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요약

우리는 비-침략 적 vivo에서 이미징 프로토콜을 간소 하 고 비용 효율적인, L-012, chemiluminescent luminol 아날로그, 시각화 하 고 계량 상처 excisional 마우스 모델에서 생성 된 반응성 산소 종 (선생님)을 활용 하 여 설명 합니다.

초록

반응성 산소 종 (ROS)의 발생, 염증 성 프로세스의 특징 이지만 널리 초과, 산화 스트레스는 암, 동맥 경화, 당뇨병 등 다양 한 병 리 연루. 우리 핵 요인 (erythroid 파생 2)의 그 역 기능으로 나타났습니다 이전-2 (Nrf2) 같은 Kelch 같은 erythroid 세포 유래 단백질 1 (Keap1) 신호 통로 피부 동안 극단적인 선생님 불균형에 이르게 상처 당뇨병에 치유 /. 선생님 수준 상처 치유의 진행의 중요 한 지시자 이기 때문에, 구체적이 고 정확한 정량화 기술 가치가 있습니다. 세포와 조직에서 선생님을 측정 하기 위해 여러 생체 외에서 분석 설명 되었습니다; 그러나, 그들은 단지 샘플 당 단일 누적 측정을 제공합니다. 더 최근에, 단백질 기반 지표 및 이미징 modalities의 개발은 독특한 spatiotemporal 분석에 대 한 수 있다. L-012 (C13H8ClN4NaO2)은 luminol 파생 모두 vivo에서 그리고 생체 외에서 chemiluminescent에 사용할 수 있는 NAPDH 산화 효소에 의해 생성 된 선생님의 탐지. L-012 다른 형광 프로브 보다 더 강한 신호를 방출 하 고 과민 하 고 선생님을 탐지 하기 위한 신뢰할 수 있는 것을 보여줘 왔다. 시간 경과 적용 L 012 촉진 이미징의 희생에 대 한 필요성을 줄이고 전반적인 연구 동물의 수를 감소 하는 동안 염증 성 프로세스에 대 한 귀중 한 정보를 제공 합니다. 여기, 우리는 프로토콜 L 012 촉진 하는 비보에 이미징 excisional 상처 치유 로컬 역 기능 Nrf2/Keap1와 당뇨병 쥐를 사용 하 여 모델에서 산화 스트레스 척도를 활용 하 여 설명 합니다.

서문

염증 성 프로세스를 통해 생성 된 산소 대사 산물 세포 구성 요소1의 파괴적인 변경 뿐만 아니라 다양 한 신호 폭포에 기여 한다. 선생님을 측정에 과민 하 고 특정 기술을 활용 하는 것이 염증 성 프로세스를 공부 및 산화 스트레스의 효과 대 한 중요 합니다. Vivo에서 화상 진 찰은 조직 생활에에서 동적 공간 및 시간 데이터를 제공 하는 기능 때문에 중요 합니다. L-012는 superoxide 음이온에 대 한 매우 민감한 이며 생산 하는 세포, 조직, 및 전 혈1,2,3, 에서 다른 형광 프로브 보다 높은 빛의 강도 합성 chemiluminescent 조사 4. 그것은 성공적으로 고용 되었다 vivo에서 화상 진 찰 murine 모델에 대 한 여러 염증 성 질환, 관절염, colitis5,6을 포함 하 여 공부 하. 그것은 아직 설립된 피부 상처 치유 모델에에서 채택 한다. 생성 된 선생님의 측정은 동등 하 게 다른 조건 하에서 상처 치유의 진행 평가 관련이 있다. 이 방법의 비 침 투 적인 자연과 감도 네요 murine 모델에 걸쳐 상처 치유를 공부 하는 유망 기술.

Nrf2 항 산화 반응과 transcriptional 요소 여러 항 산화 효소8의 발기인 지구에 공통 항 산화 반응 요소 (는)에 대 한 특이성의 주요 드라이버입니다. 산화 스트레스의 부재, Nrf2는 세포질에 연속적으로 그것의 ubiquitination 및 저하를 일으키는 원인이 되는 Keap1에 의해 격리 됩니다. Nrf2/Keap1 통로의 불균형 부적절 한 산화 환 원 항상성 및 산화 스트레스를 증가9의 설정에서 지연된 상처 치유에 연루 되었습니다. 우리가 나타났습니다 이전 Keap1의 Nrf2 활동 증가 자극 하 고 촉진 당뇨병 pathologic 피부 상처 치유의 구조9상처.

여기는 L 012를 이용한 생물 발광 excisional 피부 상처 치유 모델 선생님과 상처 치유 사이 협회를 강조를 위해 중요 하다는 선생님 수준을 측정에 이미징 사용 하는 프로토콜에 설명 합니다. 이 기술은 산화 부담 상처와 즉각적인 주변 내에서 실시간으로 변화를 보여 줍니다. 또한,이 방법은 신속한 개입 및 메커니즘의 평가 대 한 그 영향을 산화 환 원 처리 수 있습니다. 여기 사용 Keap1 최저 모델 산화 환 원 항상성의 복원에 대 한 우리의 전략의 적용 가능성을 평가 합니다. 우리의 기술은 비 침략 적 이며 상처를 방해 하지 않습니다, 때문에 같은 동물 조직학 또는 세포 lysates 기초 더 확실 한 분석을 위해 사용할 수 있습니다.

프로토콜

여기에 설명 된 모든 메서드는 기관 동물 관리 및 사용 위원회의 뉴욕 대학의과 대학에 의해 승인 되었습니다. 모든 마우스는 장벽 뒤에 지 내게 하 고 모든 직원이 적절 한 개인 보호 장비를 착용.

1. 일 0: Excisional 상처 치유의 Murine 모델의 준비

  1. 당뇨병 (Leprdb/db) 쥐, 8-12 주, inhalational 2 %isoflurane 세 anesthetize 각 마우스는 되었습니다 제대로 취 발 패드 핀치 테스트를 사용 하 여 확인 합니다. 건조에서 자극을 방지 하기 위해 각 눈에 메 마른 눈 윤 활 유를 적용 됩니다. 연구원은 isoflurane를 사용 하 여 동물을 마비 하는 때 그들의 기관 수의 직원의 지침을 따라야 한다.
  2. 쥐의 무게 고 각 마우스의 몸 무게를 기록 합니다. glucometer을 사용 하 여 각 동물의 혈액 포도 당을 기록 하 여 동물의 당뇨병 상태를 확인 합니다.
  3. 절차 작업 영역 및 마 취 장비를 소독. 헤어 트리머를 사용 하 여 마우스의 지 느 러 미를 제거 뒤에 멀리 초과 머리를 닦아 머리 제거 로션의 응용 프로그램. 알코올 잎사귀를 사용 하 여 두 번, 노출 된 피부를 청소 하 고 건조를 허용 합니다.
  4. 두 개의 10 m m 전체 두께 상처 치유 기법7,8확고 excisional 상처에 따라 살 균 10 m m 생 검 펀치를 사용 하 여 panniculus carnosus를 통해 확장을 만듭니다. 멸 균 글러브를 사용 하 여 모든 생존 수술에 대 한. 오토 클레이 브 수술과 수술 필드에만 오픈 전에 가방에 모든 수술 기구.
  5. 부 목 상처는 10 m m 원형 배 기판을 가진 0.5 m m 두꺼운 실리콘 시트를 사용 하 여 열고 보안 장소를 사용 하 여 스 텐트 4-0 비단 봉합 중단.
  6. 다음 수술, 마 취에서 동물을 제거 하 고 적절 한 복구를 용이 하 게 하는 패드를가 열에 놓습니다. 메모의 절차 동안, 동물 체온 감소 하는 경우 동물 이동할 수 있습니다가 열 패드를 이전 마 취 몸 열 손실을 최소화 하기 위해. 깨어 및 모바일 때까지 동물을 모니터링 합니다.
  7. 일단 완 치, 개별 감 금 소, 음식 및 물 (수술 농축에 대 한 감 금 소의 바닥에는 어떤 음식을 확인)에 동물을 반환 합니다. 2 주 동안 추가 중첩 물자 났습니다 종이 타 올을 제공 합니다. 불리 한 상호 작용 및 상처 치유 상태에 변화를 방지 하기 위해 다른 동물 들과 함께 수술을 받은 동물을 집 하지 마십시오.
  8. 수술 후 통증 완화를 위해 주사 마우스 피하 buprenorphine 0.1 mg/kg의 몸 무게에서 함께 하루에 두 번, 3 일에 대 한 절차에 따라 즉시 시작.

2. 주 1: Keap1 siRNA의 준비

참고: 캐비닛 biosafety 안에 모든 치료를 준비 합니다.

  1. 얼음에 1.5 mL microcentrifuge 튜브에 감소 된 혈 청 매체의 37.5 µ L 12.5 µ L 20 µ M Keap1 siRNA (siKeap1)의 (250 pmol)와 결합 하 여 siRNA 희석을 준비 합니다.
  2. 1.5 mL microcentrifuge 튜브에서 liposome 믹스의 25 µ L로 감소 된 혈 청 매체의 25 µ L를 결합 하 여 liposome 희석을 준비 합니다.
  3. 50 µ L liposome 희석 dropwise (1:1 볼륨)에 siRNA 희석의 50 µ L을 추가 하 고 부드럽게 혼합.
  4. 실 온에서 20 분 동안 품 어.
  5. 물에 2% 스 젤의 50 µ L을 추가 하 고 아래로 pipetting으로 부드럽게 혼합.
  6. 난센스 시NS (제어)와 함께 각 동물을 치료 또는 시Keap(실험적인) 1. 상처의 정상에 젤을 적용 합니다. 투명 필름 드레싱 유지 하 젤, 이동성을 유지 하기 위해 무료로 사지를 유지 동물의 몸통을 감싸 줍니다.

3. 주 3: L-012 솔루션의 준비

참고: 캐비닛 biosafety에 모든 시 약을 준비 합니다.

  1. 1.5 mL microcentrifuge 튜브, 0.5 mg/100 mL의 농도에서 1 X PBS에 L-012을 준비 합니다.
  2. 수동으로 소용돌이 microcentrifuge 튜브입니다. 그러나 L-012 않습니다 하지 완전히 용 해는 PBS에 액체에 균등 하 게 중단 되어야 합니다. 메모의 해산 다음 주입 방해 생리 전해질 균형을 피하기 위해 물에 L-012 시도 하지 마십시오.
  3. 27 G 바늘을 사용 하 여 1 mL 주사기로 솔루션을 전송 합니다.
    참고: 빛에서 L-012 솔루션을 보호 해야 합니다.

4. 주 3: Vivo에서 화상 진 찰 당뇨병 상처의

  1. Inhalational 2 %isoflurane 마우스 anesthetize 연구원은 isoflurane를 사용 하 여 동물을 마비 하는 때 그들의 기관 수의 직원의 지침을 따라야 한다. 각 마우스는 되었습니다 제대로 취 발 패드 핀치 테스트를 사용 하 여 확인 합니다. 건조에서 자극을 방지 하기 위해 각 눈에 메 마른 눈 윤 활 유를 적용 됩니다.
  2. 부드럽게 상처를 방해 하지 않고 쥐에서 투명 필름 드레싱을 제거 합니다.
  3. 그들의 각각 명령에 이미징 챔버에는 마우스를 놓습니다. 챔버에 적절 한 O2 수준을 유지 하려면 1.0 L/분 이미징 시스템 유입 및 유도 챔버 O2 레벨을 설정 합니다.
  4. 생물 발광와 L-012 화합물의 주입 하기 전에 기준선에서 사진에 대 한 마우스를 이미지.
  5. 알코올 잎사귀와 복 부를 닦 고 건조 허용. 5 mg 200 g 몸 무게 27-게이지 바늘을 사용 하 여 당에 L-012 해결책의 복 주사를 수행 합니다. 예를 들어 마우스 무게 20 g L-012의 0.5 mg을 받아야 한다.
  6. L-012 주입 직후 다시 이미징 약 실에 있는 그들의 각각 위치에에서 쥐를 놓습니다. 4 분 간격으로 1 분간 60 분 동안 쥐를 이미지. 선생님의 수준 결정에 대 한 관심의 영역으로 10 mm 상처를 정의 합니다.
  7. 다음 수술, 마 취에서 동물을 제거 하 고 적절 한 복구를 용이 하 게 하는 패드를가 열에 놓습니다. 깨어 및 모바일 때까지 동물을 모니터링 합니다.
  8. 일단 완 치, 1.6에서 설명한 동일한 수술 농축 환경 유지, 개별 연습장에 동물을 반환 합니다. 불리 한 상호 작용 및 상처 치유 상태에 변화를 방지 하기 위해 다른 동물 들과 함께 수술을 받은 동물을 집 하지 마십시오.

결과

설립된 excisional 상처 모델 (그림 1A), 양자 상처를 만든 후 3 일 당뇨병 쥐 이미징 챔버에 배치 됩니다. 초기 사진 그리고 생물 발광의 측정 L-012의 주입 하기 전에 배경 신호 (그림 1B)에 대 한 계정에 찍힌다. L-012 솔루션 복 주입, 따라 쥐 챔버에 재배치 됩니다 및 생물 발광 선생님 탐지 되는 상처의 영역에서 시각화 (

토론

선생님을 측정 하기 위한 일반적인 기법 조직 추출 또는 침략 적 기술이 필요로 하는 복잡 한 프로토콜에 의해 제한 되어 있다. 최근 몇 년 동안, 산화 스트레스의 측정 spatiotemporal 평가9,,1011에 대 한 수 있도록 혁신적인 이미징 형식에 근거 하 여 보고 되었습니다. L-012는 luminol, lucigenin, 및 MCLA1,

공개

우리는 아무 공개 보고 있다.

감사의 말

우리는 전 임상 이미징 코어는 NYU의과 대학에, 올랜도 Aristizabal와 유세 프 Zaim Wadghiri 특별 한 감사. 핵심은 부분적으로 라와이 삭 단 암 센터 지원 그랜트 NIH/NCI 5P30CA016087 및 NIBIB 생물 의학 기술 리소스 센터 그랜트 NIH P41 EB017183에서 지 원하는 공유 자원 이다. 이 작품은 DC [1-16-에이스-08 부여 번호]와 홍보에 NYU 적용 연구 지원 기금에 미국 당뇨병 협회 "통로를 중지 당뇨병"에 의해 지원 되었다

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
BKS.Cg-Dock7m+/+ Leprdb/J miceJackson Laboratories000642
13 cm x 18 cm Silicone sheet (0.6 mm)Sigma Aldrich 665581
3M Tegaderm Transparent Film Dressings3M88-1626W
Lipofectamine 2000 Transfection ReagentLife Technologies 11668027
Keap1 Stealth siRNAThermofisher Scientific1299001
Silencer negative control Thermofisher Scientific AM4635
Opti-MEM Reduced SerumThermoFisher Scientific11058021
DPBSThermoFisher Scientific14040133
Methyl-cellulose Sigma Aldrich9004-67-5
L-012Wako Chemicals120-04891
IVIS Lumina III XR In Vivo Imaging System PerkinElmer

참고문헌

  1. Nishinaka, Y., et al. A new sensitive chemiluminescence probe, L-012, for measuring the production of superoxide anion by cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. 193 (2), 554-559 (1993).
  2. Daiber, A., et al. Measurement of NAD(P)H oxidase-derived superoxide with the luminol analogue L-012. Free Radical Biology and Medicine. 36 (1), 101-111 (2004).
  3. Imada, I., et al. Analysis of reactive oxygen species generated by neutrophils using a chemiluminescence probe L-012. Analytical Biochemistry. 271 (1), 53-58 (1999).
  4. Sohn, H. Y., Gloe, T., Keller, M., Schoenafinger, K., Pohl, U. Sensitive superoxide detection in vascular cells by the new chemiluminescence dye L-012. Journal of Vascular Research. 36 (6), 456-464 (1999).
  5. Fuchs, K., et al. In vivo Hypoxia PET Imaging Quantifies the Severity of Arthritic Joint Inflammation in Line with Overexpression of Hypoxia-Inducible Factor and Enhanced Reactive Oxygen Species Generation. The Journal of Nuclear Medicine. 58 (5), 853-860 (2017).
  6. Asghar, M. N., et al. In vivo imaging of reactive oxygen and nitrogen species in murine colitis. Inflammatory Bowel Diseases. 20 (8), 1435-1447 (2014).
  7. Galiano, R. D., Michaels, J. t., Dobryansky, M., Levine, J. P., Gurtner, G. C. Quantitative and reproducible murine model of excisional wound healing. Wound Repair and Regeneration. 12 (4), 485-492 (2004).
  8. Soares, M. A., et al. Restoration of Nrf2 Signaling Normalizes the Regenerative Niche. Diabetes. 65 (3), 633-646 (2016).
  9. Wang, X., et al. Imaging ROS signaling in cells and animals. Journal of Molecular Medicine. 91 (8), 917-927 (2013).
  10. Kielland, A., et al. In vivo imaging of reactive oxygen and nitrogen species in inflammation using the luminescent probe L-012. Free Radical Biology and Medicine. 47 (6), 760-766 (2009).
  11. Balke, J., et al. Visualizing Oxidative Cellular Stress Induced by Nanoparticles in the Subcytotoxic Range Using Fluorescence Lifetime Imaging. Small. , (2018).
  12. Zielonka, J., Lambeth, J. D., Kalyanaraman, B. On the use of L-012, a luminol-based chemiluminescent probe, for detecting superoxide and identifying inhibitors of NADPH oxidase: a reevaluation. Free Radical Biology and Medicine. 65, 1310-1314 (2013).
  13. Dikalov, S. I., Harrison, D. G. Methods for detection of mitochondrial and cellular reactive oxygen species. Antioxidants & Redox Signalling. 20 (2), 372-382 (2014).
  14. Rabbani, P. S., et al. Targeted Nrf2 activation therapy with RTA 408 enhances regenerative capacity of diabetic wounds. Diabetes Research and Clinical Practice. 139, 11-23 (2018).
  15. Rabbani, P. S., et al. Novel lipoproteoplex delivers Keap1 siRNA based gene therapy to accelerate diabetic wound healing. Biomaterials. 132, 1-15 (2017).

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