This work was supported by NIH grants to T.W. (R01AI072060 and R01AI099123). G. Xie was supported by a Sealy Center for Vaccine Development Predoctoral Fellowship. We thank Dr. Richard Flavell (Howard Hughes Medical Institute, Yale University School of Medicine, New Haven) and Dr. Shizuo Akira (Osaka University, Japan) for providing the MyD88&#8211;/&#8211; mice and Dr. Y Cong (UTMB, Galveston) for providing OTII transgenic mice.

모든 동물 실험은 의학 분지 택사스 대학의 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다. 감염 - 비와 웨스트 나일 바이러스에 감염된 마우스에서의 DC 1. 분리 <ol><li> 나이와, 성별 일치 6-10주 된 야생형 C57BL / 6 (B6)과에서 MyD88 - / - 마우스. 복강 (IP) WNV NS4B- P38G 돌연변이의 500 플라크 형성 단위 (PFU) 접종. - / - CO 2와 마우스 3 일 후 감염에, B6과에서 MyD88를 안락사. 컨트롤과 같은 두 그룹의 감염되지 않은 마우스를 사용합니다. 각 그룹에서 세 마우스를 사용합니다. </li><li> 젖은 70 % 에탄올을 사용하여 희생 마우스의 왼쪽 및 모피는 전방 및 후방 다리 사이의 중간에 대해, 마우스 왼쪽의 털을 절단. 체강을 오픈. 집게를 사용하여 비장을 제거합니다. RPMI와 페트리 접시에서 비장를 놓습니다. </li><li> 항에있어서 CD11c 양성 자성 비드를 사용하여 비장의 수지상 세포를 분리제조업체의 지침. </li></ol> 2. 정제 OTII 제닉 마우스의 T 세포의 라벨링 <ol><li> 순진한 OTII 마우스에서 수확 한 비장은 위의 단계 1.2에 설명 된 두 개의 슬라이드의 프로스트 끝 사이의 비장을 균질화있다. 14 ml의 RPMI 매체를 추가, 15 ML 원뿔 튜브에 세포 현탁액을 전송합니다. 서스펜션은 5 분 동안 앉아서 새로운 15 ML 원뿔 튜브에 13 ml의 전송 보자. </li><li> 제조업체의 지시에 따라 CD4 + T 세포 단리 키트를 사용하여 비장 CD4 + T 세포를 분리. </li><li> 50 ㎖ 원뿔형 튜브에 전송 세포는 PBS로 두 번 세척 하였다. 재현 탁 된 1 ㎖ 당 1 × 106 세포를 0.5 % 소 혈청 알부민 (BSA)와 PBS에서 세포 및 CFSE가 0.5 μmol / ㎖를 추가한다. 빛으로부터 보호 된 10 분, 37 ℃에서 배양한다. </li><li> 10 %의 열 불 활성화 된 소 태아 혈청 5 ml의 차가운 완전 배지 (RPMI-1640을 추가, 1/100 권항생제 / antimycotics, 1/100 권 L- 글루타민 및 1000 X 2- 머 캅토 에탄올의 1 / 1,000 권). </li><li> 5 분 동안 얼음에서 인큐베이션. 세척 된 세포는 PBS로 1 회, 2 % PFA로 0.2 × 10 6 표지 CD4 + T 세포를 고정하고 유세포에 취득. CFSE의 기초 수준을 결정하기 위해이 샘플을 사용하십시오. 완전 배지에서 표지화 된 세포의 나머지를 다시 일시. </li></ol> 웨스트 나일 바이러스에 감염된 쥐의 수지상 3. 공동 문화 OTII T 세포 <ol><li> 문화 2 × 10 OTII 마우스의 5 정제 CD4 + T 세포 단독으로 또는 야생형 또는에서 MyD88의 정제 DC가와 - / - 또는 OVA 잔류 323-339없이 24 웰 플레이트에 마우스 (2 × 10 4) (1g 웰 당 1ml의 완전 배지에서 / ㎖). </li><li> 5 일간 37 ℃에서 세포를 배양한다. 수확 세포는, (1 % FBS와 PBS) FACS 버퍼에 두 번 씻고 0.25 ml의 2 % PFA에 고정합니다. 소용돌이 즉시. </li></ol> 체외 4. 유동 세포 계측법 분석 &lt;/ EM&gt; T 세포 프라이밍 <ol><li> 인수를 들어, 이중 소프트웨어 아이콘 유동 세포 계측법을 클릭합니다. SSC-A에 20 만 FSC-A에 20 만 0 선형 FSC-A 대 선형 SSC-A의 밀도 플롯, 선택 채널 0하십시오. (; 그림 1A 참조 P2) 다음에 살아있는 세포에 게이트를 만들 수 있습니다. </li><li> CFSE의 형광 강도를 분석하기 위해, FL1 채널에 대한 히스토그램을 열고 게이트 인구에 20,000 이벤트를 취득. 단독 배양 (그림 1A) OTII의 세포 샘플에 마커를 설정합니다. </li><li> 야생형 수지상 세포 (도 1B)에서 MyD88 또는 함께 공 배양 OTII 셀들에 대한 샘플들을 획득 - / - 수지상 세포 (도 1C)을 유사한 방식. </li></ol> 5. 분리 및 사이토 카인 분석 실험에 대한 비장 세포의 자극 <ol><li> STE에 기술 된 바와 같은 절차를 이용 WNV NS4B-P38G 돌연변이 생쥐 - / - B6 및 감염에서 MyD88P 1.1. 하루 30 후 감염에 다시 도전 일 8 차 감염 다음 21 이후 주 웨스트 나일 바이러스 감염이나 4 일에에서 야생형 웨스트 나일 바이러스 균주의 IP 2000 PFU와 생존 마우스는 비장의 수집을 위해 CO 2와 쥐를 안락사 . 참고 : 우리는 각 시점에 대한 그룹 당 2 ~ 3 마우스를 사용했다. </li><li> 단계 1.2 단계 2.2에서 상술 한 바와 같이 비장 세포의 단일 세포 현탁액을 만들기. 혈구 및 사용하여 세포 개수 10 ml의 완전한 매체에서 그들을 다시를 일시 중지합니다. </li><li> 2.5 × 106 세포 / ml로 완전 배지로 세포를 희석. 1.5 ml의 마이크로 원심 분리기 튜브에 비장 세포의 1 ML을 추가합니다. </li><li> DMSO에 1 ㎎ / ㎖로 WNV 특정 NS4B 및 E 펩티드 (SSVWNATTA 및 IALTFLAV)를, CD8 + T 세포를 시뮬레이션 희석. CD4 + T 세포의 자극, DMSO에 1 ㎎ / ㎖로 WNV 특정 NS3 및 E 펩티드 (RRWCFDGPRTNTILE 및 PVGRLVTVNPFVSVA)을 희석. followe 세포에 펩티드의 10 μl를 추가Brefeldin 용액 1 μL에 의해 개발. 컨트롤과 같은 펩타이드 처리없이 세포를 사용합니다. 세포를 섞는다. </li><li> 튜브의 뚜껑에 18 G 바늘 두 개의 구멍을 뚫습니다. 5 시간 동안 37 ° C에서 세포를 품어. </li></ol> 6. 세포 내 사이토 카인 염색법 <ol><li> 새로운 마이크로 원심 분리기 튜브에 세포를 전송합니다. 300-400 XG에서 5 분 동안 세포를 스핀과 상층 액을 붓는다. 300-400 XG에 1 ml의 FACS 버퍼, 스핀 5 분을 추가하고 120 μL FACS 버퍼를 피펫으로 세포를 일시 중지 다시. </li><li> 2 μL의 Fc 차단제를 추가하고 실온에서 10 분 동안 세포를 배양한다. 각각의 튜브에 1 ㎖의 FACS 버퍼를 추가합니다. 스핀 (300)에서 5 분 - 400 × g으로. </li><li> 300 μL FACS 세포를 일시 중지 다시 버퍼와 세 개의 튜브 (튜브 당 약 0.8 × 10 6 세포)로 분할. 표 1에 나타낸 바와 같이, 쥐의 IgG-PE 염색 각 배양 조건의 제 1 튜브를 보유. 제 2 튜브의 경우, CD4의 안티 - CD4 APC의 3 μl를 추가 펩타이드를 처리 한 세포, 3 μCD8 펩타이드 처리 된 세포 또는 펩티드를 처리하지 않고 세포에 모두 항체 안티 CD8 FITC의 리터. 보상 염색에 대한 세 번째 튜브를 사용합니다. 각각의 배양 조건, APC - 복합 CD4, FITC - 복합 CD8 또는 FL1, FL2 및 FL4 채널에 대한 보상 컨트롤 등의 단독 PE- 표지 CD3 항체 (튜브 당 3 μL)로 염색 된 세포의 세 개의 튜브를 사용합니다. </li><li> 잠시 소용돌이 세포. 20 분 동안 얼음에두고 빛으로부터 보호합니다. 1.4 ml의 FACS 버퍼를 추가합니다. 300-400 XG에서 5 분 스핀과 상층 액을 붓는다. </li><li> 세포 펠릿 (또는 간단하게 소용돌이를) 혼란을 선동. 250 μL 고정 / 투과성으로의 solutionby 피펫의 세포 펠렛을 다시 일시 중지합니다. 20 분 동안 실온에서 인큐베이션하고 빛으로부터 보호한다. </li><li> 1.2 ml의 FACS 버퍼를 추가합니다. 300 μL FACS 버퍼에 300 ~ 400 XG 및 재현 탁 세포에서 스핀 5 분. 주 :이 시점에서, 세포는 각각 U 광으로부터 추가 처리 BL2 실험실로 전송하거나 저장하고 냉장고에서 보호 될 수있다삼일에 페이지. </li><li> 500 μL FACS 버퍼를 추가합니다. 스핀 1X 투과성으로 / 세척 버퍼 500 μL에 300 ~ 400 XG 및 재현 탁 세포에서 5 분. 스핀 300 ~ 400 X g에서 5 분. </li><li> 이전에 예약 된 튜브의 단계 6.3 및 3.5 ㎕를 쥐의 IgG-PE에서 CD4에 대한 항체 및 / 또는 CD8 T 세포 마커로 추가 된 튜브에 3.5 μL 안티 IFNγ-PE를 추가, 100 μL 1X 파마 / 워시 세포를 다시 일시 중지 얼음에 25 분 동안의 IgG 제어를 빛으로부터 보호합니다. 1 배 투과성으로 / 세척 버퍼의 1.4 ml를 추가하여 세포를 씻으십시오. 스핀 300 ~ 400 X g에서 5 분. 1.4 ㎖의 1X 투과성으로 / 세척 완충액을 첨가하여 세정 공정을 반복한다. </li><li> 300-400 XG에서 5 분 스핀과 상층 액을 가만히 따르다. FACS 버퍼의 1.4 ml의 추가 및 최종 획득을위한 FACS 버퍼 400 μL에 re-중단에 의해 세포를 씻으십시오. </li></ol> 세포 내 사이토 카인 염색 7. 유동 세포 계측법 분석 <ol><li> 단계 4.1에서와 동일한 인수 설정을 사용한다. 크레아TE 생균에 게이트 (P2는도 2a 참조). 각 그룹에 대한 보상 튜브를 사용하여 전압을 조정합니다. </li><li> 오픈 두 가지 새로운 점 플롯, 하나는 대 FL1을 위해 수집 된 데이터를 표시합니다. FL2 (CD8 VS. IFN-γ) 및 다른 하나는 VS FL4 위해 수집 된 데이터를 표시하는 것이다. FL2 (CD4 대. IFN-γ). 각 샘플의 문이 인구 5 만 이벤트를 취득. </li></ol>

<ol>
	<li>Campbell, G. L., Marfin, A. A., Lanciotti, R. S., Gubler, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=West+Nile+virus.">West Nile virus.</a> Lancet Infect. Dis. 2, 519-529 (2002).</li><li>Welte, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immune+responses+to+an+attenuated+West+Nile+virus+NS4B-P38G+mutant+strain.">Immune responses to an attenuated West Nile virus NS4B-P38G mutant strain.</a> Vaccine. 29, 4853-4861 (2011).</li><li>Iwasaki, A., Medzhitov, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Toll-like+receptor+control+of+the+adaptive+immune+responses.">Toll-like receptor control of the adaptive immune responses.</a> Nat. Immunol. 5, 987-995 (2004).</li><li>Akira, S., Hemmi, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recognition+of+pathogen-associated+molecular+patterns+by+TLR+family.">Recognition of pathogen-associated molecular patterns by TLR family.</a> Immunol. Lett. 85, 85-95 (2003).</li><li>Xie, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+West+Nile+virus+NS4B-P38G+mutant+strain+induces+adaptive+immunity+via+TLR7-MyD88-dependent+and+independent+signaling+pathways.">A West Nile virus NS4B-P38G mutant strain induces adaptive immunity via TLR7-MyD88-dependent and independent signaling pathways.</a> Vaccine. 31 (38), 4143-4151 (2013).</li><li>Fang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=gammadelta+T+cells+promote+the+maturation+of+dendritic+cells+during+West+Nile+virus+infection.">gammadelta T cells promote the maturation of dendritic cells during West Nile virus infection.</a> FEMS Immunol. Med. Microbiol. 59, 71-80 (2010).</li><li>Silva, M. C., Guerrero-Plata, A., Gilfoy, F. D., Garofalo, R. P., Mason, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+activation+of+human+monocyte-derived+and+plasmacytoid+dendritic+cells+by+West+Nile+virus+generated+in+different+host+cells.">Differential activation of human monocyte-derived and plasmacytoid dendritic cells by West Nile virus generated in different host cells.</a> J. Virol. 81, 13640-13648 (2007).</li><li>Shrestha, B., Samuel, M. A., Diamond, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD8++T+Cells+Require+Perforin+To+Clear+West+Nile+Virus+from+Infected+Neurons.">CD8+ T Cells Require Perforin To Clear West Nile Virus from Infected Neurons.</a> J. Virol. 80, 119-129 (2006).</li><li>Wang, Y., Lobigs, M., Lee, E., Mullbacher, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD8++T+cells+mediate+recovery+and+immunopathology+in+West+Nile+virus+encephalitis.">CD8+ T cells mediate recovery and immunopathology in West Nile virus encephalitis.</a> J. Virol. 77, 13323-13334 (2003).</li><li>Plebanski, M., Katsara, M., Sheng, K. C., Xiang, S. D., Apostolopoulos, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+to+measure+T-cell+responses.">Methods to measure T-cell responses.</a> Expert Rev. Vaccines. 9, 595-600 (2010).</li><li>Lyons, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysing+cell+division+in+vivo+and+in+vitro+using+flow+cytometric+measurement+of+CFSE+dye+dilution.">Analysing cell division in vivo and in vitro using flow cytometric measurement of CFSE dye dilution.</a> J. Immunol. Methods. 243, 147-154 (2000).</li><li>Kraus, A. A., Priemer, C., Heider, H., Kruger, D. H., Ulrich, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inactivation+of+Hantaan+virus-containing+samples+for+subsequent+investigations+outside+biosafety+level+3+facilities.">Inactivation of Hantaan virus-containing samples for subsequent investigations outside biosafety level 3 facilities.</a> Intervirology. 48, 255-261 (2005).</li><li>Saxena, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+hamster-derived+west+nile+virus+isolate+induces+persistent+renal+infection+in+mice.">A hamster-derived west nile virus isolate induces persistent renal infection in mice.</a> PLoS Negl. Trop. Dis. 7, 2275 (2013).</li><li>Welte, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vgamma4++T+cells+regulate+host+immune+response+to+West+Nile+virus+infection.">Vgamma4+ T cells regulate host immune response to West Nile virus infection.</a> FEMS Immunol. Med. Microbiol. 63, 183-192 (2011).</li></ol>

저자가 공개하는 게 없다.

웨스트 나일 바이러스는 BL3 병원체이다. 때문에 안전 규정, 웨스트 나일 바이러스에 감염된 샘플 면역 학적 분석은 종종 BL3 시설이나 수행이 더 길고 지루한에서 장비의 가용성에 의해 제한됩니다. 최근의 연구에서 우리는 웨스트 나일 바이러스 감염 5시 세포 매개 면역 반응을 연구하기 위해 두 개의 흐름 세포 계측법 기반의 방법을 사용했다. 모두 분석에서, 웨스트 나일 바이러스에 감?...

웨스트 나일 바이러스 (WNV), 신경성, 플러스 감지 플라 비 바이러스, 신흥 보건 위협이다. 현재, 백신은 인간의 사용 (1) 승인되지 않았다. 비 구조 (NS) (b) 단백질의 P38G 대체가 감쇠 웨스트 나일 바이러스 균주, 야생형 WNV NY99 변형이보다 마우스에는 마우스의 치사하지만 높은 타고난 사이토 카인 및 T 세포 반응을 유도하지 알려져있다. NS4B-P38G 돌연변이로 면역화 마우스는 모든 치명적인 야생형 웨스트 나일 바이러스와 보조 도전으로부터 보호했다. 이 NS4B-P38G 돌연변이 이상적인 백신 후보에 적합한 기능을 가지고 있음을 시사한다. NS4B-P38G 돌연변이가 높은 보호 후천성 면역을 유도하는 메커니즘은 명확하게 아직 이해되지 않습니다. 병원체 관련 분자 패턴을 인식 수신자 같은 수용체 (TLR에)는, 바이러스 감염에 대한 선천성 면역의 개시에 필수적인 역할을한다. 코어 TLR 신호 전달 경로가 골수 분화 일차 응답 GE를 이용기본 어댑터 3,4로 북동 88 (에서 MyD88). 최근 연구에서, 시그널링에서 MyD88 쥐 5 NS4B- P38G WNV 감염 중에 돌연변이 세포 성 면역의 개발에 중요한 역할을하는 것으로 나타났다. 수지상 세포 (DCS)는 바이러스 감염시 -6,7- 차 T 세포 반응을 개시하는 독특한 능력을 나타내는 중요한 항원 제시 세포의 하나이다. CD4 + 및 CD8 + T 세포는 오랫동안 지속 면역 보호에 기여 야생형 WNV 감염 8,9 다음 숙주의 생존에 중요한 두. 두 면역 분석법 NS4B-P38G 돌연변이 감염된 마우스에서 이들 세포의 기능을 평가하기 위해 본 연구에 사용 하였다. - / - 생쥐 먼저, 시험 관내 T 세포 프라이밍 분석법 WNV 감염 야생형에서 MyD88의 수지상 세포의 항원 제시 능력을 비교하기 위해 사용 하였다. 분석, 순진한 CD4 &lt;의 감도를 높이려면CFSE (WNV 감염 마우스의 339 수지상 정제하고, 카르복시 숙신 부활절 공 배양 - SUP&gt; + T 세포를 323 (OVA) 펩티드 닭 오브 알부민 대 Vα2 / Vβ5 TCR의 구체적인 표현 OTII 트랜스 제닉 마우스로부터 단리 하였다 OVA 펩티드의 존재 하에서) 표지 된 CD4 + T 세포. 공동 배양 5 일 후에, 세포를 수확하고, 파라 포름 알데히드 (PFA)로 고정하고 유동 세포 계측법에 의해 분석 하였다. 증식 분석은 전통적으로, 5- 브로 모 -2&#39;- 데 옥시 우리 딘 (BrdU의) 삼중 또는 티민 deoxyriboside (3 HTdr) (10)의 혼입을 통해 이루어지고있다. 그럼에도 불구하고, 이러한 분석은 방사성 및 / 또는 웨스트 나일 바이러스 연구가 진행되어 바이오 안전성 레벨 (BL) 3 시설에서 특수 장비를 필요로 하나 있습니다. CFSE가 더 일반적으로되어 면역 학적 검정에 매우 중요 사용한 염료의 형광 강도 반감 의한 일련의 림프구 증식 유세포 분석은 염료보다 안정적이기균등하게, 세포 내로 혼입 유동 세포 계측법에 의해 검출이 용이하고, 방사능이 11이다. 분석은 또한 세포 분열 횟수를 평가하는 기능을 갖는다. WNV 연구에서이 분석을 이용하여 하나의 큰 장점은 1 ~ 2 % PFA로 감염된 세포의 정착이 BL2 실험실에서 유세포 샘플 획득을 가능하게 WNV 12 비활성화 할 수 있다는 것이다. 다음에, 개질 된 세포 내 사이토 카인 염색 (ICS)가 절차에서 MyD88 NS4B-P38G 변이체 감염된 마우스에서 WNV 특정 T 세포 반응의 조절에 시그널링의 역할을 연구하기 위해 사용되었다. 이 분석에서, 감염된 마우스 비장 세포로부터 단리 WNV 특정 펩타이드 체외에서 처리 하였다. Brefeldin는 셀 내 사이토 카인을 유지하기 위해 첨가 하였다. 5 시간 배양 한 후, 세포를 수확하여 세척하고, T 세포의 서브 세트에 대해 염색 하였다. 이어서 세포, PFA 고정 투과 가능 인터페론 (IFN) -γ 스테인드 유세포 분석 하였다.세포를 고정 및 PFA를 포함하는 투과성으로 완충액으로 처리하면 다른 유동 세포 계측법 기반 분석과 마찬가지로, 감염된 샘플 추가 처리 및 분석을 위해 BL2 실험실로 전달 될 수있다. 여러 발표 된 연구에서, 우리는 웨스트 나일 바이러스에 감염된 쥐 13, 14에서 T 세포의 이펙터 기능을 측정하는 ICS를 사용했다. 이 잘 설립을했지만,이 분석의 한 가지 큰 단점은 절차가 매우 긴이며, BL3 시설 내에서 수행 할 때 소요되는 시간이 될 수 있다는 것입니다. 여기서, 마이크로 원심 분리 튜브 기반 ICS 방법보다, 실현 가능한 쉽게 진행하고 시간이 적게 BL3 실험실 내에서 수행 할 때 소요되는 것으로 나타났다.

<table><tbody><tr><td>RPMI 1640</td><td>Invitrogen</td><td>11875</td><td>warm up at 37 &amp;deg;C</td></tr><tr><td>anti-CD11c magnetic beads</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-052-001</td><td>follow the manufacturer&amp;rsquo;s instructions</td></tr><tr><td>anti-CD4 magnetic beads</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-095-248</td><td>follow the manufacturer&amp;rsquo;s instructions</td></tr><tr><td>CFSE</td><td>Invitrogen</td><td>C34554</td><td></td></tr><tr><td>OVA residue 323-339</td><td>Genscript Corporation</td><td>RP10610</td><td></td></tr><tr><td>Peptides</td><td>Proimmune</td><td>PC0AD-D</td><td></td></tr><tr><td>Brefeldin A solution</td><td>BD Bioscience</td><td>555029</td><td></td></tr><tr><td>Mouse Fc Blocker</td><td>e-Bioscience</td><td>14-0161-85</td><td></td></tr><tr><td>APC-conjugated CD4</td><td>e-Bioscience</td><td>17-0041-81</td><td></td></tr><tr><td>FITC-conjugated CD8</td><td>e-Bioscience</td><td>11-0081-82</td><td></td></tr><tr><td>Fixation/Permeabilization Solution</td><td>BD-Bioscience</td><td>554722</td><td></td></tr><tr><td>Permeabilization/wash buffer</td><td>BD-Bioscience</td><td>554723</td><td></td></tr><tr><td>anti-IFN&amp;gamma;-PE</td><td>e-Bioscience</td><td>12-7311-82</td><td></td></tr><tr><td>Accuri flow cytometer</td><td>BD Bioscience</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

in vitro analysis of myd88-mediated cellular immune response to west nile virus mutant strain infection

마우스에서 야생형보다 높게 WNV 타고난 사이토킨 및 T 세포 반응을 유도 감쇠 웨스트 나일 바이러스 (WNV), 비 구조적 (NS) 4B-P38G 변이체. 최근 골수 분화 인자 88 (에서 MyD88) 시그널링 WNV NS4B-P38G 돌연변이 감염시 초기 T 세포 프라이밍 및 메모리 T 세포의 발달에 중요한 것으로 나타났다. 본 연구에서 두 계측법 기반의 방법을 흐름 - 시험 관내 T 세포 프라이밍 분석 ​​및 세포 내 사이토 카인 염색 (ICS)는 - 수지상 세포 및 T 세포의 기능을 평가하기 위해 사용 하였다. OTII 트랜스 제닉 마우스의 CD4 + T 세포를 표지 - 분석 프라이밍 T 세포에서 세포 증식은 카르복시 플루오 숙신 이미 딜 에스터 (CFSE)으로 두 군의 쥐들로부터 수지상 세포의 공동 배양에 따라 유동 세포 계측법에 의해 분석 하였다. 보다 크게 전통 전체적인 감도를 개선하여 이러한 접근법은 CD4 + T 세포 증식의 비율의 정확한 결정을 제공알 방사성 시약 분석. microcentrifuge 관 시스템은 ICS 프로토콜 모두 세포 배양 및 사이토킨 염색 절차에서 사용 하였다. 기존의 조직 배양 플레이트 기반 시스템에 비해,이 수정 절차는 바이오 안전성 레벨 (BL) 3 시설에서 수행 쉬웠다. 또한, WNV- 감염된 세포는 BL3 시설 외부의 추가 분석을 가능 모두 분석에 파라 포름 알데히드로 처리 하였다. 전반적으로, 이러한 시험 관내 면역 분석법 효율적 WNV 감염시 세포 매개 성 면역 반응을 평가하기 위해 사용될 수있다.

- / - OVA 펩티드의 존재 또는 부재 쥐 T 세포 프라이밍 분석에서, CFSE 표지 된 CD4 + T 세포는 NS4B-P38G 감염된 변이체 야생형에서 MyD88 정제 수지상에서 배양 하였다. 오일은 음성 대조군으로 사용 하였다 표지 T 세포 또는 OVA없이 단독으로 배양 하였다. 도 1a에 도시 된 바와 같이, 총 T 세포 FL1 채널상의 형광 강도의 분석을 위해 게이팅 하였다. 마커는 수지상 세포를 공동 배...

Watch this Scientific Journal Video about In Vitro Analysis of Myd88-mediated Cellular Immune Response to West Nile Virus Mutant Strain Infection at JoVE.com

In Vitro Analysis of Myd88-mediated Cellular Immune Response to West Nile Virus Mutant Strain Infection

Two flow cytometry-based methods &#8211; an in vitro T cell priming assay and intracellular cytokine staining were utilized to measure antigen presenting capacity of dendritic cells and antigen-specific T cell responses to a West Nile virus mutant infection in mice.

웨스트 나일 바이러스 돌연변이 균주의 감염에에서 MyD88 매개 세포 면역 반응의 생체 외 분석

An attenuated West Nile virus (WNV), a nonstructural (NS) 4B-P38G mutant, induced higher innate cytokine and T cell responses than the wild-type WNV in ...

in-vitro-analysis-myd88-mediated-cellular-immune-response-to-west

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

In Vitro Analysis of Myd88-mediated Cellular Immune Response to West Nile Virus Mutant Strain Infection

8.1K 조회수.  The University of Texas Medical Branch. Two flow cytometry-based methods – an in vitro T cell priming assay and intracellular cytokine staining were utilized to measure antigen presenting capacity of dendritic cells and antigen-specific T cell responses to a West Nile virus mutant infection in mice.

비디오: In Vitro Analysis of Myd88-mediated Cellular Immune Response to West Nile Virus Mutant Strain Infection

Measurement of &#947;HV68 Infection in Mice

&gamma;-Herpesviruses (&gamma;-HVs) are notable for their ability to establish latent infections of lymphoid cells1. The narrow host range of human &gamma;-HVs, such as EBV and KSHV, has severely hindered detailed pathogenic studies. Murine &gamma;-herpesvirus 68 (&gamma;HV68) shares extensive genetic and biological similarities with human &gamma;-HVs and is a natural pathogen of murid rodents2. As such, evaluation of &gamma;HV68 infection of mice inbred strains at different stages of viral infection provides an important model for understanding viral lifecycle and pathogenesis during &gamma;-HVs infection.
Upon intranasal inoculation, &gamma;HV68 infection results in acute viremia in the lung that is later resolved into a latent infection of splenocytes and other cells, which may be reactivated throughout the life of the host3,4. In this protocol, we will describe how to use the plaque assay to assess infectious virus titer in the lung homogenates on Vero cell monolayers at the early stage (5 - 7 days) of post-intranasal infection (dpi). While acute infection is largely cleared 2 - 3 weeks postinfection, a latent infection of &gamma;HV68 is established around 14 dpi and maintained later on in the spleen of the mice. Latent infection usually affects a very small population of cells in the infected tissues, whereby the virus stays dormant and shuts off most of its gene expression. Latently-infected splenocytes spontaneously reactivate virus upon explanting into tissue culture, which can be recapitulated by an infectious center (IC) assay to determine the viral latent load. To further estimate the amount of viral genome copies in the acutely and/or latently infected tissues, quantitative real-time PCR (qPCR) is used for its maximal sensitivity and accuracy. The combined analyses of the results of qPCR and plaque assay, and/or IC assay will reveal the spatiotemporal profiles of viral replication and infectivity in vivo.

&#947;-Herpesviruses (&#947;-HVs) establish life-long persistency in their host. Infection of mice with &#947;-HV68 provides a genetically tractable in vivo model for the characterization of the lifecycle/pathogenesis of &#947;HVs. This protocol describes the detection and quantitation of &#947;HV68 infection at acute and latent stages following infection by plaque-forming, infectious center, and qPCR assays.

마우스에 γHV68 감염의 측정

&gamma;-Herpesviruses (&gamma;-HVs) are notable for their ability to establish latent infections of lymphoid cells1. The narrow host range of human ...

연구

면역학 및 감염병학

Dissecting Innate Immune Signaling in Viral Evasion of Cytokine Production

In response to a viral infection, the host innate immune response is activated to up-regulate gene expression and production of antiviral cytokines. Conversely, viruses have evolved intricate strategies to evade and exploit host immune signaling for survival and propagation. Viral immune evasion, entailing host defense and viral evasion, provides one of the most fascinating and dynamic interfaces to discern the host-virus interaction. These studies advance our understanding in innate immune regulation and pave our way to develop novel antiviral therapies.
Murine &#947;HV68 is a natural pathogen of murine rodents. &#947;HV68 infection of mice provides a tractable small animal model to examine the antiviral response to human KSHV and EBV of which perturbation of in vivo virus-host interactions is not applicable. Here we describe a protocol to determine the antiviral cytokine production. This protocol can be adapted to other viruses and signaling pathways.
Recently, we have discovered that &#947;HV68 hijacks MAVS and IKK&#946;, key innate immune signaling components downstream of the cytosolic RIG-I and MDA5, to abrogate NF&#922;B activation and antiviral cytokine production. Specifically, &#947;HV68 infection activates IKK&#946; and that activated IKK&#946; phosphorylates RelA to accelerate RelA degradation. As such, &#947;HV68 efficiently uncouples NF&#922;B activation from its upstream activated IKK&#946;, negating antiviral cytokine gene expression. This study elucidates an intricate strategy whereby the upstream innate immune activation is intercepted by a viral pathogen to nullify the immediate downstream transcriptional activation and evade antiviral cytokine production.

We describe a protocol to measure the antiviral cytokine production in mice infected with a model herpesvirus, murine gamma herpesvirus 68 (&#947;HV68) that is closely-related to human Kaposi&#8217;s sarcoma-associated herpesvirus (KSHV) and Epstein-Barr virus (EBV). Utilizing genetically modified mouse strains and mouse embryonic fibroblasts (MEFs), we assessed the antiviral cytokine production both in vivo and ex vivo. &#8220;Reconstituting&#8221; the expression of innate immune components in knockout embryonic fibroblasts by lentiviral transduction, we further pinpoint specific innate immune molecules and dissect the key signaling events that differentially regulate the antiviral cytokine production.

사이토 카인 생산의 바이러스 성 회피에 타고난 면역 신호를 해부

In response to a viral infection, the host innate immune response is activated to up-regulate gene expression and production of antiviral cytokines. ...

Zika Virus Infectious Cell Culture System and the In Vitro Prophylactic Effect of Interferons

Zika Virus (ZIKV) is an emerging pathogen that is linked to fetal developmental abnormalities such as microcephaly, eye defects, and impaired growth. ZIKV is an RNA virus of the Flaviviridae family. ZIKV is mainly transmitted by mosquitoes, but can also be spread by maternal to fetal vertical transmission as well as sexual contact. To date, there are no reliable treatment or vaccine options available to protect those infected by the virus. The development of a reproducible, effective Zika virus infectious cell culture system is critical for studying the molecular mechanisms of ZIKV replication as well as drug and vaccine development. In this regard, a protocol describing a mammalian cell-based in vitro Zika virus culture system for viral production and growth analysis is reported here. Details on the formation of plaques by Zika virus on a cell monolayer and plaque assay for measuring viral titer are presented. Viral genome replication kinetics and double-stranded RNA genome replicatory intermediates are determined. This culture platform was utilized to screen against a library of a small set of cytokines resulting in the identification of interferon-&#945; (IFN-&#945;), IFN-&#946; and IFN-&#947; as potent inhibitors of Zika viral growth. In summary, an in vitro infectious Zika viral culture system and various virological assays are demonstrated in this study, which has the potential to greatly benefit the research community in elucidating further the mechanisms of viral pathogenesis and the evolution of viral virulence. Antiviral IFN-alpha can further be evaluated as a prophylactic, post-exposure prophylactic, and treatment option for Zika virus infections in high-risk populations, including infected pregnant women.

Zika Virus Infectious Cell Culture System and the In Vitro Prophylactic Effect of Interferons

Zika Virus (ZIKV), an emerging pathogen, is linked to fetal developmental abnormalities and microcephaly. The establishment of an effective infectious cell culture system is crucial for studies of ZIKV replication as well as vaccine and drug development. In this study, various virological assays pertaining to ZIKV are illustrated and discussed.

Zika 바이러스 감염 세포 배양 시스템과<em&gt; 체외</em인터페론의&gt; 예방 효과

Zika Virus (ZIKV) is an emerging pathogen that is linked to fetal developmental abnormalities such as microcephaly, eye defects, and impaired growth. ZIKV ...

Influenza A Virus Studies in a Mouse Model of Infection

Influenza viruses cause over 500,000 deaths worldwide1 and are associated with an annual cost of 12 - 14 billion USD in the United States alone considering direct medical and hospitalization expenses and work absenteeism2. Animal models are crucial in Influenza A virus (IAV) studies to evaluate viral pathogenesis, host-pathogen interactions, immune responses, and the efficacy of current and/or novel vaccine approaches as well as antivirals. Mice are an advantageous small animal model because their immune system is evolutionarily similar to that found in humans, they are available from commercial vendors as genetically identical subjects, there are multiple strains that can be exploited to evaluate the genetic basis of infections, and they are relatively inexpensive and easy to manipulate. To recapitulate IAV infection in humans via the airways, mice are first anesthetized prior to intranasal inoculation with infectious IAVs under proper biosafety containment. After infection, the pathogenesis of IAVs is determined by monitoring daily the morbidity (body weight loss) and mortality (survival) rate. In addition, viral pathogenesis can also be evaluated by assessing virus replication in the upper (nasal mucosa) or lower (lungs) respiratory tract of infected mice. Humoral responses upon IAV infection can be rapidly evaluated by non-invasive bleeding and secondary antibody detection assays aimed at detecting the presence of total or neutralizing antibodies. Here, we describe the common methods used to infect mice intranasally (i.n) with IAV and evaluate pathogenesis, humoral immune responses and protection efficacy.

Influenza A viruses (IAVs) are important human respiratory pathogens. To understand the pathogenicity of IAVs and to perform preclinical testing of novel vaccine approaches, animal models mimicking human physiology are required. Here, we describe techniques to evaluate IAV pathogenesis, humoral responses and vaccine efficacy using a mouse model of infection.

감염 마우스 모델에서 인플루엔자 A 바이러스 연구

Influenza viruses cause over 500,000 deaths worldwide1 and are associated with an annual cost of 12 - 14 billion USD in the United States alone ...

A Method to Assess Fc-mediated Effector Functions Induced by Influenza Hemagglutinin Specific Antibodies

Antibodies play a crucial role in coupling the innate and adaptive immune responses against viral pathogens through their antigen binding domains and Fc-regions. Here, we describe how to measure the activation of Fc effector functions by monoclonal antibodies targeting the influenza virus hemagglutinin with the use of a genetically engineered Jurkat cell line expressing an activating type 1 Fc-Fc&#947;R. Using this method, the contribution of specific Fc-Fc&#947;R interactions conferred by immunoglobulins can be determined using an in vitro assay.

We describe a method to measure the activation of Fc-mediated effector functions by antibodies that target the influenza virus hemagglutinin. This assay can also be adapted to assess the ability of monoclonal antibodies or polyclonal sera targeting other viral surface glycoproteins to induce Fc-mediated immunity.

독감 조류 특정 항 체에 의해 유도 된 Fc 중재 Effector 기능을 평가 하는 방법

Antibodies play a crucial role in coupling the innate and adaptive immune responses against viral pathogens through their antigen binding domains and ...

Evaluation of Zika Virus-specific T-cell Responses in Immunoprivileged Organs of Infected Ifnar1-/- Mice

The Zika virus (ZIKV) can induce inflammation in immunoprivileged organs (e.g., the brain and testis), leading to the Guillain-Barr&#233; syndrome and damaging the testes. During an infection with the ZIKV, immune cells have been shown to infiltrate into the tissues. However, the cellular mechanisms that define the protection and/or immunopathogenesis of these immune cells during a ZIKV infection are still largely unknown. Herein, we describe methods to evaluate the virus-specific T-cell functionality in these immunoprivileged organs of ZIKV-infected mice. These methods include a) a ZIKV infection and vaccine inoculation in Ifnar1-/- mice; b) histopathology, immunofluorescence, and immunohistochemistry assays to detect the virus infection and inflammation in the brain, testes, and spleen; c) the preparation of a tetramer of ZIKV-derived T-cell epitopes; d) the detection of ZIKV-specific T cells in the monocytes isolated from the brain, testes, and spleen. Using these approaches, it is possible to detect the antigen-specific T cells that have infiltrated into the immunoprivileged organs and to evaluate the functions of these T cells during the infection: potential immune protection via virus clearance and/or immunopathogenesis to exacerbate the inflammation. These findings may also help to clarify the contribution of T cells induced by the immunization against ZIKV.

Evaluation of Zika Virus-specific T-cell Responses in Immunoprivileged Organs of Infected Ifnar1-/- Mice

A protocol to evaluate antigen-specific T-cell responses in the immunoprivileged organs of the Ifnar1-/- murine model for the Zika virus (ZIKV) infection is described. This method is pivotal for investigating the cellular mechanisms of the protection and immunopathogenesis of ZIKV vaccines and is also valuable for their efficacy evaluation.

감염 된 Ifnar1/- 생쥐의 Immunoprivileged 장기에서 Zika 바이러스 관련 T 세포 응답의 평가

The Zika virus (ZIKV) can induce inflammation in immunoprivileged organs (e.g., the brain and testis), leading to the Guillain-Barr&#233; syndrome and ...

Arbovirus Infections As Screening Tools for the Identification of Viral Immunomodulators and Host Antiviral Factors

RNA interference- and genome editing-based screening platforms have been widely used to identify host cell factors that restrict virus replication. However, these screens are typically conducted in cells that are naturally permissive to the viral pathogen under study. Therefore, the robust replication of viruses in control conditions may limit the dynamic range of these screens. Furthermore, these screens may be unable to easily identify cellular defense pathways that restrict virus replication if the virus is well-adapted to the host and capable of countering antiviral defenses. In this article, we describe a new paradigm for exploring virus-host interactions through the use of screens that center on naturally abortive infections by arboviruses such as vesicular stomatitis virus (VSV). Despite the ability of VSV to replicate in a wide range of dipteran insect and mammalian hosts, VSV undergoes a post-entry, abortive infection in a variety of cell lines derived from lepidopteran insects, such as the gypsy moth (Lymantria dispar). However, these abortive VSV infections can be &#34;rescued&#34; when host cell antiviral defenses are compromised. We describe how VSV strains encoding convenient reporter genes and restrictive L. dispar cell lines can be paired to set-up screens to identify host factors involved in arbovirus restriction. Furthermore, we also show the utility of these screening tools in the identification of virally encoded factors that rescue VSV replication during coinfection or through ectopic expression, including those encoded by mammalian viruses. The natural restriction of VSV replication in L. dispar cells provides a high signal-to-noise ratio when screening for the conditions that promote VSV rescue, thus enabling the use of simplistic luminescence- and fluorescence-based assays to monitor the changes in VSV replication. These methodologies are valuable for understanding the interplay between host antiviral responses and viral immune evasion factors.

Here, we present the protocols to identify 1) virus-encoded immunomodulators that promote arbovirus replication and 2) eukaryotic host factors that restrict arbovirus replication. These fluorescence- and luminescence-based methods allow researchers to rapidly obtain quantitative readouts of arbovirus replication in simplistic assays with low signal-to-noise ratios.

Arbovirus 감염 바이러스 Immunomodulators 및 호스트 항 바이러스 요인의 식별을 위한 도구를 심사로

RNA interference- and genome editing-based screening platforms have been widely used to identify host cell factors that restrict virus replication. ...

Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster

Virus spreading is a major cause of epidemic diseases. Thus, understanding the interaction between the virus and the host is very important to extend our knowledge of prevention and treatment of viral infection. The fruit fly Drosophila melanogaster has proven to be one of the most efficient and productive model organisms to screen for antiviral factors and investigate virus-host interaction, due to powerful genetic tools and highly conserved innate immune signaling pathways. The procedure described here demonstrates a nano-injection method to establish viral infection and induce systemic antiviral responses in adult flies. The precise control of the viral injection dose in this method enables high experimental reproducibility. Protocols described in this study include the preparation of flies and the virus, the injection method, survival rate analysis, the virus load measurement, and an antiviral pathway assessment. The influence effects of viral infection by the flies' background were mentioned here. This infection method is easy to perform and quantitatively repeatable; it can be applied to screen for host/viral factors involved in virus-host interaction and to dissect the crosstalk between innate immune signaling and other biological pathways in response to viral infection.

Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster

This protocol describes how to establish viral infection in vivo in Drosophila melanogaster using the nano-injection method and basic techniques to analyze virus-host interaction.

바이러스 성 감염 및 초파리 Melanogaster 상호 작용 호스트-바이러스의 분석의 설립

Virus spreading is a major cause of epidemic diseases. Thus, understanding the interaction between the virus and the host is very important to extend our ...

Isolation and Quantification of Zika Virus from Multiple Organs in a Mouse

The methods being presented demonstrate laboratory procedures for the isolation of organs from Zika virus infected animals and the quantification of viral load. The purpose of the procedure is to quantify viral titers in peripheral and CNS areas of the mouse at different time points post infection or under different experimental conditions to identify virologic and immunological factors that regulate Zika virus infection. The organ isolation procedures demonstrated allow for both focus forming assay quantification and quantitative PCR assessment of viral titers. The rapid organ isolation techniques are designed for the preservation of virus titer. Viral titer quantification by focus forming assay allows for the rapid throughput assessment of Zika virus. The benefit of the focus forming assay is the assessment of infectious virus, the limitation of this assay is the potential for organ toxicity reducing the limit of detection. Viral titer assessment is combined with quantitative PCR, and using a recombinant RNA copy control viral genome copy number within the organ is assessed with low limit of detection. Overall these techniques provide an accurate rapid high throughput method for the analysis of Zika viral titers in the periphery and CNS of Zika virus infected animals and can be applied to the assessment of viral titers in the organs of animals infected with most pathogens, including Dengue virus.

The goal of the protocol is to demonstrate the techniques used to investigate viral disease by isolating and quantifying Zika virus, from multiple organs in a mouse following infection.

마우스의 여러 장기에서 Zika 바이러스의 격리 및 정량화

The methods being presented demonstrate laboratory procedures for the isolation of organs from Zika virus infected animals and the quantification of viral ...

Detecting Wolbachia Strain wAlbB in Aedes albopictus Cell Lines

As a maternally harbored endosymbiont, Wolbachia infects large proportions of insect populations. Studies have recently reported the successful regulation of RNA virus transmission using Wolbachia-transfected mosquitoes. Key strategies to control viruses include the manipulation of host reproduction via cytoplasmic incompatibility and the inhibition of viral transcripts via immune priming and competition for host-derived resources. However, the underlying mechanisms of the responses of Wolbachia-transfected mosquitoes to viral infection are poorly understood. This paper presents a protocol for the in vitro identification of Wolbachia infection at the nucleic acid and protein levels in Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) Aa23 cells to enhance the understanding of the interactions between Wolbachia and its insect vectors. Through the combined use of polymerase chain reaction (PCR), quantitative PCR, western blot, and immunological analytical methods, a standard morphologic protocol has been described for the detection of Wolbachia-infected cells that is more accurate than the use of a single method. This approach may also be applied to the detection of Wolbachia infection in other insect taxa.

Detecting Wolbachia Strain wAlbB in Aedes albopictus Cell Lines

Four methods were used to detect intracellular Wolbachia, which complemented each other and improved the detection accuracy of Wolbachia infection of Aedes albopictus-derived Aa23 and Aa23-T&#160;cured of native Wolbachia infection using antibiotics.

Aedes albopictus 세포주에서 Wolbachia 균주 wAlbB 검출

As a maternally harbored endosymbiont, Wolbachia infects large proportions of insect populations. Studies have recently reported the successful regulation ...

웨스트 나일 바이러스 돌연변이 균주의 감염에에서 MyD88 매개 세포 면역 반응의 생체 외 분석

요약

더 많은 비디오 탐색

이 비디오의 챕터