ミクログリアによる網膜オルガノイドの組み立て

要約

ミクログリアは、網膜に特異的に存在した免疫細胞であり、さまざまな網膜変性疾患において重要な役割を果たしています。網膜オルガノイドとミクログリアの共培養モデルを作成することで、網膜疾患の病因と発症の進行の理解を深めることができます。

要約

ヒトの網膜へのアクセスが限られているため、網膜オルガノイド(RO)はヒトの網膜疾患を研究するための最良のモデルであり、網膜の発達のメカニズムと網膜疾患の発生を明らかにする可能性があります。ミクログリア(MG)は、網膜および中枢神経系(CNS)に特異的に常在するマクロファージであり、重要な免疫機能を果たしています。しかし、レチナールオルガノイドは、分化の起源が卵黄嚢であるため、ミクログリアを欠いています。これらの網膜疾患におけるミクログリアの特異的な病因は不明のままです。したがって、ミクログリアに組み込まれた網膜オルガノイドモデルの確立が必要であることが判明しました。本研究では、ヒト幹細胞由来のミクログリアを用いたレチナールオルガノイドの共培養モデルの構築に成功しました。本稿では、ミクログリアを分化させた上で、初期段階で網膜オルガノイドに共培養しました。免疫細胞を組み込むこのモデルは、網膜疾患モデリングと薬物スクリーニングに最適化されたプラットフォームを提供し、網膜およびCNS関連疾患の病因と治療に関する詳細な研究を促進します。

概要

ヒト網膜の限られた供給源として、ヒト幹細胞の三次元(3D)網膜オルガノイドへの分化は、網膜¹をシミュレートするための有望なin vitroモデルを表しています。それは、光受容体、網膜神経節細胞、双極細胞、ミュラー細胞、水平細胞、および星状細胞²を含む、網膜内の異なる細胞タイプを含む。このモデルにより、網膜の発達メカニズムと網膜疾患の病因の両方をエミュレートし、研究することができます。しかし、方向性分化法により、網膜オルガノイドは神経外胚葉³に由来し、卵黄嚢のミクログリアや中胚葉の血管周囲細胞など、異なる胚葉に由来する他の多くの細胞型を欠いていました^4,5,6。

現在、網膜色素変性症⁷、緑内障⁸、網膜芽細胞腫⁹など、多くの網膜疾患が網膜内のミクログリアと密接に関連していることが証明されています。しかし、適切な研究モデルがないため、ミクログリアとこれらの疾患との関係を示す具体的なメカニズムはまだ不明です。マウスは網膜疾患の研究に有利なモデルとして機能してきましたが、最近の研究では、寿命、増殖率、およびヒトの相同遺伝子の欠如の点で、マウスとヒトのミクログリアの間に有意な違いがあることが強調されています^10,11。これらの知見は、マウスモデルから導き出された結論が完全に信頼できるわけではないことを示唆しており、ミクログリアを含むヒト網膜オルガノイドを構築することの重要性を強調しています。

過去数十年にわたり、網膜オルガノイドの3D分化のための様々な方法が開発されてきた^12,13。網膜オルガノイド内でのミクログリアの共培養操作を容易にするために、接着培養から浮遊培養への移行を含む分化方法を選択しました。このアプローチにより、ミクログリアを網膜オルガノイドに組み込むことに成功し、少なくとも60日間維持することができます¹⁴。

プロトコル

この研究は、首都医科大学北京同仁病院の制度倫理委員会によって承認されました。HESCs細胞株H9はWiCell Research Instituteに由来します。実験前に、細胞培養培地を室温(RT)で30分間予温します。

1. ヒトミクログリアの生成

1. 細胞密度が80%〜90%に達するまで、幹細胞培地でhESCを培養します。各ウェルに少なくとも1 x 10⁶ 個の細胞を播種します。
2. 幹細胞培地を吸引し、1x DPBS(1 mL/ウェル6ウェルプレート)で細胞をすすぎます。次の手順では、2 x 10^7-1 x 10⁸ セルが必要です。十分でない場合は、2〜5ウェルのセルを組み合わせて、次の手順を実行します。
3. 0.5 mM EDTA溶液を37 °Cインキュベーター(1 mL/ウェル6ウェルプレート)で約5分間使用して、幹細胞コロニーを解離します。
4. 5分後にコロニーの形態を確認します。コロニーの端がわずかに丸まって隙間が緩くなっている場合、細胞は分化してEDTAを吸引する準備ができています。そうでない場合は、細胞を37°Cでさらに1〜2分間インキュベートします。8分以上インキュベートしないでください。
5. 6 mLの培地A(表1)と6 μLの10 mM ROCK阻害剤Y-27632溶液を使用して、各ウェルの細胞を穏やかにすすぎます。皿の底を軽くたたいて、細胞をすすぎます。日を 0 日に設定します。
   注:セルをピペットで動かさないでください。細胞は翌日に胚様体(EB)を形成します。
6. 24時間後、顕微鏡で細胞を観察し、EB形成を確認します。EBを10 mLピペットで15 mL遠心チューブに集め、EBが5分で底に落ち着くのを待ちます。
7. 上清を慎重に吸引し、EBを6 mLの新鮮な培地Aで再懸濁し、6ウェルプレートの新しい低接着ウェルに移します。37°Cのインキュベーターで培養します。
   注:1日目のウェルトランスファーの目的は、細胞増殖の状態に影響を与える可能性のあるEB形成の過程で多数の死細胞の影響を減らすことです。
8. 新鮮な培地Aを4日目まで毎日更新します(6 mL /ウェル6ウェルプレート)。
9. 4日目に、10cmの皿に3mLの0.1%魚ゼラチン溶液を5%CO₂、37°Cのインキュベーターで少なくとも1時間コーティングします。
   注:コーティング時間が1時間未満の場合、次の手順を実行することは困難です。
10. EBを10 mLピペットで15 mL遠心チューブに慎重に収集し、EBが5分で底に落ち着くのを待ちます。
11. 0.1%ゼラチン溶液を取り出し、10cmの皿を5〜6mLの1x DPBSで1回すすぎます。DPBSを取り外します。
12. 15 mLの遠心チューブに15 mLの培地B(表1)でEBを静かに再懸濁し、コーティングされた10 cmディッシュに移します。37°C、5%_CO2 インキュベーターで1週間培養します。
    注意: 最初の7日間は、皿を動かさないでください。
13. 週に一度、49日目まで新鮮な培地B(15 mL / 10 cm皿)でリフレッシュし、週に1回顕微鏡で細胞を検査します。
    注:49日目以降、培養皿の上清にいくつかの分泌細胞が見つかる。
14. 上清細胞を200 x g で室温で5分間遠心分離します。
15. 上清を慎重に吸引し、2 mLの新鮮な培地Bで細胞を再懸濁し、6ウェルプレートの新しい低接着ウェルに移します。5% CO₂, 37 °Cインキュベーターでインキュベートします。
    注意: 次の7日間は、プレートを動かさないでください。ミクログリアは、低接着性の井戸の底に付着する可能性があります。
16. 56日目に、ミディアムC(表1)(2 mL/ウェル6ウェルプレート)と交換します。ミクログリアは低接着ウェルの底に付着し、顕微鏡下で分岐して見えます。
    注:3日ごとにミディアムC(2 mL /ウェル6ウェルプレート)を交換することにより、ミクログリアをミディアムCで約15日間培養することができました。

2. ヒトROsの生成とミクログリアとの共培養

1. 細胞密度が80%〜90%に達するまで、幹細胞培地でhESCを培養しました。各ウェルに少なくとも1 x 10⁶ 個の細胞を播種します。
2. ディスパーゼ(1 mL/ウェル6ウェルプレート)を培養細胞に加えます。37°Cで5分間インキュベートします。ディスパーゼ溶液を井戸から吸引します。
3. ミディアムD(表1)(1 mL/6ウェルプレート入り)をウェルに加えます。10μLのピペットで細胞を細かく切断します。
4. すべての細胞片と培地を1.5 mLの微量遠心チューブに静かに集めます。
5. 200 x g で5分間遠心分離し、上清を除去します。
6. 細胞を200 μLのコールドマトリックスに穏やかに再懸濁します。1.5マイクロ遠心チューブをインキュベーターに20分間移動させます。マトリックスは室温(RT)で固化するため、高速に動作します。インキュベーター内で20分後、マトリックスは固化します。
7. 15 mLのミディアムDで10 cmのディッシュを準備し、ミディアムDでマトリックスを再懸濁し、ペトリディッシュを静かに振ってください。
8. その後、皿をインキュベーターに5日間入れます。プレートを動かさないでください。日を 0 日目 (RO) として設定します。細胞は3日で接着します。
9. 5日目(RO)と10日目(RO)に、ミディアムDでメディウムを更新します。
10. 12日目(RO)に、培地を取り出し、各ディッシュに3 mLのディスパーゼを5分間加えます。
11. ディスパーゼを吸引し、15 mLの培地Eを加えます(表1)。
12. ミクログリアの収穫:56日目(MG)に、Medium Cを穏やかに吸引し、Accutase(1 mL/ウェル、6ウェルプレート)を加え、37°Cで3分間インキュベートします。
13. ミクログリア細胞を5mLピペット付きの15mL遠心チューブに集めます。細胞を200 x g で室温で5分間遠心分離します。
14. 上清を穏やかに吸引し、ミクログリアを1 mLの培地Eで懸濁します。12日目に消化したROにミクログリアを追加します。.
    注:12日目(RO)には、細胞は接着しています。13日目(RO)に、細胞は培地Eに懸濁しているのが見つかります。培地が12日目(RO)から19日目(RO)に黄色に変わった場合は、培地をミディアムEでリフレッシュします。
15. 19日目(RO)に、プレートを静かに回転させることにより、オルガノイドを皿の中央に凝集させます。ミディアムEをやさしく吸引し、ミディアムFでメディウムをリフレッシュします。
16. Medium Fでオルガノイドを新しい懸濁皿に移します。
17. 週に一度培地を交換し、実験用のオルガノイドを選択します。

結果

網膜オルガノイドを生成する手順は、以前の研究¹⁵で説明されています。ここでは、ミクログリアとミクログリアとレチナールオルガノイドの共培養の代表的な結果を示します。

ここでは、ミクログリアの分化の各段階を示します(図1A)。0日目は幹細胞培養の段階を表します。その後、幹細胞を消化し、EB形成のために培養しまし?...

ディスカッション

ヒトの網膜の利用可能性が限られているため、網膜の炎症反応に関する現在の理解は、ほとんど動物モデルから来ています。この制限を克服するために、網膜オルガノイドを分化しました。網膜オルガノイドモデルの開発は、ヒトの網膜の複雑さを再現して疾患モデリングと治療法の開発に役立てることを目的とした活発な研究分野です。いくつかの研究で、ヒト多能性^{幹細胞<...}

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Acctuase	Stemcell Technologies	07920
Advanced DMEM/F12	Thermo	12634-010
Anti-CRX(M02)	abnova	H00001406-M02	Antibody; dilution as per the manufacturer's instructions
Anti-IBA1	Abcam	ab5076	Antibody; dilution as per the manufacturer's instructions
B27	Life Technologies	17105-041
Dispase (1U/mL)	Stemcell Technologies	07923
DMEM basic	Gibco	10566-016
DMEM/F12	Gibco	10565-042
DPBS	Gibco	C141905005BT
EDTA	Thermo	15575020
F12	Gibco	11765-054
FBS	Biological Industry	04-002-1A
Gelatin	Sigma	G7041-100G	Solid
Glutamax	Gibco	35050-061
H9 cell line	WiCell Research Institute
IL-3	RD Systems	203-IL-050
IL-34	PeproTech	200-34-50UG
KSR	Gibco	10828028
Matrix	Corning	356231
M-CSF	RD Systems	216-MC-500
MEM Non-essential Amino Acid Solution	Sigma	M7145
N2	Life Technologies	17502-048
Neurobasal	Gibco	21103-049
Pen/strep	Gibco	15140-122
Stem cell medium	Stemcell Technologies	5990
Taurine	Sigma	T-8691-25G
X-ViVO	LONZA	04-418Q
Y27632	Selleck	S1049
β-mercaptoethanol	Life Technologies	21985-023