우리는 FACS 정렬과의 도움을 박사 Yitzchak Oschry 박사 Orit Sagi - Asif 감사드립니다. 이 연구는 보조금 협정 N 아래에있는 유럽 연합 (EU) 세븐 프레임 워크 프로그램 (FP7/2007-2013)에서 NE에 대한 교부금에 의해 지원되었다 ° [276890] 이스라엘 암 협회 (# 20110078)에서와 이스라엘 암 연구 기금 (연구에서 경력 개발 상).

1. 마우스에서 유방이나 피부 조직을 박리 <ol><li> 마우스에서 원하는 조직을 해부하기 전에 다음과 같은 용품 및 시약을 준비 : 공급 : <ul><li> 수술 도구 (세제로 세척 한 후 70 % 에탄올에 담근). </li><li> 스티로폼 표면은 절개 중에에 마우스를 말이다. </li><li> 핀이나 바늘은 절개 중에 쥐를 개최합니다. </li><li> 자기 저어 바 (autoclaved)를 포함하는 소화 뚜껑 유리 항아리. </li><li> 37 번 물을 욕조 ° C, 저어 판에 쉬고있는 동안, 잠수함 자기 교반기와 잠수함 소화 병을 할 수있을만큼 물을 포함. </li></ul> 시약 : <ul><li> FACS 버퍼 I : (4 ° C) : Dulbecco의 인산이 (칼슘 마그네슘 무료) 식염 CMF 버퍼 + 0.5 % BSA </li><li> Collagenase 솔루션 (바로 사용하기 전에 한) : 0.05 g Collagenase II 0.05 g Collagenase IV 0.01 g의 Deoxyribonuclease 20ML FACS 버퍼 I.는 사용까지 얼음에 collagenase 솔루션을하세요. </li><li> PharmLyse (염화 암모늄의 Lysing 시약). </li><li> FACS 버퍼 II : Dulbecco의 인산이 식염 CMF 버퍼 + 1% FCS합니다. </li></ul></li><li> 유방 땀샘의 해부 (또한 17 참조). <ul><li> 이산화탄소 (CO 2) 흡입을 사용하여 여성의 쥐를 안락사시켜야. </li><li> 스티로폼 표면에서의 뒷면에 마우스를 놓고 단단히 25 게이지 바늘 (그림 1A)를 사용하여 사지를 핀. 70 %의 에탄올과 넉넉한 마우스를 스프레이. </li><li> 집게를 사용하여 중간 선에서 복부 피부를 당겨와 날카로운 가위로 작은 절개를합니다. </li><li> 복부 나 가슴 충치를 펑 쳐링 피하는 동안 절개부터, 동물의 목에 피부를 잘라. </li><li> &quot;Y 모양&quot;의 ​​결과로, 다리에 대한 중간 선 절개의 후면 다리에 피부를 잘라. </li><li> 마우스 몸에서 떨어진 피부를 당겨 아래로 핀, 노출유방 땀샘은 피부의 아래쪽 (그림 1B)에 부착. </li><li> 마우스의 척추를 향해 유선을 분리하는 작은 날카로운 가위로 결합하는 조직을 절단하면서 부드럽게 피부의 유방 땀샘을 분리하는 Q-팁을 사용하십시오. </li><li> 복부 분비 (# 4, 5)이 프로토콜에 가장입니다. 당신은 또한 2 차 유선을 사용하지만, 이러한 분비는 해부학 적 혼합 조직 출신 세포의 결과로, 별도의하기 어려운 경우도 있습니다 pectoralis 근육 가까이에있는 것을 명심 수 있습니다. </li><li> 참고 : 종양 조직을 해부 할 때,이 괴사 영역을 제거하는 것이 좋습니다. </li></ul></li><li> 피부 조직의 해부 : 머리 제거 처리 할 필요없이, 피부 조직을 취득하는 가장 쉬운 방법은 마우스 귀를 사용하는 것입니다. 조직의 큰 금액이 필요한 경우, 당신은 마우스 몸에서 머리를 면도하고 피부를 해부 할 수 있습니다. <ul><li> CO 2 흡입을 사용하여 쥐를 안락사시켜야. </li><li> 날카로운 가위를 사용하여 얼음에 PBS의 작은 볼륨 (~ 0.5 ML)를 포함하는 소화 병에 즉시 귀 및 장소를 모두 잘라. </li></ul></li></ol> 2. 유선 / 피부 단일 세포 현탁액의 준비 <ul><li> 유방 땀샘 / 얼음 PBS의 작은 볼륨을 포함하는 소화 병의 피부를 놓습니다. 조직 한 다음 PBS로 세척을 피 X2이며, 경우 초과 PBS를 폐기하십시오. </li><li> 곡선 가위로 철저하게 이기다. </li><li> 20 ML의 collagenase 솔루션 (참고 : collagenase 솔루션의 양이 효율적으로 15 쥐 최대의 유방이나 종양 조직과 귀를 약 5g을 떼어 놓다 것)을 추가합니다. </li><li> 37 판을 저어에 즉시 배치 ° 15 분에 C 물 욕조 및 품다 중간 속도로 교반하면서. </li></ul> 참고 : 다른 조직을 소화하는 경우 최적의 배양 시간이 다를 수 있습니다. <ul><li> 반응을 중지하려면, 30 ML 차가운 DMEM + 10% FCS를 추가합니다. </li><li> 조직 / 미디어 혼합을 통해서 스트레인헥타르 70 μm 전지 스트레이너는 50 ML 원뿔 튜브의 상단에 위치. </li><li> 4에 450 XG에서 5 분의 원추형 튜브를 원심 분리기 ° C. </li></ul> 3. 적혈구의 용해 참고 :이 희생되기 전에 쥐가 PBS로 마음 perfused 있다면이 단계가 필요하지 않습니다. <ul><li> 세포 펠렛을 방해하지 않으면 서, 진공에 부착 된 유리 피펫을 사용하여 표면에 뜨는을 대기음. </li><li> 상온에서 5 분 10 ML의 PharmLyse 솔루션과 배양에 RBC, resuspend 세포 펠렛을 lyse합니다. </li><li> FACS 버퍼 I.의 약 40 ML을 추가하여 PharmLyse 솔루션을 중화 </li><li> 4 ° C.에서 450 XG에서 5 분을위한 세포와​​ 원뿔 튜브를 스핀 </li><li> 표면에 뜨는을 대기음. </li></ul> 4. 내생 FC의 차단 <ul><li> 선택 사항 : 다음 단계에 해당하는 양을 결정하는 셀 수. </li><li> 1-3 ML FACS 버퍼 I에 Resuspend 세포 (O를 따라사용하려는 N 셀 번호 및 항체의 양). </li><li> 1시 50분 희석 (10 μg / ML)에 도달하고, 10-20 &#39;을 얼음에 품다 할 FcBlock (안티 - 마우스 CD16/CD32)를 추가합니다. 아니오 FcBlock 씻어 필요가 없습니다. </li></ul> 5. 더럽히는 것 <ul><li> 해제 - 스테인드 제어 및 단일 색상 컨트롤 (사용 형광 항체의 수에 따라)으로 사용할 eppendorf 튜브에 100 μl aliquots을보십시오. </li><li> 라벨 섬유 아세포로 : 1시 50분의 희석 (10 μg / ML)에 (형광에 직접 복합) 방지 PDGFRα를 추가합니다. </li><li> 다른 세포 집단 (예를 들면 면역 세포, 대 식세포, 내피 세포 등) 라벨 : 1시 50분 희석에, 표면 마커에 적절한 휘황 복합 항체를 추가합니다. </li></ul> 참고 : PDGFRα는 섬유 아세포에 대한 강력한 마커이지만, 그것은 어떤 이중 긍정적를 제외하기 위해 면역 세포와 상피 세포에 대한 항체를 포함하는 것이 좋습니다인구 및 따라서는 고립 된 섬유 아세포의 순도를 향상시킬 수 있습니다. <ul><li> 단일 색상 제어 eppendorf 튜브의 각 각 항체의 2 μl를 추가합니다. </li><li> 어둠 속에서 얼음에 1 시간에 대한 항체와 세포를 배양. </li><li> 세탁 방법은 다음과 같습니다 FACS 버퍼 I와 튜브를 작성하여 4 ° C.에서 450 XG에서 5 분에 스핀 </li><li> 약 2 X 10 6 세포 / ML, 또는 중 사용 가능한 FACS의 정렬과 정렬을위한 가장 적합한 농도의 농도에 I를 버퍼링 FACS에 표면에 뜨는, resuspend 세포를 대기음. </li></ul> 선택 사항 : 셀이 분류의 기간 동안 FACS 버퍼 II에 resuspended 될 수 있습니다. 이 세포 생존 능력을 향상시킬 수 있습니다. 그러나, 혈청의 요인에 노출, 테스트 및 고려해야 효과 유전자 발현을 할 수 있습니다. <ul><li> 셀 clumps을 방지하기 위해 튜브에 필터 셀 : 필터 상단으로 FACS 튜브에 표시된 셀을 전송합니다. </li><li> 죽은 세포를 제외하려면 7AAD을 (0.5 μg / ML) 추가 또는 형샘플에 idium의 요오드화물 (PI) (을 취소 스테인드 제어 제외). </li></ul> 참고 : 셀을 낭비하지 않도록하려면 FACS에 기록 후 해제 - 스테인드 샘플에 7AAD/PI을 추가하고 7AAD 전용 컨트롤로 다시 사용할 수 있습니다. <ul><li> 분석하는 동안 얼음에 샘플을 보관. </li></ul> 6. FACS에 의한 세포의 분리 (참고 : 프로토콜의이 부분은 ​​FACS의 정렬, 예를 들어 BD FACS AriaII, 또는 숙련 된 기술자의 도움을 운영에 이전 지식을 필요). <ul><li> FACS 정렬 소프트웨어 (BD ​​FACSDiva)를 사용, 앞으로 분산 (FSC), 측면 분산 (SSC), 7AAD, FITC, PE 및 레이블 셀 (그림 2)에 사용되는 다른 형광을 분석하기 위해 적절한 분석 음모를 준비합니다. </li><li> 셀 정렬 각 샘플을로드하기 전에 소용돌이가 간단히 세포를 resuspend합니다. </li><li> cel에서 게이트로, 총 세포 인구의 게이팅을 설정하기 위해 흠없는 샘플을 분석하여 시작난 파편, 그리고 autofluorescence이나 배경 착색을 결정합니다. </li><li> 전체 세포 인구에서 라이브 세포의 인구를 결정하고 게이트 흠없는 샘플 + 7AAD를 분석합니다. </li><li> 이러한 보상 등의 매개 변수를 결정하고 보정 각 단일 색상 제어를 분석합니다. </li><li> 정렬 게이트의 위치를​​ 정의하기 위해 스테인드 샘플을 분석합니다. </li><li> 일단 원하는 세포 인구에 대한 매개 변수 및 문이 설정되었으며, eppendorf 튜브 나 문화 매체 또는 RNA의 용해 버퍼를 (예 : RLT 버퍼 또는 Trizol 등)가 포함 된 15 ML 원뿔 튜브에 표시된 셀 인구 정렬 시작합니다. </li></ul> 참고 : 셀의 많은 정렬하는 경우가 세포 용해 버퍼를 희석하고 수율을 줄일 수 있습니다 동반 피복 유체의 큰 볼륨으로, RNA의 용해 버퍼에 직접 정렬하는 것은 권장하지 않습니다. <ul><li> 신선한 중간이나 RNA의 용해 버퍼 드에 정렬이 완료 된 후 다운 즉시 세포를 회전 및 이동실험의 목적에 대기 중입니다. </li><li> 문화 절연 셀에 순서대로 정렬하면 멸균 정렬을 수행합니다. 세포의 더 나은 복구를 들어, 페놀 레드 무료 DMEM + 5퍼센트 FCS 대신 FACS 버퍼 II를 사용하여 20 % FCS와 문화 매체에 세포를 수집합니다. </li><li> 배양은 섬유 아세포를 정렬하면 자신의 유전자 표현의 변화로 이어지는 섬유 아세포의 활성화에이 결과로 플라스틱 콜라겐 코팅 접시에 alwaysplate 결코 직접적으로. </li></ul>

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관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

조직 문화에 실험을 유익하게 생체에서 확인 할 수 있습니다 기능 원리를 제안 할 수 있지만, 그것은 문화 11,12의 세포의 유전자 발현에 큰 변화가 발생하는 것으로 알려져 있습니다. 섬유 아세포의 유전자 발현 프로파일 링 할 때 조직 문화 단계를 피하기 위해, 우리는 할 수 있습니다 신선한 마우스 또는 인체 조직의 정상뿐만 아니라 암 관련 섬유 아세포의 분리.에게 프로토콜을 ?...

<table border="1"&gt;<tbody&gt;<tr&gt;<td<strong시약의&gt; 이름</strong</td&gt;<td<strong&gt; 회사 소개</strong</td&gt;<td<strong&gt; 카탈로그 번호</strong</td&gt;<td<strong&gt; 코멘트 (선택 사항)</strong</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; DMEM</td&gt;<td&gt; Gibco</td&gt;<td&gt; 41,965</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; PBS</td&gt;<td&gt; 생물 산업</td&gt;<td&gt; 02-023 - 1A</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; Col​​lagenase II</td&gt;<td&gt; 워싱턴</td&gt;<td&gt; LS4176</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; Col​​lagenase IV</td&gt;<td&gt; 워싱턴</td&gt;<td&gt; LS4188</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; Deoxyribonuclease</td&gt;<td&gt; 워싱턴</td&gt;<td&gt; LS2007</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; PharmLyse</td&gt;<td&gt; BD</td&gt;<td&gt; 555899</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; 셀 스트레이너 70 μm</td&gt;<td&gt; SPL</td&gt;<td&gt; 93,070</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; 정화 안티 - 마우스 CD16/CD32</td&gt;<td&gt; BD Pharmingen</td&gt;<td&gt; 553142</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; 비아 프로브 (7AAD)</td&gt;<td&gt; 전자 Bioscience</td&gt;<td&gt; 00-6993-50</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; 안티 - 마우스 CD140a-PE (PDGFRa)</td&gt;<td&gt; 전자 Bioscience</td&gt;<td&gt; 12-1401-81</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; 안티 - 마우스 F4/80- FITC</td&gt;<td&gt; Cederlane</td&gt;<td&gt; CL8940F</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; DMEM w / O 페놀 레드</td&gt;<td&gt; Gibco</td&gt;<td&gt; 31,053</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; 콜라겐 유형 I</td&gt;<td&gt; BD Biosciences</td&gt;<td&gt; 354236</td&gt;<td</td&gt;</tr&gt;</tbody&gt;</table

isolation of normal and cancer-associated fibroblasts from fresh tissues by fluorescence activated cell sorting (facs)

암 관련 섬유 아세포은 (CAFs) 특히 유방 암에, 많은 암의 종양 기질 내에서 가장 눈에 띄는 세포 유형으로, 그들의 눈에 잘 띄는 존재는 종종 가난한 예후 (豫后)의 1,2와 연결되어 있습니다. CAFs는 stromal 섬유 아세포의 활성화 subpopulation 있으며, 그 중 많은 myofibroblast 표시 α-SMA 3 표현한다. CAFs 지역 조직 섬유 아세포에서뿐만 아니라 골수 유래 세포 개발 종양으로 모집하고 종양 microenvironment (4)의 영향 아래 CAF의 표현형을 채택에서 유래. CAFs는 종양 세포 증식, 혈관 신생, 그리고 침략 5-8을 조장하는 신호를 통해 ​​종양 개시, 성장과 진행을 촉진하기 게재되었습니다. 우리는 CAFs는 초기 사전 neoplastic 단계 9시 시작, 종양 - 홍보 염증을 중재하여 종양 성장을 향상 것을 보여 주었다. 키 역할 CAFs의 증가에도 불구하고 증거가 종양 성장을 촉진에서 재생공부 CAFs은 종양 microenvironment 10 공동 기존의 여러 하위 유형이있는 CAF 특정 마커 및 이들 세포의 광대 한 이질성의 부족으로 인해 지속적 도전했다. 또한, 체외에서 섬유 아세포를 공부하는 것은 자신의 유전자 발현 프로파일은 종종 조직 배양 11,12에서 변경 있다는 사실에 의해 방해된다. 이 문제를 해결하기 위해 신선한 마우스와 인간의 조직에서 섬유 아세포의 편견 유전자 발현 프로파일을 허용하기 위해 형광 활성화 셀 정렬 (FACS) 13,14의 이전 프로토콜을 기반으로하는 방법을 개발했습니다. 우리 접근 방식은 신선한 마우스와 인간의 조직에서 섬유 아세포를 분리 할 수​​있는 표면 마커로 PDGFRα을 사용에 의존하고 있습니다. PDGFRα이 넘치게 일반적인 섬유 아세포와 CAFs 9,15 모두에 의해 표시됩니다. 이 방법은 등의 일반적인 섬유 아세포와 CAFs의 순수한 인구,의 고립하지만이 α-SMA으로 제한 할 수 있습니다 + myofibroblasts을 활성화. 절연 섬유 아세포는 할 수 있습니다특성화 및 tumorigenesis 동안 CAFs에서 발생하는 유전자 발현의 진화 비교에 사용됩니다. 사실, 우리와 다른 사람들은 16 정렬 세포에 의해 고립 된 섬유 아세포의 표현 프로파일을 발표했다. 이 프로토콜이 성공적으로 피부, 유방, 췌장과 폐 조직에서 섬유 아세포의 매우 풍부한 인구를 분리 및 프로필하기 위해 수행되었다. 또한, 우리의 방법은 작동 실험을 수행하는 문화 CAFs하려고 할 때 종종 큰 장애물입니다 종양 세포에 의한 오염을 방지하기 위해, 정렬 세포의 배양 할 수 있습니다.

조직 섬유 아세포의 높은 풍부한 인구의 고립 된 섬유 아세포 결과의 표시로 PDGFRα을 사용합니다. 정렬 후 순도의 수준은 후 정렬 분석 (그림 2A)에 의해 정량 99 %이다. 셀 - 특정 제어 유전자의 상대적 표현 (그림 2B)에 의해 비 섬유 아세포 세포를 오염 수의 비율을 추정하는 것은 일반적으로 0.1-0.6 %의 오염을 보여줍니다. 순도 수준은 절연 섬유 아세포 9 고품질의 t...

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Isolation of Normal and Cancer-associated Fibroblasts from Fresh Tissues by Fluorescence Activated Cell Sorting FACS

암 관련의 섬유 아세포 (CAFs)는 확산, 혈관 신생 및 염증을 조장하는 신호를 통해 종양 개시, 성장과 진행을 촉진한다. 여기 우리는 표면 마커로 PDGFRα를 사용하여 셀 정렬에 의해 신선한 마우스와 인간의 조직에서 정상 섬유 아세포와 CAFs의 순수한 인구를 분리하는 방법을 설명합니다.

형광 활성 세포 정렬 (FACS)에 의해 신선한 조직으로부터 정상 및 암 관련 섬유 아세포의 분리

Cancer-associated fibroblasts (CAFs) are the most prominent cell type within the tumor stroma of many cancers, in particular breast carcinoma, and their ...

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Research

JoVE Journal

Biology

Isolation of Normal and Cancer-associated Fibroblasts from Fresh Tissues by Fluorescence Activated Cell Sorting (FACS)

35.5K 조회수.  Tel Aviv University. 암 관련의 섬유 아세포 (CAFs)는 확산, 혈관 신생 및 염증을 조장하는 신호를 통해 종양 개시, 성장과 진행을 촉진한다. 여기 우리는 표면 마커로 PDGFRα를 사용하여 셀 정렬에 의해 신선한 마우스와 인간의 조직에서 정상 섬유 아세포와 CAFs의 순수한 인구를 분리하는 방법을 설명합니다.