
I dettagli dei reagenti e delle attrezzature utilizzate nello studio sono elencati nella tabella dei materiali.
1. Modifica del design, dei materiali e dei parametri della colonna
2. 3D stampa delle colonne
Figura 1: Componenti della colonna fungina dell'autostrada. (A,B) Viste dall'alto e laterali del tappo piccolo, dell'anello filettato e del tappo grande (da sinistra a destra). (C, D) Vista dall'alto e laterale del tappo piccolo. (E,F) Vista dall'alto e laterale dell'anello filettato. (G,H) Vista dall'alto e laterale del tappo grande. (I) Un pezzo di filtro a rete di nylon (25 μm) posizionato all'estremità della colonna e inserito nel substrato ambientale per impedire alla microfauna di entrare nella colonna. (J) Colonna non montata. (K) Colonna assemblata: l'estremità 'Esca' entra nel substrato e l'estremità 'Target' rimane scoperta e fuori dal substrato. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
3. Pulizia dei componenti della colonna stampati in 3D
4. Sterilizzazione delle colonne
5. Preparazione dei supporti per le colonne
Figura 2: Processo di assemblaggio delle colonne autostradali fungine. Utilizzando un'estremità aperta della colonna stessa, viene ritagliato e inserito un tappo e il ricercatore torce la colonna mentre viene rimossa dal supporto per garantire che il tappo rimanga all'interno dell'estremità della colonna. Quell'estremità è chiusa con il pezzo piccolo del tappo. Allo stesso modo, viene quindi aggiunto un connettore multimediale all'altra estremità della colonna. Il pezzo di rete viene quindi posizionato su questa estremità e fissato con l'anello filettato. Il tappo grande viene quindi utilizzato su questa estremità "esca" sopra l'anello filettato. Il lato con la rete verrà inserito nel substrato ambientale. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
6. Preparazione delle colonne autostradali fungine
NOTA: Questa fase deve essere eseguita in una cabina di sicurezza biologica per mantenere la sterilità dei componenti della colonna e dei terreni. La Figura 2 illustra il processo di assemblaggio della colonna fungina dell'autostrada.
7. Pre-inoculare il substrato o il terreno di coltura con un fungo di interesse
NOTA: Questo passaggio è facoltativo.
8. Preparazione dei trattamenti di controllo e delle repliche
9. Aggiunta della colonna al substrato
10. Lasciare la colonna nel substrato
11. Rimozione della colonna dal substrato
12. Coltura di isolati dal mezzo target della colonna
13. Subcoltura per isolare microrganismi
NOTA: Questo passaggio è facoltativo.
14. Estrazione del DNA dalla lastra o direttamente dal mezzo target
15. Valutazione della diversità tassonomica microbica nel terreno bersaglio e/o esca utilizzando approcci di sequenziamento ampliconico o metagenomico
16. Analisi dei dati di sequenziamento
17. Creazione di visualizzazioni aggiuntive dei dati della tassonomia da risultati ampliconi e/o metagenomici
18. Riutilizzo delle colonne
La colonna dell'autostrada fungina completamente assemblata è lunga circa 5 cm (Figura 1). La colonna non deve essere rotta in nessuna area e i cappucci e l'anello filettato devono combaciare facilmente e saldamente per creare microambienti all'interno della colonna. La rete del filtro può estendersi oltre l'anello filettato (come mostrato nella Figura 1 e nella Figura 2), oppure può essere tagliata con forbici sterilizzate. I tappi di agar devono adattarsi perfettamente a ciascuna estremità della colonna. Quando viene posizionata nel substrato, la rete del filtro deve entrare in contatto con il substrato e la colonna non deve essere completamente interrata .
Le colonne sono state precedentemente testate in sterco di cavallo9. Le colonne sono state anche collocate in terreno sfuso e rizosferico in un sito di ricerca, nonché in piccoli volumi di terreno in provette da 50 mL in laboratorio (Figura 3). Dopo che le colonne dell'autostrada fungina sono state rimosse dal substrato e smontate, la crescita microbica era visibile sia sull'esca che sui tappi del terreno bersaglio (esempi mostrati nella Figura 4A). Batteri e funghi sono stati isolati da terreni bersaglio ed esca tramite tecniche di subcoltura (Figura 4B) e i microbi presenti sui tappi dei terreni sono stati identificati tassonomicamente utilizzando il sequenziamento degli ampliconi (Figura 4C, D). Le Figure 4C,D illustrano i risultati combinati del sequenziamento degli ampliconi in più esperimenti, mostrando quali microbi sono stati in grado di raggiungere il tappo del terreno bersaglio dalle colonne aggiunte allo sterco di cavallo9. Le visualizzazioni di questi dati batterici e fungini sono state generate come descritto nel passaggio 17. I risultati possono anche essere visualizzati come abbondanze relative di taxa.
Risultati non ottimali sono stati ottenuti nei casi in cui le colonne sono state aggiunte ad ambienti con umidità estremamente bassa e i tappi dei mezzi sono stati completamente essiccati nel giro di pochi giorni, senza portare al recupero dei microbi colonizzati (Figura 5A). Abbiamo anche visto casi in cui i microbi semplicemente non crescono dal tappo del terreno target (Figura 5B) e casi in cui non recuperiamo dati di sequenziamento sufficienti dal plug del terreno target per analisi significative. Anche altri casi in cui i funghi crescono eccessivamente fuori dalle colonne hanno comportato la necessità di rifare gli esperimenti (Figura 5C).
Figura 3: Esempi di colonne collocate in campioni ambientali in laboratorio e sul campo. (A) Colonna collocata all'interno di una provetta da 50 mL con terreno inumidito in un ambiente di laboratorio. Mostrato anche con un righello per la scala. (B) Colonna collocata nel terreno nel campo. (C) Colonna inserita nella rete radicale di una pianta in campo. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 4: Risultati rappresentativi di esperimenti di successo su colonne. (A) Esempi di tappi di terreni colonizzati estratti da colonne. (B) Esempi di isolati fungini subcoltivati da terreni bersaglio. Il substrato era terra. Da sinistra a destra: Rhizopus azygosporous, Aspergillus novofumigatus, Curvularia subpapendorfii, e Phaeomycocentrospora cantuariensis. (C,D) cladogrammi circolari che mostrano la diversità filogenetica di (C) sequenze ITS fungine e (D) 16S batteriche recuperate dai terreni bersaglio a seguito di molteplici esperimenti sulle autostrade fungine utilizzando sterco di cavallo. Le sezioni sono colorate ed etichettate per phylum, con i nodi terminali che rappresentano generi unici. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 5. Risultati non ottimali dagli esperimenti su colonna. (A) Un esempio di tappo di media essiccato derivante da condizioni ambientali di bassa umidità. (B) Esempio di assenza di crescita microbica da un tappo di terreno di colonna. (C) Esempio di crescita eccessiva del fungo attraverso la parte superiore (mezzo bersaglio) della colonna. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Durante la generazione dei componenti della colonna, la selezione di una stampante 3D e del materiale di stampa può essere modificata in base alla disponibilità e alle proprietà del materiale desiderate17,18. La biocompatibilità, la struttura superficiale, l'autoclavabilità, la capacità di stampare dettagli su scala fine e la relativa trasparenza sono stati tutti considerati nella selezione dei materiali del nostro gruppo. Dovrebbero essere considerate anche altre caratteristiche, come porosità, idrofobicità, parametri di stampa, ecc. Varie resine sono state testate (vedi Tabella dei materiali) prima della selezione finale e molti materiali biocompatibili funzioneranno per la stampa di queste colonne. Il materiale scelto per la costruzione dei componenti della colonna determinerà quali approcci di pulizia, post-polimerizzazione e sterilizzazione devono essere utilizzati. Non tutti i materiali saranno autoclavabili e potrebbero essere necessari luce ultravioletta, candeggina o altre tecniche di sterilizzazione, a seconda delle istruzioni del produttore del materiale. Alcune tecniche di sterilizzazione o pulizia possono anche danneggiare o non essere compatibili con il materiale scelto, quindi è necessario prestare particolare attenzione a queste informazioni da parte del produttore del materiale. Per le stampanti 3D, alcune considerazioni includono il tempo di stampa, la compatibilità dei materiali, le dimensioni della piattaforma di stampa, la tecnologia di stampa e il costo19. I componenti stampati in 3D delle colonne possono essere fragili e rompersi se maneggiati con troppa forza. La filettatura dell'anello e dei cappucci potrebbe non essere sempre allineata esattamente, pertanto si consiglia di stampare e sterilizzare i componenti aggiuntivi prima della fase di assemblaggio, oppure di eseguire una stampa preliminare per verificare in che modo i parametri e il materiale scelto influiscono sulla filettatura. Potrebbe essere necessario regolare le specifiche di progettazione per la filettatura all'interno dei cappucci e dell'anello a seconda del materiale di stampa 3D scelto. Le dimensioni, la complessità del reticolo e altre caratteristiche fisiche possono essere modificate nel software di progettazione CAD prima della stampa. Come progettato, la colonna stessa è alta 4 cm e la struttura reticolare all'interno del centro della colonna ha una cella unitaria di 2 mm, un diametro del montante di 0,5 mm e l'intera altezza del reticolo è di 22 mm9. Questi parametri possono essere regolati se un ricercatore desidera, ad esempio, una struttura reticolare più grande o più complessa. Nel complesso, la produzione stampata in 3D di questi dispositivi consente flessibilità di progettazione, garantendo al contempo che un singolo progetto possa essere utilizzato in modo standardizzato tra organizzazioni e gruppi e persino utilizzato come strumenti didattici in classe9.
Diversi passaggi del protocollo possono richiedere la risoluzione dei problemi a seconda dell'ambiente o della configurazione sperimentale. Le colonne autostradali fungine non sono molto efficaci in condizioni di bassa umidità, poiché i tappi dei terreni si seccano rapidamente prima di facilitare la crescita dei funghi, il che può limitare la durata degli esperimenti in questi ambienti (Figura 5A). Le tecniche che hanno migliorato l'efficacia delle colonne in ambienti a bassa umidità includono l'aumento artificiale dell'umidità attraverso l'aggiunta di umidità al substrato e/o la sigillatura della colonna e del substrato in un contenitore secondario con una fonte d'acqua (ad esempio, un piccolo contenitore di acqua pura). La forma a clessidra e la struttura reticolare sono state incorporate per prevenire il movimento batterico da solo (senza la creazione di un'autostrada fungina) se la condensa dovesse formarsi in ambienti ad alta umidità. I funghi a crescita rapida possono crescere eccessivamente sulla superficie del bersaglio e del terreno di coltura dell'esca ed estendersi dalla parte superiore o inferiore della colonna (Figura 5C). Ridurre il tempo di incubazione del fungo esca o la durata dell'esperimento può ridurre al minimo o eliminare questa crescita eccessiva. Inoltre, una limitazione di questi dispositivi è che i funghi a crescita rapida nel substrato di interesse possono limitare la colonizzazione dell'esca e del terreno bersaglio da parte di funghi a crescita lenta, influenzando potenzialmente le interazioni autostradali osservate. Alcuni funghi, in particolare i funghi a crescita più lenta, potrebbero non colonizzare il terreno di coltura dell'esca in modo da consentire loro di crescere attraverso il tappo dell'agar e nella struttura reticolare. Se c'è sufficiente umidità nell'ambiente, è possibile utilizzare tappi di agar più sottili per incoraggiare la crescita nel reticolo dopo la colonizzazione del tappo di agar esca. I terreni possono essere scelti in base al fatto che un ricercatore voglia selezionare per la crescita fungina o batterica, ma questo può anche limitare la subcoltura agli organismi che preferiscono quel tipodi terreno 20. Se non si osserva alcuna crescita nel terreno di destinazione, potrebbe essere necessario inoculare il terreno di coltura o il substrato con un fungo noto per creare autostrade fungine.
Il sequenziamento metagenomico o ampliconico può essere eseguito come parte di questi esperimenti ed entrambe queste strategie impartiscono i propri limiti e punti di forza21. Il sequenziamento metagenomico è ideale per ottenere ulteriori informazioni genomiche sui microbi. Tuttavia, la quantità recuperabile di acidi nucleici direttamente dal terreno di destinazione può essere molto bassa, il che può richiedere l'utilizzo del sequenziamento degli ampliconi o di altri metodi di amplificazione prima del sequenziamento. Le librerie di sequenziamento degli ampliconi devono essere preparate separatamente (16S e ITS) e questo metodo manca di risoluzione tassonomica e limita qualsiasi valutazione sulle caratteristiche del genoma o sul potenziale funzionale che può essere ottenuta utilizzando il sequenziamento metagenomico. I metodi di sequenziamento diretto dai tappi possono essere preferiti nei casi in cui i microbi non possono essere subcoltivati. Si consiglia di dividere i tappi in più sezioni per consentire approcci sia di coltura che di sequenziamento.
Un vantaggio di questi dispositivi è che possono essere utilizzati sia in laboratorio che sul campo. Particolare attenzione deve essere posta per garantire che le colonne in campo possano rimanere in posizione verticale e siano protette da animali e perturbazioni ambientali che potrebbero disturbarne il posizionamento. Le colonne non sono ancora state testate in posizione orizzontale, in una posizione in cui sono completamente coperte da un substrato, e non sono state testate in ambienti esposti a piogge o neve consistenti. Come affermato in precedenza, la struttura reticolare è stata progettata per ridurre al minimo la probabilità che i batteri siano in grado di spostarsi verso il mezzo bersaglio in ambienti ad alta umidità. Tuttavia, è possibile che se la colonna fosse esposta a volumi d'acqua maggiori e quest'acqua saturasse completamente la colonna, il movimento batterico sarebbe facilitato in tutta la colonna indipendentemente da eventuali autostrade fungine presenti. Per esperimenti di laboratorio, le colonne possono essere utilizzate all'interno di provette coniche da 50 mL, piccoli microcosmi di substrati, nel terreno che circonda le piante in vaso, in scatole o all'interno di altri sistemi sperimentali controllati. Le colonne sono state utilizzate con successo nel suolo, nelle rizosfere e nello sterco e la loro utilità può essere estesa ad altri substrati, tra cui lettiera di foglie, fanghi, sabbia, neve, compost, ecc.
Le colonne dell'autostrada fungina consentono una serie di confronti per comprendere questo fenotipo BFI all'interno di diversi tipi di campioni. Il confronto della composizione della comunità tra l'esca e il terreno bersaglio può indicare quali batteri possono utilizzare le autostrade fungine e quali funghi possono fungere da potenziali autostrade9. Se si utilizza il sequenziamento del metagenoma, è possibile esaminare anche le caratteristiche genomiche che distinguono gli organismi dall'esca rispetto ai mezzi bersaglio. È anche possibile confrontare i mezzi target da colonne posizionate in substrati diversi (ad esempio, terreno o sterco) o posizionate nello stesso substrato in condizioni diverse (ad esempio, temperatura o umidità). Nel complesso, le colonne dell'autostrada fungina espandono le capacità dei metodi precedenti per interrogare questa forma di BFI e consentono esami approfonditi su queste interazioni che modellano le dinamiche spaziali di microbiomi ambientali complessi.
Gli autori non hanno conflitti di interesse da rivelare.
Questa ricerca è stata supportata da una sovvenzione Science Focus Area dal Dipartimento dell'Energia degli Stati Uniti (DOE), Biological and Environmental Research (BER), Biological System Science Division (BSSD) con il numero di sovvenzione LANLF59T.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
50 mL tubes | Greiner BIO-ONE | 5622-7261 | 50 mL tubes for performing column experiments in the lab |
90 mm Petri dishes | Thermo Scientific Nunc | 08-757-099 | Petri dishes for preparation of agar and for microbial growth |
Asiga Freeform Pico Plus 39 digital light processing (DLP) 3D printer | Asiga Germany | Freeform Pico Plus 39 | 3D printer used to generate batches of the columns; other 3D printers can be used |
Autoclave | Fisher Scientific | LS40F20 | Benchtop autoclave to sterilize the column components |
Beaker | Fisher Scientific | FB100600 | 600 mL beaker for various uses throughout the protocol |
Dental LT Clear Resin V2 | Formlabs | RS-F2-DLCL-02 | Alternative resin for 3D printing that was tested |
Dental Surgical Guide Resin | Formlabs | RS-F2-SGAM-01 | Was used to generate the columns discussed in manuscript; Other photosensitive resins can be used in place of this material |
DNA Low Bind 1.5 mL tubes | Eppendorf | 13-698-791 | Tubes used for various preparations including nucleic acid extractions |
DNA/RNA shield preservative | Zymo Research | R1100-50 | Preservative used prior to nucleic acid extractions |
EDGE Bioinformatics | Open source; Developed by the Los Alamos National Laboratory (LANL) | n/a | Bioinformatics platform for processing amplicon data |
FastDNA spin kit for soil | MP Biomedicals LLC | 116560200-CF | DNA extraction kit option for soil |
Forceps | Fisher Scientific | 10-300 | Forceps that can be sterilized |
Formlabs BioMed Clear Resin | Formlabs | RS-F2-BMCL-01 | Alternative resin for 3D printing that was tested |
Formlabs Form 3B+ stereolithography (SLA) 3D printer | Formlabs | Form 3B+ | Alternative 3D printer |
Formlabs IBT Resin | Formlabs | RS-F2-IBCL-01 | Alternative resin for 3D printing that was tested |
Inoculating Loops | Fisher Scientific | 22-363-598 | Used to isolate/transfer microbes |
Malt Extract Agar (MEA) | Criterion | 89405-654 | A media type used in columns |
MiSeq sequencer + MiSeq sequencing kit | Illumina | SY-410-1003 | Can use other sequencers |
Mortar & Pestle | Fisher Scientific | FB961K; FB961A | Can use any common mortar & pestle that can be sterilized between uses |
NEBNext Ultra II DNA Library Prep Kit for Illumina | New England Biolabs | E7805S | Library prep kit for metagenomic sequencing |
Nextera XT DNA Library Preparation Kit (24 samples) | Illumina | FC-131-1024 | Library prep kit for amplicon sequencing |
NMDC EDGE | Open source: Developed by the National Microbiome Data Collaborative (NMDC) | n/a | Bioinformatics platform for processing metagenomic data |
Nylon mesh | Sefar | 03-25/19 | The mesh used as part of the column construction |
Pipette tips | Rainin | 30807966 | Can use many different sterilized pipette tips for the protocol steps |
Potato Dextrose Agar | Cole Parmer | EW-14200-28 | A media type used in columns |
QIIME2 | Open source | n/a | Software for processing amplicon data |
Qubit dsDNA HS assay kit | Thermo Fisher Scientific | Q32851 | Used to quantify DNA after extractions |
Qubit Fluorometer | Thermo Fisher Scientific | Q33238 | Used to quantify DNA after extractions |
Quick-DNA Fungal/Bacterial Miniprep Kit | Zymo Research | D6005 | DNA extraction kit option that works with both bacteria and fungi |
R2A agar | BD Difco | 218263 | A media type used in columns (bacterial media) |
Rack for 50 mL tubes | Fisher Scientific | 03-448-11 | Rack to hold 50 mL tubes upright |
Scissors | Fisher Scientific | 12-000-155 | Fine precision scissors that can be sterilized |
Sodium carboxymethyl cellulose medium | Aldrich | 419273-100G | A media type used in columns |
SolidWorks CAD software | SolidWorks | n/a | Software used to design the columns |
Trowel scoop | Fisher Scientific | S41701 | To make a depression in the substrate prior to adding the column |
UltraPure DNase/RNase-Free Distilled Water | Invitrogen: ThermoFisher Scientific | 10977015 | Water for the ultrasonicator water bath |
Ultrasonicator | Fisher Scientific | FB-11201 | Ultrasonicator for cleaning the columns |
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