This work was supported by funding from the March of Dimes FY12-133 (S.K.E.) and the National Institutes of Health R01HD037831 (S.K.E.). We would like to thank Dr. Deborah Frank for critical review of the manuscript.

참고 : 국립 보건원 (National Institutes of Health)에서 정한 동물의 관리 및 사용에 대한 가이드 라인을 준수 모든 동물 절차. 모든 프로토콜은 세인트 루이스에있는 워싱턴 대학의 동물 연구위원회에 의해 승인되었다. 참고 :이 프로토콜에 대한 특정 재료 및 장비 재료 및 장비 테이블을 나열되어 있습니다. 여성 마우스의 1 시간 초과 사육 <ol><li> 남성과 2 시간의 시간 창에서 연령이 6 개월 사이의 성인 여성 새끼를 낳. 그들은 실험의 전체에 대한 일관성 유지와 같은 특정 번식 시간이 긴으로 필요하지 않습니다. </li><li> copulatory 플러그의 존재에 의해 임신을 확인합니다. 플러그가 처음 일 후 성교 0 (dpc0)으로 간주되는 날짜와 시간을 지정합니다. 압력 녹음을 시작할 때 특정 시간을 기억하십시오. </li><li> dpc8-13에 수술을 수행합니다. 정확한 DPC는 마우스 변형에 따라 달라집니다. </li><li> 마우스는 수술, 체육 전에 임신 여부를 결정하려면마취 전 투여 촬상 시스템에 결합 40MHz의 선형 어레이 프로브 rform 복부 초음파 촬상. 이것은 임신 낭의 시각화 수 있습니다. 초음파 시스템을 사용할 수없는 경우, 마우스의 체중을 사용한다. 주 : dpc0 및 dpc8 및 복부 팽만 사이에 적어도 2g의 체중 증가는 임신의 좋은 지표이다. </li></ol> 2. 텔레 메 트리 수술 준비 <ol><li> 수술 전 24 시간 내에 악기, 거즈, 면봉, 수술 커튼, 피펫 팁을 살균 오토 클레이브를 사용합니다. </li><li> 70 % 에탄올로 청소 수술 표면. </li><li> (설치류에 대한 전문) 가열 패드와 비드 살균기를 켭니다. </li></ol> 3. 텔레 메 트리 수술 <ol><li> 마취, 1-2 L / 분의 산소 유속 4 내지 5 %의 이소 플루 란을 사용한다. </li><li> 마우스가 마취의 징후가 표시 될 때까지 기다린 다음 부 프레 노르 핀과 피하 주사 (진통제 : 20g 당 0.1 ㎖). </li><li> 방광 아래 갈비뼈의 바닥에서 마우스의 복부를 면도. </li><li> 예열 가열 패드에 수술 테이블에 마우스를 가져, 건조를 방지하기 위해 안과 연고와 마우스의 눈을 커버합니다. </li><li> 멸균 기술을 시작합니다. 멸균 장갑에 넣고 요오드 에탄올 스크럽을 배치하는 멸균 표면으로 래퍼를 유지합니다. </li><li> 패키지 또는 식염수에서 측거기를 제거하고 멸균 거즈에 배치 멸균 집게를 사용합니다. <ol><li> 젤 카테터 팁을 채우기 위해 (텔레 공급 업체에서 제공) 주사기를 사용합니다. 부드럽게 카테터에 젤을 그릴 수있는 충분한 음압을 만들어 카테터를 짠다. </li></ol></li><li> 피펫에 멸균 팁을 놓습니다. 피펫이 수술 접착제의 μL 및 멸균 표면에 피펫을 설정합니다. </li><li> 요오드 다음 70 % 에탄올로 영역을 채취, 수술 부위를 청소합니다. </li><li> 만큼 충분히 큰 수술 드레이프에 구멍을 잘라마우스를 통해 절개와 장소에 필요한 지역. </li><li> 마우스가 완전히 절개를하기 전에 마취 보장하기 위해 발 핀치 (페달 응답)를 수행합니다. </li><li> 작은 수직 정중선 절개를합니다. 다음으로, 기본 신체 벽 근육을 통해 비슷한 절개를합니다. </li><li> 부드럽게 체강에서 자궁을 당겨 가능한있는 대부분의 새끼를 포함하는 자궁 경적을 찾습니다. <ol><li> - 선택의 miRNA의 덧셈, 텔레 삽입하기 전에 자궁의 근육층에 바이러스 벡터를 주입. </li></ol></li><li> 3mm 에지 스프링 절단 가위로 자궁 뿔의 끝 부분에 작은 절개를합니다. </li><li> 자궁 벽과 태아 낭 사이에, 압박하지 않고, 카테터를 스레드. 그 실수로 제거를 줄이기 위해 여러 주머니 과거 카테터를 삽입합니다. 태아 주머니가 삽입에 의해 방해되지 않았는지 확인합니다. </li><li> U에 카테터를 준수하기 위해 텔레 삽입의 사이트에 수술 접착제를 피펫terine 혼은 자궁 뿔에서 미끄러지는 카테터를 방지합니다. 경직되기 위해 접착제 몇 초를 기다린 후 조심스럽게 체강 내부의 자궁을 다시 배치합니다. </li><li> 카테터 삽입 부위의 반대측에, 체강 내의 텔레 배치. </li><li> 6.0 흡수성 봉합 체강 봉합사. 첫째, 지갑 스티치 후 3-4 개별 바늘을한다. </li><li> 동일한 기술을 이용하여 피부를 봉합사하지만 6-0 비 흡수성 봉합사. </li><li> 면봉 디부 카인 (국소 진통제) 절개 사이트를 통해 연고. </li><li> 동물을 재수하기 위해 멸균 생리 식염수를 피하의 0.3-0.4 ml를 주입한다. </li><li> 완전히 깨어 때까지 수술 후 동물을 모니터링합니다. 자유롭게으로 침구의 특정 유형 심하게 마취 마우스를 질식 수있는 테이블 위의 머리를 보유 할 수있을 때까지 다시 케이지에 마우스를 올려 놓지 마십시오. 30 ~ 45 분 동안 마취 된 마우스의 경우, 하나는 제 기대한다전자 마우스는 1 시간 15 분으로 완전히 깨어합니다. </li><li> 추가 수술을 수행하는 경우, 70 % 에탄올과 구슬은 다시 사용하기 전에 소독으로 악기를 닦으십시오. </li></ol> 4. 수술 후 복구 <ol><li> 로그에 매일 수술 후 진행 상황을 모니터링합니다. 체중 증가 및 손실 카탈로그 및 혼수, 출혈, 또는 외과 적 절개의 완전 폐쇄를 감시. <ol><li> 마우스 부드럽게 마우스 우 (~ 사과의 일관성) 또는 전문 복구 다이어트 식품을 공급. </li><li> 봉합을 검사하여 인출하지 있는지 확인하지만, 과도하게 마우스를 처리하지 않도록 노력하라. </li></ol></li></ol> 5. 원격 측정 기록 <ol><li> (마우스가 수술에서 회복 적어도 2-3일 후) 관심의 날, 텔레 켜 마우스 근처에 자석을 배치합니다. 수신기에 마우스 케이지를 넣습니다. 텔레이 활성화 된 경우 수신기의 표시등이 켜져 야합니다. </li><li> 새로운 teleme 교정<html> 제조업체 특정 교정과 TERS를 제공합니다. 재사용 된 원격 계측기 교정 사양은 소프트웨어에 보관됩니다. </li><li> 소프트웨어 내에서, &quot;동물&quot;을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하여 녹음을 시작하고 &quot;시작 샘플링, 연속,&quot;최대 500 Hz에서의 속도로 샘플링을 할 수 있습니다 클릭합니다. 소프트웨어를 저장하고 추적하도록 설정되어 있는지 확인합니다. 참고 : 샘플링 마우스 아이콘이 녹색으로 바뀌면, 압력이 기록되고있다. 운반 중에 마우스를 방해하는 방해하거나 노동을 변경, 그래서 조심스럽게 관찰 할 수 있습니다. </li><li> 관심의 인도 또는 시간 기간이 지난 후에, &quot;동물&quot;에 마우스 오른쪽 버튼을 클릭 기록과 &quot;모든 녹음을 중지&quot;를 선택 중지합니다. 텔레 배터리는 일반적으로 만 연속 기록의 1.5 개월 동안 지속됩니다로서, 배터리 사용 시간을 절약하기 위해 텔레을 해제 자석을 사용합니다. </li><li> CO 2 과다 복용으로 마우스를 안락사와 텔레을 복구 할 수 있습니다. 새끼는 잘린 안락사된다. </li></ol>TLE &quot;&gt; 6. 텔레 살균 <ol><li> 실온에서 밤새도록 탈 이온수에 1 %의 효소 세제에서 텔레 배치. </li><li> 탈 이온수 측거기를 씻어 카테터를 짜내 않도록주의하면서, 모든 조직 및 접착제를 제거합니다. </li><li> 소독 실온에서 24 시간 동안 2 % 글 루타 알데하이드 (glutaraldehyde)의 텔레을 품어. </li><li> 멸균 식염수 측거기를 헹군 다음 주입까지 멸균 식염수에 보관하거나 개조하는 제조업 자에게 다시 되돌려 보낼 수. 조직이 멸균 카테터의 내부에있는 경우 Telemeters 단장해야한다. 일반적으로 telemeters 단장 할 필요가 전에 4-5 번 사용할 수 있습니다. </li></ol>

<ol>
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The authors have nothing to disclose.

자궁 근 수축의 조사는 근육 긴장의 생체 측정에 의존하고있다. 이 방법론은 동물을 살 관리 할 수​​ 없습니다 새로 개발 된 uterotonic 약물의 초기 단계의 테스트를 위해 유용 할 수 있습니다. 길이 방향의 진행 노동을 이해하지만, 생체 내 접근법이 필요하다. 생체 측정은 여러 가지 용도로 사용. 첫째, 임신 기간 동안 자궁 수축 패턴의 변화의 완전한 그림의 캡처를 할 수 있?...

조산은 주 산기 이환율과 선진국에서 사망의 주요 원인이다 그것은 주 산기 사망률의 50 % 및 주 산기 사망률 1, 2의 75 %에 대한 책임이 있습니다. 조기 진통은 다각적이고 특발성 수 있습니다. 많은 연구가 수축 하나에 대기 조직의 근육층을 변환 분자 및 전기 경로에 등장했지만, 조산의 정확한 병태 생리는 애매 남아있다. 내분비, 염증, 및 유전자 조절은 모든 조산 3,4에 연결되어있다. 그러나 윤리적 인 문제는 인간의 조산의 메커니즘에 대한 연구를 수행하는 능력을 제한한다. 이러한 한계를 감안할 때, 많은 연구자들은 분만의 생리를 연구하는과 모델 시스템으로 마우스에 설정되어있다. 마우스는 짧은 임신 기간은 약 3 주 지속하고 쉽게 유 전적으로 조작 할 수있다. 또한, 다수의 유전자 마우스 모델은 할노동 5에 필수적인 신호 전달 경로를 결정하기 위해 개발되었다. 마우스와 인간의 출산 사이의 키 차이에도 불구하고, 마우스와 인간은 자궁 내 염증과 감염 (6)를 포함하여 노동에 필수적인 같은 메커니즘의 많은 것을 공유 할 수 있습니다. 따라서, 마우스는 자궁의 활동을 조사하기위한 매우 중요한 도구 역할을한다. 현재까지, 황금 표준이 생쥐의 자궁 수축력을 측정하는 것은 생체 아이소 메트릭 장력 기록하고있다; 그러나, 이것은 실험 당 하나 임신성 시점 제한되며 생리적 환경에서 자궁을 제거를 필요로한다. 또 다른 중요한 요소는이 조사에 필요한 동물의 다수이다. 마지막으로,이 방법은 노동과 조기 병태 생리의 유도를 검토 종 연구를 허용하지 않습니다. 동맥 압력을 연구하는 데 사용 방사성 동위 원소 원격 측정 장치에 대한 최근의 발전 마우스와 INT 7 변경쥐 8 rauterine 압력이 같은 기술은 임신 중에 생쥐의 자궁 내 압력의 변화를 연구하는 데 사용할 수 있는지 여부에 대한 질문을 구걸했다. 초기 문제 후, 방법은 성공적 마우스에서 유도 분만과 진행을 측정하기 위해 개발되었다. 이 방법은 생체 내 강제 노동 수축 나타내는 고압 상태로 무부하 자궁 저압 상태로부터 천이를 측정 할 수있다. 이 방법은 유전자 발현 (9)의 생리적 영향을 보여주는 손상 분만 및 야생형 마우스와 트랜스 제닉 마우스 사이에 상당한 압력 차이를 감지 할 수있다. 이 프로토콜은 임신 중에 마우스 자궁 압력을 연구하는 생체 방법, 실시간을 제공합니다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="702">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:105px;">Company</td>
			<td style="width:147px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:207px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Surgical Glue</td>
			<td style="width:105px;">3M Vetbond</td>
			<td style="width:147px;">1469SB</td>
			<td>Tissue Adhesive--stored in Drierite</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Absorbable 6-0 Sutures</td>
			<td style="width:105px;">Ethicon</td>
			<td style="width:147px;">J212H</td>
			<td>Vicryl</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Non-absorbable 6-0 Sutures</td>
			<td style="width:105px;">Ethicon</td>
			<td style="width:147px;">8706H</td>
			<td>Prolene</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;">Water Jacket Blanket + Heating Pad</td>
			<td style="width:105px;">Gaymer</td>
			<td style="width:147px;">T/Pump PN 11184-000 Blanket-66N111CC</td>
			<td>Specialized for rodents</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Bead sterilizer</td>
			<td style="width:105px;">Keller</td>
			<td style="width:147px;">Z378577</td>
			<td>Steri 250 Sterilizer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Disecting Microscope</td>
			<td style="width:105px;">Nikon</td>
			<td style="width:147px;">SMZ754</td>
			<td>Fibre optic gooseneck external light source</td>
		</tr>
		<tr height="46">
			<td height="46" style="height:46px;width:245px;">Sterile Surgical Gloves--Latex&#160;</td>
			<td style="width:105px;">Cardinal Health Triflex</td>
			<td style="width:147px;">2D7253</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:245px;">PhysioTel PA-C10 Pressure Transmitter</td>
			<td style="width:105px;">&#160;Data Sciences International</td>
			<td style="width:147px;">270-0135-001</td>
			<td style="width:207px;">TA11PA-C10</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:245px;">Telemeter Reciever</td>
			<td style="width:105px;">&#160;Data Sciences International</td>
			<td style="width:147px;">272-6001-001</td>
			<td style="width:207px;">RPC-1</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:245px;">Dataquest ART 4.3.2 Analysis Platinum</td>
			<td style="width:105px;">&#160;Data Sciences International</td>
			<td style="width:147px;">271-0147-141</td>
			<td>Analysis software</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Diet Recovery Gel</td>
			<td style="width:105px;">Clear H2O</td>
			<td style="width:147px;">72-01-5022</td>
			<td>Purified Soft Diet for Rodents</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Tergazyme</td>
			<td style="width:105px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td>Z273287</td>
			<td>Enzyme detergent</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

intrauterine telemetry to measure mouse contractile pressure in vivo

분자 및 전기 신호의 복잡한 통합 임신의 단부에 수축 기관에 무부하 자궁 변환하는데 필요하다. 자궁 수축의 핵심 규제의 발견에도 불구하고,이 과정은 아직 완전히 이해되지 않습니다. 형질 전환 마우스는 출산을 연구하기에 이상적인 모델을 제공합니다. 이전에는 마우스의 자궁 수축을 연구 할 수있는 유일한 방법은 여러 가지 이유로 최적입니다 생체 아이소 메트릭 장력 기록했다. 자궁이 생리 학적 환경에서 제거해야합니다, 조사의 제한된 시간 코스가 가능하며, 마우스를 희생해야합니다. 방사성 원격 측정 최근 개발은 마우스에서 생체 내 자궁 내 압력의 길이, 실시간 측정을 허용했다. 배달 설명 될 때까지 여기, 자궁 텔레의 주입은 임신 중기에서 마우스 자궁의 압력 변화를 측정합니다. 언론의 비교 차이로야생형 및 트랜스 제닉 마우스는 간을 실시해, 관심 유전자의 생리적 영향이 설명 될 수있다. 이 기술은 조산을 포함한 임신 중 자궁 근 장애를 치료하는 데 사용되는 치료제의 개발을 촉진한다.

생체 내 자궁 내 압력 실시간 원격 측정은 수집 시스템을 이용하여 기록 될 수있다. 마우스의 동시 녹화와 짝 압력 샘플링 각 강아지의 전달의 정확한 시간을 캡처 어머니의 자궁 내 압력 배달 시간 상관 관계를 사용 하였다. 모든 데이터 포인트는 압력 - 대 - 시간 곡선 (도 1A)을 생성하는 플롯에 걸쳐 기록 될 수있다. 이 플롯은 임신 중에 점을 나타낸다 때 자궁 내 압력 ?...

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Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

This manuscript provides a protocol for implanting telemeters in the mouse for the purpose of measuring intrauterine pressures during pregnancy.

자궁 원격 측정은 마우스 수축 압력을 측정하는<em&gt; 생체</em

A complex integration of molecular and electrical signals is needed to transform a quiescent uterus into a contractile organ at the end of pregnancy. ...

intrauterine-telemetry-to-measure-mouse-contractile-pressure-in-vivo

Research

JoVE Journal

Medicine

Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

9.6K 조회수.  Washington University in St. Louis. This manuscript provides a protocol for implanting telemeters in the mouse for the purpose of measuring intrauterine pressures during pregnancy. 

비디오: Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

Pressure Controlled Ventilation to Induce Acute Lung Injury in Mice

Murine models are extensively used to investigate acute injuries of different organs systems (1-34). Acute lung injury (ALI), which occurs with prolonged mechanical ventilation, contributes to morbidity and mortality of critical illness, and studies on novel genetic or pharmacological targets are areas of intense investigation (1-3, 5, 8, 26, 30, 33-36). ALI is defined by the acute onset of the disease, which leads to non-cardiac pulmonary edema and subsequent impairment of pulmonary gas exchange (36). We have developed a murine model of ALI by using a pressure-controlled ventilation to induce ventilator-induced lung injury (2). For this purpose, C57BL/6 mice are anesthetized and a tracheotomy is performed followed by induction of ALI via mechanical ventilation. Mice are ventilated in a pressure-controlled setting with an inspiratory peak pressure of 45 mbar over 1 - 3 hours. As outcome parameters, pulmonary edema (wet-to-dry ratio), bronchoalveolar fluid albumin content, bronchoalveolar fluid and pulmonary tissue myeloperoxidase content and pulmonary gas exchange are assessed (2). Using this technique we could show that it sufficiently induces acute lung inflammation and can distinguish between different treatment groups or genotypes (1-3, 5). Therefore this technique may be helpful for researchers who pursue molecular mechanisms involved in ALI using a genetic approach in mice with gene-targeted deletion.

A murine model for ventilator induced lung injury is an important tool to study an acute lung injury in vivo. Here, we report an easy applicable in situ model for acute lung injury using high-pressure mechanical ventilation to induce acute failure of the lung.

마우스의 급성 폐 상해를 유발하는 압력 제어 환기

Murine models are extensively used to investigate acute injuries of different organs systems (1-34). Acute lung injury (ALI), which occurs with prolonged ...

연구

의학

Fetal Echocardiography and Pulsed-wave Doppler Ultrasound in a Rabbit Model of Intrauterine Growth Restriction

Fetal intrauterine growth restriction (IUGR) results in abnormal cardiac function that is apparent antenatally due to advances in fetoplacental Doppler ultrasound and fetal echocardiography. Increasingly, these imaging modalities are being employed clinically to examine cardiac function and assess wellbeing in utero, thereby guiding timing of birth decisions. Here, we used a rabbit model of IUGR that allows analysis of cardiac function in a clinically relevant way. Using isoflurane induced anesthesia, IUGR is surgically created at gestational age day 25 by performing a laparotomy, exposing the bicornuate uterus and then ligating 40-50% of uteroplacental vessels supplying each gestational sac in a single uterine horn. The other horn in the rabbit bicornuate uterus serves as internal control fetuses. Then, after recovery at gestational age day 30 (full term), the same rabbit undergoes examination of fetal cardiac function. Anesthesia is induced with ketamine and xylazine intramuscularly, then maintained by a continuous intravenous infusion of ketamine and xylazine to minimize iatrogenic effects on fetal cardiac function. A repeat laparotomy is performed to expose each gestational sac and a microultrasound examination (VisualSonics VEVO 2100) of fetal cardiac function is performed. Placental insufficiency is evident by a raised pulsatility index or an absent or reversed end diastolic flow of the umbilical artery Doppler waveform. The ductus venosus and middle cerebral artery Doppler is then examined. Fetal echocardiography is performed by recording B mode, M mode and flow velocity waveforms in lateral and apical views. Offline calculations determine standard M-mode cardiac variables, tricuspid and mitral annular plane systolic excursion, speckle tracking and strain analysis, modified myocardial performance index and vascular flow velocity waveforms of interest. This small animal model of IUGR therefore affords examination of in utero cardiac function that is consistent with current clinical practice and is therefore useful in a translational research setting.

We describe examination of fetal cardiac function with contemporary functional fetal echocardiography and fetoplacental Doppler ultrasound using the VisualSonics VEVO 2100 microultrasound in a surgically induced model of intrauterine fetal growth restriction in a rabbit.

자궁 내 성장 제한의 토끼 모델에서 태아 심 초음파 및 펄스 파 도플러 초음파

Fetal intrauterine growth restriction (IUGR) results in abnormal cardiac function that is apparent antenatally due to advances in fetoplacental Doppler ...

In vivo 19F MRI for Cell Tracking

In vivo 19F MRI allows quantitative cell tracking without the use of ionizing radiation. It is a noninvasive technique that can be applied to humans. Here, we describe a general protocol for cell labeling, imaging, and image processing. The technique is applicable to various cell types and animal models, although here we focus on a typical mouse model for tracking murine immune cells. The most important issues for cell labeling are described, as these are relevant to all models. Similarly, key imaging parameters are listed, although the details will vary depending on the MRI system and the individual setup. Finally, we include an image processing protocol for quantification. Variations for this, and other parts of the protocol, are assessed in the Discussion section. Based on the detailed procedure described here, the user will need to adapt the protocol for each specific cell type, cell label, animal model, and imaging setup. Note that the protocol can also be adapted for human use, as long as clinical restrictions are met.

In vivo 19F MRI for Cell Tracking

We describe a general protocol for in vivo cell tracking using MRI in a mouse model with ex vivo labeled cells. A typical protocol for cell labeling, image acquisition processing and quantification is included.

세포 추적을위한 생체 19 F MRI에서

In vivo 19F MRI allows quantitative cell tracking without the use of ionizing radiation. It is a noninvasive technique that can be applied to humans. ...

Accuracy in Dental Medicine, A New Way to Measure Trueness and Precision

Reference scanners are used in dental medicine to verify a lot of procedures. The main interest is to verify impression methods as they serve as a base for dental restorations. The current limitation of many reference scanners is the lack of accuracy scanning large objects like full dental arches, or the limited possibility to assess detailed tooth surfaces. A new reference scanner, based on focus variation scanning technique, was evaluated with regards to highest local and general accuracy. A specific scanning protocol was tested to scan original tooth surface from dental impressions. Also, different model materials were verified. The results showed a high scanning accuracy of the reference scanner with a mean deviation of 5.3 &#177; 1.1 &#181;m for trueness and 1.6 &#177; 0.6 &#181;m for precision in case of full arch scans. Current dental impression methods showed much higher deviations (trueness: 20.4 &#177; 2.2 &#181;m, precision: 12.5 &#177; 2.5 &#181;m) than the internal scanning accuracy of the reference scanner. Smaller objects like single tooth surface can be scanned with an even higher accuracy, enabling the system to assess erosive and abrasive tooth surface loss. The reference scanner can be used to measure differences for a lot of dental research fields. The different magnification levels combined with a high local and general accuracy can be used to assess changes of single teeth or restorations up to full arch changes.

Accuracy is a major demand in dental medicine. To verify accuracy, reference scanners are needed. This article presents a new reference scanner with an adjusted scanning method to acquire a broad variety of dental morphologies with high trueness and precision.

진도 및 정밀 측정하는 치과, 새로운 방법의 정확도

Reference scanners are used in dental medicine to verify a lot of procedures. The main interest is to verify impression methods as they serve as a base ...

Measurement of the Pressure-volume Curve in Mouse Lungs

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential phenotypic changes are best assessed by measurement of the changes in lung elasticity. To best understand specific mechanisms underlying such pathologies in mice, it is essential to make functional measurements that can reflect the developing pathology. Although there are many ways to measure elasticity, the classical method is that of the total lung pressure-volume (PV) curve done over the whole range of lung volumes. This measurement has been made on adult lungs from nearly all mammalian species dating back almost 100 years, and such PV curves also played a major role in the discovery and understanding of the function of pulmonary surfactant in fetal lung development. Unfortunately, such total PV curves have not been widely reported in the mouse, despite the fact that they can provide useful information on the macroscopic effects of structural changes in the lung. Although partial PV curves measuring just the changes in lung volume are sometimes reported, without a measure of absolute volume, the nonlinear nature of the total PV curve makes these partial ones very difficult to interpret. In the present study, we describe a standardized way to measure the total PV curve. We have then tested the ability of these curves to detect changes in mouse lung structure in two common lung pathologies, emphysema and fibrosis. Results showed significant changes in several variables consistent with expected structural changes with these pathologies. This measurement of the lung PV curve in mice thus provides a straightforward means to monitor the progression of the pathophysiologic changes over time and the potential effect of therapeutic procedures.

Here we present a protocol to simply and reliably measure the lung pressure-volume curve in mice, showing that it is sufficiently sensitive to detect phenotypic parenchymal changes in two common lung pathologies, pulmonary fibrosis and emphysema. This metric provides a means to quantify the lung&#8217;s structural changes with developing pathology.

마우스 폐의 압력 볼륨 곡선의 측정

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential ...

Trabecular Meshwork Response to Pressure Elevation in the Living Human Eye

The mechanical characteristics of the trabecular meshwork (TM) are linked to outflow resistance and intraocular pressure (IOP) regulation. The rationale behind this technique is the direct observation of the mechanical response of the TM to acute IOP elevation. Prior to scanning, IOP is measured at baseline and during IOP elevation. The limbus is scanned by spectral-domain optical coherence tomography at baseline and during IOP elevation (ophthalmodynamometer (ODM) applied at 30 g force). Scans are processed to enhance visualization of the aqueous humor outflow pathway using ImageJ. Vascular landmarks are used to identify corresponding locations in baseline and IOP elevation scan volumes. Schlemm canal (SC) cross-sectional area (SC-CSA) and SC length from anterior to posterior along its long axis are measured manually at 10 locations within a 1 mm segment of SC. Mean inner to outer wall distance (short axis length) is calculated as the area of SC divided by its long axis length. To examine the contribution of adjacent tissues to the effect IOP elevations, measurements are repeated without and with smooth muscle relaxation with instillation of tropicamide. TM migration into SC is resisted by TM stiffness, but is enhanced by the support of its attachment to adjacent smooth muscle within the ciliary body. This technique is the first to measure the living human TM response to pressure elevation in situ under physiological conditions within the human eye.

Trabecular meshwork (TM) migration into Schlemm&#8217;s canal space can be induced by acute pressure elevation by ophthalmodynamometer, and observed by spectral domain optical coherence tomography. The goal of this method is to quantify the morphometric response of the living outflow tract to acute pressure elevation in living tissues in situ.

살아있는 인간의 눈의 압력 상승에 섬유주 응답

The mechanical characteristics of the trabecular meshwork (TM) are linked to outflow resistance and intraocular pressure (IOP) regulation. The rationale ...

Cardiac Catheterization in Mice to Measure the Pressure Volume Relationship: Investigating the Bowditch Effect

Animal models that mimic human cardiac disorders have been created to test potential therapeutic strategies. A key component to evaluating these strategies is to examine their effects on heart function. There are several techniques to measure in vivo cardiac mechanics (e.g., echocardiography, pressure/volume relations, etc.). Compared to echocardiography, real-time left ventricular (LV) pressure/volume analysis via catheterization is more precise and insightful in assessing LV function. Additionally, LV pressure/volume analysis provides the ability to instantaneously record changes during manipulations of contractility (e.g., &#946;-adrenergic stimulation) and pathological insults (e.g., ischemia/reperfusion injury). In addition to the maximum (+dP/dt) and minimum (-dP/dt) rate of pressure change in the LV, an accurate assessment of LV function via several load-independent indexes (e.g., end systolic pressure volume relationship and preload recruitable stroke work) can be attained. Heart rate has a significant effect on LV contractility such that an increase in the heart rate is the primary mechanism to increase cardiac output (i.e., Bowditch effect). Thus, when comparing hemodynamics between experimental groups, it is necessary to have similar heart rates. Furthermore, a hallmark of many cardiomyopathy models is a decrease in contractile reserve (i.e., decreased Bowditch effect). Consequently, vital information can be obtained by determining the effects of increasing heart rate on contractility. Our and others data has demonstrated that the neuronal nitric oxide synthase (NOS1) knockout mouse has decreased contractility. Here we describe the procedure of measuring LV pressure/volume with increasing heart rates using the NOS1 knockout mouse model.

This article describes the measurement of murine left ventricular function via pressure/volume analysis at different heart rates.

Bowditch 효과 조사 : 압력 볼륨 관계를 측정하기 위해 마우스의 심장 도관

Animal models that mimic human cardiac disorders have been created to test potential therapeutic strategies. A key component to evaluating these ...

Development of an Algorithm to Perform a Comprehensive Study of Autonomic Dysreflexia in Animals with High Spinal Cord Injury Using a Telemetry Device

Spinal cord injury (SCI) is a debilitating neurological condition characterized by somatic and autonomic dysfunctions. In particular, SCI above the mid-thoracic level can lead to a potentially life-threatening hypertensive condition called autonomic dysreflexia (AD) that is often triggered by noxious or non-noxious somatic or visceral stimuli below the level of injury. One of the most common triggers of AD is the distension of pelvic viscera, such as during bladder and bowel distension or evacuation. This protocol presents a novel pattern recognition algorithm developed for a JAVA platform software to study the fluctuations of cardiovascular parameters as well as the number, severity and duration of spontaneously occurring AD events. The software is able to apply a pattern recognition algorithm on hemodynamic data such as systolic blood pressure (SBP) and heart rate (HR) extracted from telemetry recordings of conscious and unrestrained animals before and after thoracic (T3) complete transection. With this software, hemodynamic parameters and episodes of AD are able to be detected and analyzed with minimal experimenter bias.

The catheter of a telemetry device is implanted into the abdominal aorta in order to continuously collect beat-by-beat hemodynamic data from animals pre and post-high thoracic spinal cord transection. A novel JAVA software was employed to analyze hemodynamic parameters as well as frequency and intensity of spontaneous episodes of autonomic dysreflexia.

알고리즘의 개발은 원격 측정 장치를 사용하여 높은 척수 손상과 동물의 자율 Dysreflexia의 종합적인 연구를 수행하는

Spinal cord injury (SCI) is a debilitating neurological condition characterized by somatic and autonomic dysfunctions. In particular, SCI above the ...

Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. Indeed, research focusing on the discovery of new potential therapeutic targets using genetically altered mice requires a reliable, long-term assessment of the systemic arterial pressure variation. Currently, the gold standard for obtaining long-term measurements of blood pressure in ambulatory mice uses implantable radio-transmitters, which require&#160;artery cannulation. This technique eliminates the need for tethering, restraining, or anesthetizing the animals which introduce stress and artifacts during data sampling. However, arterial blood pressure monitoring in mice via catheterization can be rather challenging due to the small size of the arteries. Here we present a step-by-step guide to illustrate the crucial key passages for a successful subcutaneous implantation of radio-transmitters and carotid artery cannulation in mice. We also include examples of long-term blood pressure activity taken from freely moving mice after a period of post-surgery recovery. Following this procedure will allow reliable direct blood pressure recordings from multiple animals simultaneously.

The goal of this protocol is to assess systemic blood pressure in conscious freely moving mice using implantable radio-telemetry devices.

텔레 메 트리를 사용하여 자유롭게 이동 마우스의 장기 혈압 측정

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. ...

Depletion of Mouse Cells from Human Tumor Xenografts Significantly Improves Downstream Analysis of Target Cells

The use of in vitro cell line models for cancer research has been a useful tool. However, it has been shown that these models fail to reliably mimic patient tumors in different assays1. Human tumor xenografts represent the gold standard with respect to tumor biology, drug discovery, and metastasis research 2-4. Tumor xenografts can be derived from different types of material like tumor cell lines, tumor tissue from primary patient tumors4 or serially transplanted tumors. When propagated in vivo, xenografted tissue is infiltrated and vascularized by cells of mouse origin. Multiple factors such as the tumor entity, the origin of xenografted material, growth rate and region of transplantation influence the composition and the amount of mouse cells present in tumor xenografts. However, even when these factors are kept constant, the degree of mouse cell contamination is highly variable.
Contaminating mouse cells significantly impair downstream analyses of human tumor xenografts. As mouse fibroblasts show high plating efficacies and proliferation rates, they tend to overgrow cultures of human tumor cells, especially slowly proliferating subpopulations. Mouse cell derived DNA, mRNA, and protein components can bias downstream gene expression analysis, next-generation sequencing, as well as proteome analysis 5. To overcome these limitations, we have developed a fast and easy method to isolate untouched human tumor cells from xenografted tumor tissue. This procedure is based on the comprehensive depletion of cells of mouse origin by combining automated tissue dissociation with the benchtop tissue dissociator and magnetic cell sorting. Here, we demonstrate that human target cells can be can be obtained with purities higher than 96% within less than 20 min independent of the tumor type.

Human tumor xenografts are vascularized and infiltrated by cells of mouse origin during the growth phase in vivo. To circumvent the bias caused by these contaminating cells during downstream analysis, we developed a method allowing for comprehensive depletion of all mouse cells by magnetic cell sorting.

인간 종양 이종 이식에서 마우스 세포의 고갈은 크게 대상 세포의 다운 스트림 분석을 향상

The use of in vitro cell line models for cancer research has been a useful tool. However, it has been shown that these models fail to reliably mimic ...