本研究は、中国西師範大学(No. 20E059)の博士研究開始基金の財政的支援を受けて行われました。

1. PRRSV遺伝子のテンプレートの調製
<ol><li>1 mLのRNA抽出試薬でウイルスストックを解凍します( 材料の表を参照)。</li>
	<li>クロロホルム0.2mLを加え、よく混ぜます。3分間インキュベートします。</li>
	<li>混合物を12,000 × g 、4°Cで15分間遠心分離します。 注:混合物は、無色の水相、間相、および赤色フェノール-クロロホルム相の3つの相に分けられます。</li>
	<li>無色の水性相をピペットで取り出し、新しいチューブに移します。</li>
	<li>水相を0.5 mLのイソプロパノールと十分に混合し、4°Cで10分間インキュベートします。</li>
	<li>12,000 × g 、4°Cで10分間遠心分離します。 注:チューブの底には白色RNA沈殿物があります。</li>
	<li>マイクロピペットを使用して、チューブの上清を捨てます。</li>
	<li>1 mLの75%エタノールを加えてペレットを再懸濁し、短時間ボルテックスします。</li>
	<li>7,500 × g 、4°Cで5分間遠心分離します。 マイクロピペットを使用して、チューブの上清を捨てます。</li>
	<li>RNAを5分間乾燥させ、RNaseフリーの水20〜50μLを加えてRNAを再懸濁し、十分に混合します。</li>
	<li>逆転写の実行に進みます。 表1に示すように、逆転写を行うように反応を設定します。 注:逆転写を成功させるには、高品質のRNAテンプレートを使用してください。</li>
	<li>得られたcDNAをPCRに使用するか、-20°Cで保存します。</li>
</ol>2. PCRプライマーの設計
<ol><li>フォワードプライマーの設計<ol><li>ソフトウェアを開き、[ 新しいDNAファイル]を選択します。</li>
		<li>NCBIからPRRSV遺伝子配列(GenBank:FJ548852.1)をソフトウェアに貼り付けます。 「OK 」をクリックして、シーケンス・ファイルを生成します。</li>
		<li>配列を解析し、フラグメントジャンクションをマークします。フラグメントの前方特異的配列プライマーを設計します。ほとんどの場合、好ましい融解温度(Tm)は55°C〜62°Cで、GC含有量は40〜60%です。</li>
		<li>プライマーをクリックし、プライマーの追加を選択します。</li>
		<li>特定の配列を貼り付け、ベクターのオーバーラップ配列を特定の配列プライマーの最初の5'ヌクレオチドに追加します。各ジャンクションの近くで、2 つの隣接するフラグメント間のオーバーラップ領域として機能する 20 から 40 bp を選択します。</li>
		<li>オーバーハングと特定の配列を含むフォワードプライマーに名前を付けます( 補足図S1を参照)。</li>
		<li>「テンプレートにプライマーを追加」をクリックします。</li>
	</ol></li>
	<li>リバースプライマーの設計<ol><li>配列を解析し、ソフトウェアでフラグメントジャンクションをマークします。フラグメントの逆特異的配列プライマーを設計します。</li>
		<li>プライマーをクリックし、プライマーの追加を選択します。</li>
		<li>特定の配列を貼り付け、制限部位を特定の配列プライマーの最初の5'ヌクレオチドに添加します。 注:追加する制限部位は、複数のクローニング部位を除き、インサートフラグメントおよびベクターに存在してはなりません。</li>
		<li>20-40 bpのオーバーハング配列を制限部位の最初の5'ヌクレオチドに加えます。</li>
		<li>オーバーハングと特定の配列を含むリバースプライマーに名前を付けます( 補足図S1を参照)。</li>
		<li>「テンプレートにプライマーを追加」をクリックします。</li>
	</ol></li>
</ol>3. フラグメントを増幅するためのPCR
<ol><li>6つの個別のPCR反応を設定します(表2):フラグメント1には、プライマーP1およびP2を使用します( 補足図S2を参照)。フラグメント2については、プライマーP3およびP4を使用します( 補足図S2を参照)。フラグメント3については、プライマーP5およびP6を使用します( 補足図S2を参照)。フラグメント4については、プライマーP7およびP8を使用します( 補足図S2を参照)。フラグメント5については、プライマーP9およびP10を使用します。そして、プライマーP11およびP12を使用してフラグメント6を増幅します( 補足図S2を参照)。 注:使用前に各コンポーネントを解凍し、混合し、短時間遠心分離します。</li>
	<li>表2の3ステップのプロトコルを使用してPCRを実行します。</li>
	<li>1 μL の 6x DNA ローディングバッファーを 5 μL の PCR 産物に添加し、混合し、内容物を短時間遠心分離します。</li>
	<li>1%アガロースゲル電気泳動を使用してサンプルを分析します。</li>
</ol>4. PCRフラグメントの精製
注:ゲル抽出キット( 材料表を参照)を使用してゲルからPCR産物を精製することは、ベクター構築にとって重要です。
<ol><li>45 μLのPCR産物に9 μLの6x DNAローディングバッファーを加えて混合し、内容物を短時間遠心分離します。</li>
	<li>1%アガロースゲル/ゴールドビュー電気泳動を行い、DNA断片を分離します。 注:TAEランニングバッファーは、そのpH値がDNAフラグメントの回収率に影響を与えるため、再利用しないでください。</li>
	<li>バンドを適切に分離したら、鋭利なメスを使用してDNAバンドを慎重に切除します。. 注:余分なアガロースを切り取ることにより、ゲルスライスのサイズを最小限に抑えます。</li>
	<li>清潔な1.5 mLの微量遠心チューブでゲルスライスを秤量し、ゲルスライスに同量の結合バッファー(0.3 mLから0.3 gスライスなど)を加え、60°Cで7分間インキュベートします。</li>
	<li>ミニカラムを2 mLの採取チューブに挿入します。ステップ4.4のDNA/アガロース溶液700μLをミニカラムに加えます。</li>
	<li>10,000 × g で室温で1分間遠心分離します。ろ液を廃棄し、収集チューブを再利用します。</li>
	<li>300 μLの結合バッファーを添加し、13,000 × g で室温で1分間遠心分離します。ろ液を廃棄し、収集チューブを再利用します。</li>
	<li>700 μLの洗浄バッファーを添加し、13,000 × g で室温で1分間遠心分離します。ろ液を廃棄し、収集チューブを再利用します。</li>
	<li>空のミニカラムを最大速度で2分間回転させ、カラムマトリックスを乾燥させます。ミニカラムを清潔な1.5 mLマイクロ遠心チューブに入れます。</li>
	<li>20 μL の脱イオン水を直接カラムメンブレンの中心に加え、室温で 2 分間放置します。13,000 × g の速度で1分間遠心分離します。</li>
	<li>DNAを-20°Cで保存します。</li>
</ol>5. 線形化ベクトルの準備
注:プラスミドを調製した後、選択した酵素を使用してプラスミドを切断できます。長時間の消化または二重酵素消化は、すべてのDNAの消化を確実にするために重要です。これにより、その後の実験で偽陽性のクローンの数が減少します。
<ol><li>pVAX1 線形化
	<ol><li>反応混合物を室温で示された順序で調製します(表3)。 注:示された総反応量を維持するために、水の量を追加する必要があります。ここでは、プラスミド1μgを反応混合物中の酵素で消化しました。プラスミド濃度に応じて、プラスミドの容量を反応混合物中で調整することができます。</li>
		<li>穏やかに混ぜます。その後、スピンダウンします。37°Cのヒートブロックまたは水サーモスタットで60分間インキュベートします。</li>
		<li>ゲル抽出キットを使用して、セクション4のPCRフラグメントの精製と同様のゲル精製を行います( 材料の表を参照)。</li>
	</ol></li>
	<li>pVAX1-F1 線形化 注:pVAX1-F1は、pVAX1の最初のラウンド(NdeIおよび HindIII)とフラグメント1の再結合から得られたベクターです。pVAX1-F2は、pVAX1-F1(NdeI)とフラグメント2の組換えのラウンドから得られるベクターです。pVAX1-F3は、pVAX1-F2(NdeI)とフラグメント3の組換えのラウンドから得られるベクターです。pVAX1-F4は、pVAX1-F3(NdeI)とフラグメント4組換えのラウンドから得られるベクターです。pVAX1-F5は、pVAX1-F4(EcoRVおよび NtoI)とフラグメント5組換えのラウンドから得られるベクターです。<ol><li>各ベクターについて、示された順序で室温で反応混合物を別々に調製します(表3)。</li>
		<li>穏やかに混ぜます。その後、スピンダウンします。37°Cのヒートブロックまたは水サーモスタットで60分間インキュベートします。</li>
		<li>ゲル抽出キットを使用して、セクション4のPCRフラグメントの精製と同様のゲル精製を行います( 材料の表を参照)。</li>
	</ol></li>
</ol>6. 新しいベクターへのサブクローニング
注:50-200 ngのベクターとインサートを使用すると、良好なクローニング効率が得られます。
<ol><li>ExonArtのシームレスなクローニングおよびアセンブリ反応をセットアップします(表4)。滅菌脱イオンH2Oを使用して総反応量を10μLに調整し、混合します。</li>
	<li>反応液をサーモサイクラーで50°Cで15〜60分間インキュベートします。 サンプルを氷上に保存します。 注:インキュベーションを最大60分まで延長すると、組み立て効率が向上する場合があります。</li>
	<li>DH5αケミカルコンピテントセルを氷上で解凍します。</li>
	<li>10 μLのアセンブリ製品をコンピテントセルに加えます。その後、ピペッティングで上下させて穏やかに混合します。</li>
	<li>混合物を氷の上に30分間置きます。</li>
	<li>45°Cで45秒間ヒートショックを行い、チューブを氷上に3分間移します。</li>
	<li>900 μLのSOC培地をチューブに加えます。</li>
	<li>チューブを225rpmで37°Cの振盪インキュベーターで1時間振とうします。</li>
	<li>形質転換反応を6,000 × g で2分間遠心分離します。上清を捨て、細胞を100 μLの新鮮なSOC培地に再懸濁します。</li>
	<li>形質転換細胞懸濁液を別のLBプレートに広げ、50 μg/mLのカナマイシンを入れます。</li>
	<li>すべてのプレートを37°Cで一晩インキュベートします。 各実験プレートから個々の単離コロニーを選択します。</li>
</ol>7. 形質転換体の解析
<ol><li>50 μg/mL カナマイシンを含む 20 μL の LB 培地に 8 つのコロニーを選別します。</li>
	<li>コロニーPCR反応をセットアップし、PCRを実行します(表5)。 注:フラグメント1のコロニーPCR反応には、プライマーP1およびP2を使用します( 補足ファイル1を参照)。フラグメント2については、プライマーP3およびP4を使用します( 補足ファイル1を参照)。フラグメント3には、プライマーP5およびP6を使用します( 補足ファイル1を参照)。フラグメント4については、プライマーP7およびP8を使用します( 補足図S2を参照)。フラグメント5については、プライマーP9およびP10を使用します。プライマーP11およびP12を使用してフラグメント6を検出します( 補足図S2を参照)。</li>
	<li>1 μL の 6x DNA ローディングバッファーを 5 μL の PCR 産物に加え、混合し、内容物を短時間遠心分離します。</li>
	<li>1%アガロースゲル電気泳動を使用して結果を分析します。</li>
	<li>50 μg/mL カナマイシンを含む 5 mL の LB 培地に 1 つの陽性コロニーを選択し、37 °C で一晩増殖します。</li>
	<li>製造元の指示に従って、プラスミドDNAミニキット( 材料表を参照)を使用してプラスミドを入手します。</li>
	<li>1%アガロースゲル電気泳動を使用して結果を視覚化します。</li>
</ol>

pVAX1発現ベクターにおける完全長PRRSV遺伝子のクローニング

<ol>
	<li>Lessard, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+cloning.">Molecular cloning.</a> Methods Enzymol. 529, 85-98 (2013).</li><li>Shetty, R. P., Endy, D., Knight, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineering+BioBrick+vectors+from+BioBrick+parts.">Engineering BioBrick vectors from BioBrick parts.</a> J. Biol. Eng. 2, 5 (2008).</li><li>Horton, R. M., Cai, Z. L., Ho, S. N., Pease, L. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gene+splicing+by+overlap+extension:+tailor-made+genes+using+the+polymerase+chain+reaction.">Gene splicing by overlap extension: tailor-made genes using the polymerase chain reaction.</a> Biotechniques. 54 (3), 129-133 (2013).</li><li>Horton, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PCR-mediated+recombination+and+mutagenesis.+SOEing+together+tailor-made+genes.">PCR-mediated recombination and mutagenesis. SOEing together tailor-made genes.</a> Mol Biotechnol. 3 (2), 93-99 (1995).</li><li>Bang, D., Church, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gene+synthesis+by+circular+assembly+amplification.">Gene synthesis by circular assembly amplification.</a> Nat. Methods. 5 (1), 37-39 (2008).</li><li>Geu-Flores, F., Nour-Eldin, H. H., Nielsen, M. T., Halkier, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=USER+fusion:+a+rapid+and+efficient+method+for+simultaneous+fusion+and+cloning+of+multiple+PCR+products.">USER fusion: a rapid and efficient method for simultaneous fusion and cloning of multiple PCR products.</a> Nucleic Acids Res. 35 (7), e55 (2007).</li><li>Gibson, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enzymatic+assembly+of+overlapping+DNA+fragments.">Enzymatic assembly of overlapping DNA fragments.</a> Methods Enzymol. 498, 349-361 (2011).</li><li>Gibson, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enzymatic+assembly+of+DNA+molecules+up+to+several+hundred+kilobases.">Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases.</a> Nat Methods. 6 (5), 343-345 (2009).</li><li>Cho, J. G., Dee, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome+virus.">Porcine reproductive and respiratory syndrome virus.</a> Theriogenology. 66 (3), 655-662 (2006).</li><li>Holtkamp, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessment+of+the+economic+impact+of+porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome+virus+on+United+States+pork+producers.">Assessment of the economic impact of porcine reproductive and respiratory syndrome virus on United States pork producers.</a> J. Swine Health Prod. 21, 72-84 (2013).</li><li>Thomann, B., Rushton, J., Schuepbach-Regula, G., Nathues, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modeling+economic+effects+of+vaccination+against+porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome:+Impact+of+vaccination+effectiveness,+vaccine+price,+and+vaccination+coverage.">Modeling economic effects of vaccination against porcine reproductive and respiratory syndrome: Impact of vaccination effectiveness, vaccine price, and vaccination coverage.</a> Front Vet Sci. 7, 500 (2020).</li><li>Dwivedi, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+immune+responses+to+porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome+virus+in+pigs+during+early+stage+of+infection+under+farm+conditions.">Evaluation of immune responses to porcine reproductive and respiratory syndrome virus in pigs during early stage of infection under farm conditions.</a> Virol J. 9, 45 (2012).</li><li>Mengeling, W. L., Lager, K. M., Vorwald, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical+consequences+of+exposing+pregnant+gilts+to+strains+of+porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome+(PRRS)+virus+isolated+from+field+cases+of+&amp;#34;atypical&amp;#34+PRRS.">Clinical consequences of exposing pregnant gilts to strains of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus isolated from field cases of &amp;#34;atypical&amp;#34 PRRS.</a> Am. J. Vet. Res. 59 (12), 1540-1544 (1998).</li><li>Dee, S. A., Joo, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+the+spread+of+porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome+virus+in+endemically+infected+pig+herds+by+nursery+depopulation.">Prevention of the spread of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in endemically infected pig herds by nursery depopulation.</a> Vet Rec. 135 (1), 6-9 (1994).</li><li>Dee, S. A., Joo, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strategies+to+control+PRRS:+a+summary+of+field+and+research+experiences.">Strategies to control PRRS: a summary of field and research experiences.</a> Vet Microbiol. 55 (1-4), 347-343 (1997).</li><li>Renukaradhya, G. J., Meng, X. J., Calvert, J. G., Roof, M., Lager, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Live+porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome+virus+vaccines:+Current+status+and+future+direction.">Live porcine reproductive and respiratory syndrome virus vaccines: Current status and future direction.</a> Vaccine. 33 (33), 4069-4080 (2015).</li><li>Conzelmann, K. K., Visser, N., Woensel, P. V., Thiel, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+characterization+of+porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome+virus,+a+member+of+the+arterivirus+group.">Molecular characterization of porcine reproductive and respiratory syndrome virus, a member of the arterivirus group.</a> Virology. 193 (1), 329-339 (1993).</li><li>Han, M. Y., Yoo, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineering+the+PRRS+virus+genome:+Updates+and+perspectives.">Engineering the PRRS virus genome: Updates and perspectives.</a> Vet Microbiol. 174 (3), 279-295 (2014).</li><li>Bryksin, A. V., Matsumura, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Overlap+extension+PCR+cloning:+a+simple+and+reliable+way+to+create+recombinant+plasmids.">Overlap extension PCR cloning: a simple and reliable way to create recombinant plasmids.</a> Biotechniques. 48 (6), 463-465 (2010).</li><li>Wang, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Restriction-based+multiple-fragment+assembly+strategy+to+avoid+random+mutation+during+long+cDNA+cloning.">Restriction-based multiple-fragment assembly strategy to avoid random mutation during long cDNA cloning.</a> J Cancer. 6 (7), 632-635 (2015).</li><li>Zhang, Z. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+economic+impact+of+porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome+outbreak+in+four+Chinese+farms:+Based+on+cost+and+revenue+analysis.">The economic impact of porcine reproductive and respiratory syndrome outbreak in four Chinese farms: Based on cost and revenue analysis.</a> Front Vet Sci. 9, 1024720 (2022).</li><li>Chen, N. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+genetic+diversity+of+Chinese+porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome+viruses+from+2016+to+2019.">High genetic diversity of Chinese porcine reproductive and respiratory syndrome viruses from 2016 to 2019.</a> Res Vet Sci. 131, 38-42 (2020).</li><li>Wang, X. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Salidroside,+a+phenyl+ethanol+glycoside+from+Rhodiola+crenulata,+orchestrates+hypoxic+mitochondrial+dynamics+homeostasis+by+stimulating+Sirt1/p53/Drp1+signaling.">Salidroside, a phenyl ethanol glycoside from Rhodiola crenulata, orchestrates hypoxic mitochondrial dynamics homeostasis by stimulating Sirt1/p53/Drp1 signaling.</a> J Ethnopharmacol. 293, 115278 (2022).</li><li>Hou, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Salidroside+intensifies+mitochondrial+function+of+CoCl2-damaged+HT22+cells+by+stimulating+PI3K-AKT-MAPK+signaling+pathway.">Salidroside intensifies mitochondrial function of CoCl2-damaged HT22 cells by stimulating PI3K-AKT-MAPK signaling pathway.</a> Phytomedicine. 109, 154568 (2023).</li><li>Zhang, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+an+infectious+clone+of+HuN4-F112,+an+attenuated+live+vaccine+strain+of+porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome+virus+high+copy+plasmid.">Generation of an infectious clone of HuN4-F112, an attenuated live vaccine strain of porcine reproductive and respiratory syndrome virus high copy plasmid.</a> Virol J. 8, 410 (2011).</li><li>Ni, Y. Y., Huang, Y. W., Cao, D. J., Opriessnig, T., Meng, X. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+of+a+DNA-launched+infectious+clone+for+a+highly+pneumovirulent+strain+of+type+2+porcine+reproductive+and+respiratory+syndrome+virus:+identification+and+in+vitro+and+in+vivo+characterization+of+a+large+spontaneous+deletion+in+the+nsp2+region.">Establishment of a DNA-launched infectious clone for a highly pneumovirulent strain of type 2 porcine reproductive and respiratory syndrome virus: identification and in vitro and in vivo characterization of a large spontaneous deletion in the nsp2 region.</a> Virus Res. 160 (1-2), 264-273 (2011).</li></ol>

著者は、利益相反を宣言しません。

ギブソンアセンブリ技術は、DNA断片8のアセンブリのためのin vitro組換えベースの分子クローニング法である。この方法により、複数のDNA断片を単管等温反応で環状プラスミドに組み立てることができます。しかし、ギブソンアセンブリ技術の障害の1つは、cDNAからの長いフラグメントの獲得です。長いフラグメントは、多くの理由で正確に増幅するのが困難です。例?...

原核細胞および真核細胞における発現のためのDNAベースの実験ツールを構築するための必須技術として、分子クローニングは実験生物学の非常に重要な要素です。分子クローニングには、インサートDNAの取得、インサートの適切なベクターへのライゲーション、組換えベクターの大腸菌(大腸菌)への変換、および陽性クローンの同定という4つのプロセスが含まれます1。これまで、制限酵素2,3やPCRを介した組換え4,5,6を用いてDNA分子を結合する方法が複数採用されてきました。シームレスクローニング技術として知られる相同組換えは、DNAの1つ以上の断片を配列に依存しない、傷跡のないベクターへの挿入を可能にするクローニング方法のグループです。このテクノロジーには、配列およびライゲーションに依存しないクローニング(SLIC)、シームレスライゲーションクローニング抽出物(SLiCE)、In-Fusion、およびGibsonアセンブリが含まれます。これは、エキソヌクレアーゼを使用してインサートの1本鎖を分解し、ベクターを使用して凝集末端を生成し、in vivo修復またはin vitro組換えのいずれかを使用して、ホスホジエステル結合を形成することによりインサートをベクターに共有結合します。傷跡のない任意のシーケンスで単一のインサートをベクターに結合する能力は非常に魅力的です。さらに、この技術は、配列制限なしに5〜10個のフラグメントを所定の順序で結合する能力を有する。
多くの組換えDNA技術の1つとして、現在最も効果的なクローニング法であるギブソンアセンブリ法7,8は、1つまたは複数の直鎖状DNA断片をシームレスに組み立てるための堅牢でエレガントなエキソヌクレアーゼベースの方法です。ギブソンアセンブリ反応は、5'エキソヌクレアーゼ、高忠実度ポリメラーゼ、および耐熱性DNAリガーゼの3つの酵素の混合物を使用して、等温条件下で行われます。5'-3'エキソヌクレアーゼによって作成される一本鎖3'オーバーハングは、一端で相補性を共有するフラグメントのアニーリングに寄与します。ハイフィデリティポリメラーゼは、dNTPを添加することによりアニールされた一本鎖領域のギャップを効果的に埋め、耐熱性DNAリガーゼはニックをシールして結合DNA分子を形成する8。したがって、この技術的方法は、遺伝子発現ベクターの構築に広く使用されています。
ブタ繁殖呼吸障害症候群(PRRS)は、9歳に関係なく、PRRSVによって引き起こされるブタの生殖障害と呼吸不全を引き起こすウイルス性疾患です。この症候群は、発熱、食欲不振、肺炎、嗜眠、うつ病、呼吸困難として現れます。さらに、一部の流行では、耳の赤/青の変色などの臨床徴候が観察されています。PRRSVはアルテリウイルス科の一員として、尿、初乳、唾液などの体液と直接接触し交換することで、豚肉生産国に広く感染します。米国でのPRRSVの蔓延により、豚肉産業の総経済的損失は、580万頭の雌豚と1億1000万頭の豚の繁殖規模に基づいて、年間約6億6400万ドルと推定されています10,11。動植物衛生検査局の報告によると、ワクチン未接種の豚の49.8%が血清中にPRRSVの存在を示しており12、感染した豚の低レベルのPRRSVは唾液、鼻汁、尿、および糞便13を通じて排泄されます。PRRSVの伝搬を制御するために、複数の戦略が実装されている14,15,16。ワクチンの投与は、完全にウイルス陰性の集団を作り出すための排除手順や、バイオセーフティと管理の改善に加えて、PRRSを制御する効果的な手段です。
PRRSV は、長さが約 15 キロベース (kb) のエンベロープ一本鎖ポジティブセンス RNA ウイルスです。PRRSVゲノムは、少なくとも10のオープンリーディングフレーム(ORF)、短い5'非翻訳領域(5' UTR)、および3'末端のポリ(A)テール(図1A)から構成される(図1A)17。ネガティブストランドRNAウイルスのゲノムは非感染性ですが、ポジティブストランドRNAウイルスのゲノムは感染性です。ウイルスの子孫を生成するためのRNAおよびDNAトランスフェクションには、主に2つの戦略があります18。しかし、RNAゲノムに対応する全長フラグメントをクローニングすることは、感染性クローンの構築に不可欠です。PRRSVゲノムは長く複雑な性質を持つため、PCRによって完全長ゲノムを一度に取得することは容易ではありません。さらに、PRRSV遺伝子の人工合成は効果的な解決策ですが、長いフラグメントの合成にはしばしば費用がかかります。したがって、PRRSV完全長発現ベクトルを得るために、多重挿入相同組換え法19,20によって作成しようと試みた。残念ながら、完全長の遺伝子発現ベクターを得ることはできませんでした。そこで、本研究では、リバースプライマーに適切な制限部位を添加し、数ラウンドの相同組換え反応によりpVAX1-PRRSV発現ベクターを得ることに成功しました。さらに、この方法は、標的遺伝子の欠失または突然変異を達成し、多数のDNA断片を発現ベクターに効率的に結合することもできる。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>1 kb plus DNA Ladder</td>
			<td>Tiangen Biochemical Technology (Beijing) Co., Ltd</td>
			<td>MD113-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2x Universal Green PCR Master Mix</td>
			<td>Rong Wei Gene Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>A303-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agarose</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>9012-36-6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Benchtop Microcentrifuge</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific&#160; Co., Ltd</td>
			<td>FRESCO17</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clean Bench</td>
			<td>Sujing Antai Air Technology&#160; Co., Ltd</td>
			<td>VD-650-U</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNA Electrophoresis Equipment</td>
			<td>Cleaver Scientific&#160; Co., Ltd</td>
			<td>170905117</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNA Loading Buffer (6x)</td>
			<td>Biosharp Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>BL532A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>E. Z. N. A. Gel Extraction kit</td>
			<td>Omega Bio-Tek Co., Ltd</td>
			<td>D2500-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>E.Z.N.A. Plasmid DNA Mini Kit I</td>
			<td>Omega Bio-Tek Co., Ltd</td>
			<td>D6943-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electro-heating Standing-temperature Cultivator</td>
			<td>Shanghai Hengyi Scientific Instrument Co., Ltd</td>
			<td>DHP-9082</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ExonArt Seamless Cloning and Assembly kit</td>
			<td>Rong Wei Gene Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>A101-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ExonScript RT SuperMix with dsDNase</td>
			<td>Rong Wei Gene Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>A502-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FastDigest Eco321 (EcoRV)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific&#160; Co., Ltd</td>
			<td>FD0303</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FastDigest HindIII</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific&#160; Co., Ltd</td>
			<td>FD0504</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FastDigest NheI</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific&#160; Co., Ltd</td>
			<td>FD0974</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FastDigest NotI</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific&#160; Co., Ltd</td>
			<td>FD0596</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gel Doc XR</td>
			<td>Bio-Rad Laboratories Co., Ltd</td>
			<td>721BR07925</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Goldview Nucleic Acid Gel Stain</td>
			<td>Shanghai Yubo Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>YB10201ES03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ice Maker Machine</td>
			<td>Shanghai Bilang Instrument Manufacturing Co., Ltd</td>
			<td>FMB100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Invitrogen Platinum SuperFi II DNA Polymerase</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific&#160; Co., Ltd</td>
			<td>12361010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LB Agar Plate (Kanamycin)</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>B530113-0010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LB sterile liquid medium (Kanamycin)</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>B540113-0001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micropipettors</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific&#160; Co., Ltd</td>
			<td>&#8212;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microwave Oven</td>
			<td>Panasonic Electric (China) Co., Ltd</td>
			<td>NN-GM333W</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Orbital Shakers</td>
			<td>Shanghai Zhicheng Analytical Instrument Manufacturing Co., Ltd</td>
			<td>ZHWY-2102C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PRRSV virus</td>
			<td>Sichuan Agricultural University</td>
			<td>&#8212;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SnapGene</td>
			<td>GSL Biotech, LLC</td>
			<td>v5.1</td>
			<td>To design primers</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T100 PCR Gradient Thermal Cycler</td>
			<td>Bio-Rad Laboratories&#160; Co., Ltd</td>
			<td>T100 Thermal Cycler</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TAE buffer</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>B040123-0010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TRIzol Reagent</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific&#160; Co., Ltd</td>
			<td>15596026</td>
			<td>RNA extraction reagent</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a seamless cloning approach for porcine reproductive and respiratory syndrome virus expression vector construction

遺伝子発現ベクターの構築は、実験生物学における実験室研究の重要な要素です。Gibson Assemblyのような技術の進歩により、ベクトル構築は比較的簡単で効率的になります。しかし、ブタ生殖呼吸器症候群ウイルス(PRRSV)の完全長ゲノムがcDNAからの単一ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって容易に増幅できない場合、または複数のインサートを in vitroで相同組換えして完全長遺伝子発現ベクターを取得することが困難な場合、現在のギブソンアセンブリ技術ではこの目標を達成することができません。
そこで、PRRSVゲノムをいくつかのフラグメントに分割し、リバースプライマーに適切な制限部位を導入してPCR増幅フラグメントを得ることを目指しました。相同組換え技術により、以前のDNA断片をベクターに結合した後、新しいベクターは制限酵素切断部位を獲得した。このように、新たに追加された酵素切断部位を用いてベクターを直鎖化し、上流のDNA断片の下流に次のDNA断片を導入することができます。
上流のDNA断片の3'末端に導入された制限酵素切断部位は排除され、新しい切断部位が下流DNA断片の3'末端に導入されます。このようにして、DNA断片を1つずつベクターに結合することができます。この方法は、PRRSV発現ベクトルをうまく構築するために適用可能であり、多数のフラグメントを発現ベクトルに組み立てるのに有効な方法です。

As an essential technique to construct DNA-based experimental tools for expression in prokaryotic and eukaryotic cells, molecular cloning is a very important component of experimental biology. Molecular cloning involves four processes: the acquisition of insert DNA, ligation of the insert into the appropriate vector, transformation of the recombinant vector into Escherichia coli (E. coli), and identification of the positive clones1. So far, multiple methods have been adopted for joining DNA molecules by using restriction enzymes2,3 and PCR-mediated recombination4,5,6. Homologous recombination, known as seamless cloning technology, is the group of cloning methods, which allows sequence-independent and scarless insertion of one or more fragments of DNA into a vector. This technology includes sequence- and ligation-independent cloning (SLIC), Seamless Ligation Cloning Extract (SLiCE), In-Fusion, and Gibson Assembly. It employs an exonuclease to degrade one strand of the insert and a vector to generate cohesive ends, and either in vivo repair or in vitro recombination to covalently join the insert to the vector by forming phosphodiester bonds. The ability to join a single insert to a vector at any sequence without any scars is very appealing. Furthermore, the technology has the ability to join 5-10 fragments in a predetermined order without sequence restrictions.
As one of many recombinant DNA techniques, the Gibson Assembly technique, currently the most effective cloning method7,8, is a robust and elegant exonuclease-based method to assemble one or multiple linearized DNA fragments seamlessly. The Gibson Assembly reaction is performed under isothermal conditions using a mixture of three enzymes,namely, 5&#39; exonuclease, high-fidelity polymerase, and a thermostable DNA ligase. Single-strand 3&#180; overhangs created by the 5&#39;-3&#39; exonuclease contribute to the annealing of fragments that share complementarity at one end. The high-fidelity polymerase effectively fills the gaps in the annealed single-strand regions by adding dNTPs, and the thermostable DNA ligase seals the nicks to form joint DNA molecules8. Hence, this technical method has been widely used for the construction of gene expression vectors.
Porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) is a viral disease that leads to reproductive impairment and respiratory failure in pigs caused by PRRSV at any age9. The syndrome is manifested as fever, anorexia, pneumonia, lethargy, depression, and respiratory distress. Moreover, clinical signs, including red/blue discoloration of the ears, have been observed in some epidemics. As a member of the family arterivirus, PRRSV is widely transmitted to pork-producing countries by direct contact and exchange of fluids, including urine, colostrum, and saliva. Due to the spread of PRRSV in the United States, the total economic losses of the pork industry have been estimated to be approximately $664 million per year, based on the breeding scale of 5.8 million sows and 110 million pigs10,11. The Animal and Plant Health Inspection Service report shows that 49.8% of unvaccinated pigs show the presence of PRRSV in serum12 and low levels of PRRSV in infected pigs are excreted through saliva, nasal secretions, urine, and feces13. Multiple strategies have been implemented to control PRRSV propagation14,15,16. In addition to elimination procedures to create completely virus-negative populations or improving biosafety and management, administering vaccines is an effective means of controlling PRRS.
PRRSV is an enveloped, single-stranded, positive-sense RNA virus with a length of approximately 15 kilobases (kb). The PRRSV genome consists of at least 10 open reading frames (ORFs), a short 5&#39; untranslated region (5&#39; UTR), and a poly(A) tail at the 3&#39; terminus (Figure 1A)17. The genome of a negative-stranded RNA virus is non-infectious whereas the genome from positive-stranded RNA viruses is infectious. There are two main strategies for RNA and DNA transfection for generating virus progeny18. However, cloning the full-length fragment corresponding to the RNA genome is crucial for the construction of infectious clones. Due to the long and complex nature of the PRRSV genome, the full-length genome cannot be easily obtained through PCR at once. Additionally, although the artificial synthesis of PRRSV genes is an effective solution, the synthesis of long fragments is often expensive. Hence, to obtain the PRRSV full-length expression vector, we attempted to create it by the multiple inserts homologous recombination method19,20. Unfortunately, we were not able to obtain the full-length gene expression vector. Therefore, in this study, we added appropriate restriction sites to the reverse primer and successfully obtained the pVAX1-PRRSV expression vector by several rounds of homologous recombination reactions. Furthermore, this method can also achieve deletion or mutation of target genes and efficiently join a large number of DNA fragments to the expression vector.

著者スポットライト:完全長DNAフラグメントのクローニング技術の探索

ブタ繁殖呼吸器症候群ウイルス発現ベクター構築のためのシームレスクローニングアプローチ

This protocol demonstrates the construction of a lengthy and intricate gene expression vector. When a full-length DNA fragment cannot be obtained by a single PCR from cDNA, or the full-length gene expression vector cannot be obtained by multiple-insert homologous recombination in vitro, this method is applicable. Currently, multiple-insert ligation cloning is used to obtain full-length DNA fragment for cloning into a suitable vector.This method can achieve deletion or mutation of target genes and efficiently join a large number of DNA fragments to the expression vector.

この論文では、連続的に導入された制限部位を介してリバースプライマーを使用して、重複するDNA分子を組み立てて修復する in vitro 組換えシステムを紹介します(図1B)。このシステムは、線形ベクターと、適切な5'伸長配列および制限部位を有するプライマーを用いてPCRによって導入されたオーバーハングを含むインサートフラグメントの調製を含む、単純で効率...

ここでは、インサートの3'末端に適切な制限部位を導入することにより、pVAX1-PRRSV発現ベクターを取得するためのプロトコルを示します。相同組換え技術により、ベクターを直列化し、DNA断片を1つずつベクターに結合することができます。

The construction of gene expression vectors is an important component of laboratory work in experimental biology. With technical advancements like Gibson ...

このプロトコールは、長くて複雑な遺伝子発現ベクターの構築を示しています。cDNAからの1回のPCRで完全長DNA断片が得られない場合、またはin vitroでの複数挿入相同組換えにより完全長遺伝子発現ベクターが得られない場合には、この方法が適用可能です。現在、マルチインサートライゲーションクローニングは、適切なベクターにクローニングするための完全長DNAフラグメントを得るために使用されています。この方法は、標的遺伝子の欠失または突然変異を達成し、多数のDNA断片を発現ベクターに効率的に結合することができます。

a-seamless-cloning-approach-for-porcine-reproductive-respiratory

Research

JoVE Journal

Biology

A Seamless Cloning Approach for Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus Expression Vector Construction

327 ビュー.  China West Normal University. このプロトコールは、長くて複雑な遺伝子発現ベクターの構築を示しています。cDNAからの1回のPCRで完全長DNA断片が得られない場合、またはin vitroでの複数挿入相同組換えにより完全長遺伝子発現ベクターが得られない場合には、この方法が適用可能です。現在、マルチインサートライゲーションクローニングは、適切なベクターにクローニングするための完全長DNAフラ?...