This work was supported by funding from the March of Dimes FY12-133 (S.K.E.) and the National Institutes of Health R01HD037831 (S.K.E.). We would like to thank Dr. Deborah Frank for critical review of the manuscript.

ملاحظة: جميع الإجراءات الحيوانية ينسجم مع المبادئ التوجيهية لرعاية واستخدام الحيوانات المنصوص عليها من قبل المعاهد الوطنية للصحة. وتمت الموافقة على جميع البروتوكولات من قبل لجنة الدراسات الحيوانية في جامعة واشنطن في سانت لويس. ملاحظة: مواد محددة والمعدات اللازمة لهذا البروتوكول وترد المواد والجدول المعدات. 1. تربية موقوتة من إناث الفئران <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تربية الإناث البالغات بين شهرين وستة أشهر من العمر في وقت نافذة 2 ساعة مع الذكور. ليست هناك حاجة ساعة تربية محددة طالما يتم الاحتفاظ بها بما يتفق لمجمل التجربة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تأكيد الحمل عن طريق وجود المكونات كوبولاتوري. تعيين يوم وساعة الذي ينظر إلى المكونات أولا كيوم ما بعد الجماع 0 (dpc0). تذكر ساعة محددة عند بدء تسجيل الضغط. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء العمليات الجراحية على dpc8-13. فإن شركة ظفار المحدد يعتمد على سلالة الماوس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لتحديد ما إذا كان الفأر هو الحامل قبل الجراحة، والمؤسسة العامةالتصوير بالموجات فوق الصوتية rform من البطن مع 40 ميغاهيرتز مجموعة خطية التحقيق بالإضافة إلى نظام التصوير قبل بالإدارة التخدير. وهذا سوف يسمح التصور من الأكياس الحمل. إذا كان نظام الموجات فوق الصوتية غير متوفرة، واستخدام وزن الماوس. ملاحظة: زيادة الوزن لا يقل عن 2 غرام بين dpc0 وdpc8 وانتفاخ البطن يعد مؤشرا جيدا من الحمل. </li></ol> 2. القياس عن بعد جراحة الإعدادية <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام الأوتوكلاف لتعقيم الأدوات والشاش، ومسحات القطن، والستائر الجراحية، ونصائح ماصة خلال 24 ساعة قبل الجراحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سطح جراحة نظيفة مع الايثانول 70٪. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بدوره على وسادة التدفئة (المتخصصة للقوارض) وحبة معقمة. </li></ol> 3. القياس عن بعد جراحة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> للتخدير، استخدم 4-5٪ الأيزوفلورين مع معدل تدفق الأوكسجين من 1-2 لتر / دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> انتظر حتى يظهر الماوس علامات التخدير ثم حقن تحت الجلد مع البوبرينورفين (مسكن: 0.1 مل لكل 20 غرام). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حلق البطن من الفأرة من أسفل الأضلاع وصولا الى المثانة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جلب الماوس إلى طاولة جراحة في مرحلة ما قبل تحسنت سادة التدفئة، وتغطية العينين الماوس، مع مرهم للعين لمنع جفاف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تبدأ تقنية معقمة. وضعت على قفازات معقمة والحفاظ على المجمع كما سطح العقيمة التي لوضع اليود والإيثانول الدعك. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة مقياس البعد من حزمة أو المالحة واستخدام ملقط معقم لوضعه على شاش معقم. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام حقنة (التي قدمها المورد مقياس البعد) لملء طرف القسطرة مع هلام. الضغط بلطف القسطرة خلق الضغط السلبي كافيا لاستخلاص جل في القسطرة. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع غيض العقيمة على ماصة. ماصة 2 ميكرولتر من الغراء الجراحية وتعيين ماصة على سطح العقيمة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لتنظيف موقع الجراحية، مسحة المنطقة مع اليود ثم مع الايثانول 70٪. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قطع حفرة في ثنى الجراحية مجرد كبيرة بما فيه الكفايةللمنطقة اللازمة لشق ومكان على الماوس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء قرصة القدم (استجابة دواسة) لضمان تخدير الماوس تماما قبل اتخاذ شق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل عمودي خط الوسط شق صغير. التالي، وجعل شق مماثل من خلال الكامنة عضلة جدار الجسم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سحب بلطف الرحم خارج تجويف الجسم وتحديد موقع قرن الرحم التي تحتوي على معظم الجراء التي هي قابلة للحياة. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> اختياري - لإضافة ميرنا، وضخ ناقلات فيروسية في الطبقة العضلية من الرحم قبل الإدراج من مقياس البعد. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء شق صغير في غيض من قرن الرحم مع 3 مم قطع مقص الربيع الحافة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كاتب الموضوع القسطرة، دون الضغط، وبين جدار الرحم والحويصلات الجنين. إدراج القسطرة الماضي عدة الأكياس للحد من زواله عرضي. تأكد من عدم نشعر بالانزعاج الحويصلات الجنين قبل الإدراج. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ماصة الغراء الجراحي لموقع مقياس البعد الإدراج إلى الالتزام القسطرة إلى شالقرن terine ومنع القسطرة من الانزلاق للخروج من قرن الرحم. انتظر بضع ثوان للالغراء لتصبح جامدة، وبعد ذلك وضعت بعناية الرحم إلى داخل تجويف الجسم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع مقياس البعد في تجويف الجسم على الجانب المقابل للموقع إدخال القسطرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خياطة تجويف الجسم مغلقة مع 6.0 الغرز للامتصاص. أولا، هل غرزة محفظة ثم 3-4 غرز الفردية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خياطة الجلد باستخدام نفس الأسلوب، ولكن مع 6-0 خياطة غير قابل للامتصاص. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ديبوكايين مسحة (مسكن موضعي) مرهم على موقع شق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حقن 0.3-0.4 مل من معقم المالحة تحت الجلد للمساعدة على ترطيب الحيوان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مراقبة الحيوانات بعد الجراحة حتى يتم مستيقظا تماما. لا تضع الماوس مرة أخرى في قفصه حتى أنها قادرة على عقد بحرية رأسه فوق الجدول كما أنواع معينة من الفراش يمكن خنق ماوس تخدير بشكل كبير. لماوس التي تم تخدير لمدة 30-45 دقيقة، وينبغي للمرء أن يتوقع التاسعالبريد الماوس ليكون مستيقظا تماما قبل 1 ساعة و 15 دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إذا كان أداء العمليات الجراحية إضافية، يمسح الأدوات مع الايثانول 70٪ وحبة تعقيم قبل إعادة استخدامها. </li></ol> 4. ما بعد الجراحة الانتعاش <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> رصد التقدم المحرز بعد الجراحة اليومي في السجل. الكتالوج زيادة الوزن وفقدان ومشاهدة لالخمول، والنزيف، أو إغلاق ناقصة من شق جراحي. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تغذية الماوس خففت طعام الماوس (~ اتساق عصير التفاح) أو متخصص الانتعاش الحمية الغذائية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> دراسة الغرز وتأكد من عدم وسحبت خارج، ولكن حاول أن لا تعامل مع الماوس بشكل مفرط. </li></ol></li></ol> 5. القياس تسجيل <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في يوم من الفائدة (على الأقل يومين إلى ثلاثة أيام بعد أن تعافى من عملية جراحية الماوس)، ضع مغناطيس بالقرب من الماوس لتشغيل مقياس البعد. وضع القفص الماوس على المتلقي. ضوء على المتلقي يجب أن تعمل إذا تم تنشيط مقياس البعد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> معايرة teleme العلامة التجارية الجديدة<html> النسب مع المعايرة الخاصة بالشركة المصنعة المقدمة. وستبقى مواصفات معايرة مقياس البعد استخدامها في مجال البرمجيات. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في داخل البرنامج، بدء التسجيل عن طريق النقر على الحق في &quot;الحيوان&quot; وانقر على &quot;بدء أخذ العينات، ومستمرة&quot;، الذي يسمح أخذ العينات بمعدلات تصل إلى 500 هرتز. تأكد من تعيين البرنامج لحفظ وتعقبها. ملاحظة: عندما يتحول رمز الماوس أخذ العينات الأخضر، يجري تسجيلها الضغوط. يمكن إزعاج الماوس أثناء الولادة يقطع أو تغيير العمل، لذلك نلاحظ بحذر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد الولادة أو فترة زمنية من الفائدة، وإيقاف التسجيل عن طريق النقر على الحق في &quot;الحيوان&quot; واختيار &quot;وقف التسجيلات، جميع&quot;. استخدام المغناطيس لإيقاف مقياس البعد لإنقاذ حياة البطارية، وبطارية مقياس البعد وعادة ما تستمر فقط لمدة 1.5 أشهر من التسجيل المتواصل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الموت ببطء الماوس عن طريق CO 2 جرعة زائدة واسترداد مقياس البعد. يصرح باستخدامها الجراء عن طريق قطع الرأس. </li></ol>TLE &quot;&gt; 6. التعقيم مقياس البعد <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع مقياس البعد في حل من 1٪ انزيم المنظفات في الماء طوال الليل منزوع الأيونات في درجة حرارة الغرفة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> شطف مقياس البعد في الماء منزوع الأيونات وإزالة جميع الأنسجة والغراء، والحرص على عدم الضغط على القسطرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> احتضان مقياس البعد في 2٪ غلوتارالدهيد لمدة 24 ساعة في درجة حرارة الغرفة لتعقيم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> شطف مقياس البعد بمحلول ملحي معقم وتخزينها في المياه المالحة عقيمة حتى زرع المقبل أو ليتم إرسالها إلى الشركة المصنعة ليتم تجديدها. وينبغي تجديدها Telemeters إذا كان موجودا الأنسجة داخل القسطرة بعد التعقيم. عادة telemeters يمكن استخدام 4-5 مرات قبل أن تحتاج إلى تجديد. </li></ol>

<ol>
	<li>Slattery, M. M., Morrison, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preterm+delivery.">Preterm delivery.</a> Lancet. 360, 1489-1497 (2002).</li><li>Goldenberg, R. L., Culhane, J. F., Iams, J. D., Romero, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epidemiology+and+causes+of+preterm+birth.">Epidemiology and causes of preterm birth.</a> Lancet. 371, 75-84 (2008).</li><li>Keelan, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pharmacological+inhibition+of+inflammatory+pathways+for+the+prevention+of+preterm+birth.">Pharmacological inhibition of inflammatory pathways for the prevention of preterm birth.</a> Journal Of Reproductive Immunology. 88, 176-184 (2011).</li><li>Voltolini, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Understanding+spontaneous+preterm+birth:+from+underlying+mechanisms+to+predictive+and+preventive+interventions.">Understanding spontaneous preterm birth: from underlying mechanisms to predictive and preventive interventions.</a> Reproductive Sciences. 20, 1274-1292 (2013).</li><li>Ratajczak, C. K., Muglia, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insights+into+parturition+biology+from+genetically+altered+mice.">Insights into parturition biology from genetically altered mice.</a> Pediatric research. 64, 581-589 (2008).</li><li>Rajakumar, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Placental+HIF-1+alpha,+HIF-2+alpha,+membrane+and+soluble+VEGF+receptor-1+proteins+are+not+increased+in+normotensive+pregnancies+complicated+by+late-onset+intrauterine+growth+restriction.">Placental HIF-1 alpha, HIF-2 alpha, membrane and soluble VEGF receptor-1 proteins are not increased in normotensive pregnancies complicated by late-onset intrauterine growth restriction.</a> American Journal Of Physiology. Regulatory, Integrative And Comparative Physiology. 293, (2007).</li><li>Whitesall, S. E., Hoff, J. B., Vollmer, A. P., D'Alecy, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+simultaneous+measurement+of+mouse+systolic+arterial+blood+pressure+by+radiotelemetry+and+tail-cuff+methods.+American+journal+of+physiology.">Comparison of simultaneous measurement of mouse systolic arterial blood pressure by radiotelemetry and tail-cuff methods. American journal of physiology.</a> Heart And Circulatory Physiology. 286, H2408-H2415 (2004).</li><li>Mackay, L. B., Shi, L. B., Maul, H. .., Maner, W. L., Garfield, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+bilateral+pelvic+neurectomy+on+cervical+ripening+in+pregnant+rats.">The effect of bilateral pelvic neurectomy on cervical ripening in pregnant rats.</a> Journal Of Perinatal Medicine. 37, 263-269 (2009).</li><li>Pierce, S. L., Kutschke, W., Cabeza, R., England, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+measurement+of+intrauterine+pressure+by+telemetry:+a+new+approach+for+studying+parturition+in+mouse+models.">In vivo measurement of intrauterine pressure by telemetry: a new approach for studying parturition in mouse models.</a> Physiol Genomics. 42, 310-316 (2010).</li><li>Imamura, T., Luedke, C. E., Vogt, S. K., Muglia, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oxytocin+modulates+the+onset+of+murine+parturition+by+competing+ovarian+and+uterine+effects.">Oxytocin modulates the onset of murine parturition by competing ovarian and uterine effects.</a> American Journal Of Physiology. Regulatory, Integrative And Comparative Physiology. 279, R1061-R1067 (2000).</li><li>McCloskey, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+inwardly+rectifying+K++channel+KIR7.1+controls+uterine+excitability+throughout+pregnancy.">The inwardly rectifying K+ channel KIR7.1 controls uterine excitability throughout pregnancy.</a> EMBO Mol Med. 6 (9), 1161-1174 (2014).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

وقد اعتمدت التحقيقات في انقباض ميوميتريال على القياسات المجراة سابقا من توتر العضلات. هذه المنهجية يمكن أن تكون مفيدة للاختبار في مرحلة مبكرة من الأدوية المقوية لتوتر الرحم وضعت حديثا التي لا يمكن أن تدار على الحيوانات الحية. ومع ذلك، النهج في الجسم الحي ض?...

الولادة المبكرة هي السبب الرئيسي للمراضة والوفيات في البلدان المتقدمة ما حول الولادة، وهي مسؤولة عن 50٪ من الاعتلال فترة ما حول الولادة و 75٪ من وفيات ما حول الولادة 1،2. الولادة المبكرة هو متعدد الأوجه ويمكن أن يكون مجهول السبب. على الرغم من أن الكثير من البحث برز على المسارات الجزيئية والكهربائية تحويل عضل الرحم من الأنسجة هادئة إلى مقلص واحد، والفيزيولوجيا المرضية الدقيق الولادة المبكرة لا يزال بعيد المنال. كانت جميعها ترتبط الغدد الصماء، والتهابات، وتنظيم الجينات إلى الخدج العمل 3،4. ومع ذلك، مخاوف أخلاقية تحد من القدرة على إجراء البحوث حول آليات الولادة المبكرة لدى البشر. ونظرا لهذه القيود، تحولت العديد من الباحثين على الفئران كنظام نموذج التي لدراسة علم وظائف الأعضاء من الولادة. الفئران لها gestations قصيرة استمرت ما يقرب من ثلاثة أسابيع، ويمكن بسهولة التلاعب بها وراثيا. بالإضافة إلى ذلك، عدة نماذج الماوس الوراثية لهاوضعت لتحديد مسارات الإشارات التي هي ضرورية لعمل 5. على الرغم من الاختلافات الرئيسية بين الماوس والولادة الإنسان والفئران والانسان يشتركان في العديد من نفس الآليات التي تعتبر أساسية للعمل، بما في ذلك التهاب داخل الرحم وإصابة 6. وهكذا، الفئران بمثابة أداة لا تقدر بثمن لدراسة النشاط الرحم. حتى الآن، معيار الذهب لقياس انقباض الرحم في الفئران كانت خارج الحي تسجيلات التوتر متساوي القياس. ولكن هذا يقتصر على نقطة واحدة مرة الحمل في التجربة ويتطلب إزالة الرحم من بيئتها الفسيولوجية. عامل مهم آخر هو عدد كبير من الحيوانات المطلوبة لهذه التحقيقات. وأخيرا، هذه المنهجية لا يسمح للدراسات طولية دراسة تحريض المخاض قبل الأوان والفيزيولوجيا المرضية. التقدم المحرز مؤخرا في أجهزة القياس الإشعاعي المستخدمة لدراسة ضغط الدم يغير 7 في الفئران وكثافة العملياتضغط rauterine في الفئران 8 توسل السؤال ما إذا كان نفس التكنولوجيا يمكن أن تستخدم لدراسة التغيرات في الضغط داخل الرحم في الفئران خلال فترة الحمل. بعد استكشاف الأخطاء وإصلاحها الأولي، تم وضع طريقة لقياس بنجاح تحريض المخاض والتقدم في الماوس. يمكن لهذا النهج في الجسم الحي قياس التحول من الدولة الضغط المنخفض من الرحم هادئة للدولة وارتفاع ضغط الإرشادية للتقلصات العمل قوية. وقد كان هذا الأسلوب أيضا قادرة على الكشف عن الاختلافات ضغط كبيرة بين الفئران المعدلة وراثيا مع الولادة للخطر والفئران نوع البرية، مما يدل على تأثير الفسيولوجية في التعبير الجيني 9. يوفر هذا البروتوكول في الوقت الحقيقي، في طريقة الجسم الحي لدراسة ضغط الماوس الرحم خلال فترة الحمل.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="702">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:105px;">Company</td>
			<td style="width:147px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:207px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Surgical Glue</td>
			<td style="width:105px;">3M Vetbond</td>
			<td style="width:147px;">1469SB</td>
			<td>Tissue Adhesive--stored in Drierite</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Absorbable 6-0 Sutures</td>
			<td style="width:105px;">Ethicon</td>
			<td style="width:147px;">J212H</td>
			<td>Vicryl</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Non-absorbable 6-0 Sutures</td>
			<td style="width:105px;">Ethicon</td>
			<td style="width:147px;">8706H</td>
			<td>Prolene</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;">Water Jacket Blanket + Heating Pad</td>
			<td style="width:105px;">Gaymer</td>
			<td style="width:147px;">T/Pump PN 11184-000 Blanket-66N111CC</td>
			<td>Specialized for rodents</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Bead sterilizer</td>
			<td style="width:105px;">Keller</td>
			<td style="width:147px;">Z378577</td>
			<td>Steri 250 Sterilizer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Disecting Microscope</td>
			<td style="width:105px;">Nikon</td>
			<td style="width:147px;">SMZ754</td>
			<td>Fibre optic gooseneck external light source</td>
		</tr>
		<tr height="46">
			<td height="46" style="height:46px;width:245px;">Sterile Surgical Gloves--Latex&#160;</td>
			<td style="width:105px;">Cardinal Health Triflex</td>
			<td style="width:147px;">2D7253</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:245px;">PhysioTel PA-C10 Pressure Transmitter</td>
			<td style="width:105px;">&#160;Data Sciences International</td>
			<td style="width:147px;">270-0135-001</td>
			<td style="width:207px;">TA11PA-C10</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:245px;">Telemeter Reciever</td>
			<td style="width:105px;">&#160;Data Sciences International</td>
			<td style="width:147px;">272-6001-001</td>
			<td style="width:207px;">RPC-1</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:245px;">Dataquest ART 4.3.2 Analysis Platinum</td>
			<td style="width:105px;">&#160;Data Sciences International</td>
			<td style="width:147px;">271-0147-141</td>
			<td>Analysis software</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Diet Recovery Gel</td>
			<td style="width:105px;">Clear H2O</td>
			<td style="width:147px;">72-01-5022</td>
			<td>Purified Soft Diet for Rodents</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:245px;">Tergazyme</td>
			<td style="width:105px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td>Z273287</td>
			<td>Enzyme detergent</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

intrauterine telemetry to measure mouse contractile pressure in vivo

وهناك حاجة إلى التكامل معقدة من الإشارات الجزيئية والكهربائية لتحويل الرحم هادئة في جهاز مقلص في نهاية الحمل. وعلى الرغم من اكتشاف المنظمين الرئيسية الرحم انقباض، لا تزال غير مفهومة تماما هذه العملية. وتوفر الفئران المعدلة وراثيا نموذج مثالي للدراسة الولادة. سابقا، كان الطريقة الوحيدة لدراسة الرحم انقباض في الماوس خارج الحي تسجيلات التوتر متساوي القياس، والتي هي دون المستوى الأمثل لعدة أسباب. يجب إزالة الرحم من بيئتها الفسيولوجية، ودورة زمنية محدودة من التحقيق هو ممكن، ويجب التضحية الفئران. وقد سمحت التطورات الأخيرة في القياس الإشعاعي للالطولية، والقياسات في الوقت الحقيقي من الضغط داخل الرحم في الجسم الحي في الفئران. هنا، وغرس لمقياس البعد داخل الرحم لقياس تغيرات الضغط في الرحم الماوس من منتصف الحمل حتى يتم وصفها التسليم. من خلال مقارنة الاختلافات في الصحافةures بين نوع البرية والفئران المعدلة وراثيا، وتأثير الفسيولوجية من الجين من الفائدة يمكن توضيح. هذه التقنية يجب الإسراع في تطوير علاجات تستخدم لعلاج اضطرابات ميوميتريال خلال فترة الحمل، بما في ذلك المخاض قبل الأوان.

في الوقت الحقيقي في الضغوط داخل الرحم الجسم الحي يمكن تسجيلها باستخدام نظام الحصول على القياس عن بعد. تم استخدام أخذ العينات الضغط يقترن في وقت واحد تسجيل الفيديو من الماوس لالتقاط الوقت المحدد للتسليم كل الجرو وربط التسليم في الوقت المحدد لضغط الرحم للأم. ...

Watch this Scientific Journal Video about Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo at JoVE.com

Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

This manuscript provides a protocol for implanting telemeters in the mouse for the purpose of measuring intrauterine pressures during pregnancy.

القياس عن بعد داخل الرحم لقياس ماوس مقلص الضغط<em&gt; في فيفو</em

A complex integration of molecular and electrical signals is needed to transform a quiescent uterus into a contractile organ at the end of pregnancy. ...

intrauterine-telemetry-to-measure-mouse-contractile-pressure-in-vivo

Research

JoVE Journal

Medicine

Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

9.6K Views.  Washington University in St. Louis. This manuscript provides a protocol for implanting telemeters in the mouse for the purpose of measuring intrauterine pressures during pregnancy. 

Video: Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

Pressure Controlled Ventilation to Induce Acute Lung Injury in Mice

Murine models are extensively used to investigate acute injuries of different organs systems (1-34). Acute lung injury (ALI), which occurs with prolonged mechanical ventilation, contributes to morbidity and mortality of critical illness, and studies on novel genetic or pharmacological targets are areas of intense investigation (1-3, 5, 8, 26, 30, 33-36). ALI is defined by the acute onset of the disease, which leads to non-cardiac pulmonary edema and subsequent impairment of pulmonary gas exchange (36). We have developed a murine model of ALI by using a pressure-controlled ventilation to induce ventilator-induced lung injury (2). For this purpose, C57BL/6 mice are anesthetized and a tracheotomy is performed followed by induction of ALI via mechanical ventilation. Mice are ventilated in a pressure-controlled setting with an inspiratory peak pressure of 45 mbar over 1 - 3 hours. As outcome parameters, pulmonary edema (wet-to-dry ratio), bronchoalveolar fluid albumin content, bronchoalveolar fluid and pulmonary tissue myeloperoxidase content and pulmonary gas exchange are assessed (2). Using this technique we could show that it sufficiently induces acute lung inflammation and can distinguish between different treatment groups or genotypes (1-3, 5). Therefore this technique may be helpful for researchers who pursue molecular mechanisms involved in ALI using a genetic approach in mice with gene-targeted deletion.

A murine model for ventilator induced lung injury is an important tool to study an acute lung injury in vivo. Here, we report an easy applicable in situ model for acute lung injury using high-pressure mechanical ventilation to induce acute failure of the lung.

التهوية الضغط الشواهد للحث على إصابة الرئة الحادة في الفئران

Murine models are extensively used to investigate acute injuries of different organs systems (1-34). Acute lung injury (ALI), which occurs with prolonged ...

In vivo Measurement of the Mouse Pulmonary Endothelial Surface Layer

The endothelial glycocalyx is a layer of proteoglycans and associated glycosaminoglycans lining the vascular lumen. In vivo, the glycocalyx is highly hydrated, forming a substantial endothelial surface layer (ESL) that contributes to the maintenance of endothelial function. As the endothelial glycocalyx is often aberrant in vitro and is lost during standard tissue fixation techniques, study of the ESL requires use of intravital microscopy. To best approximate the complex physiology of the alveolar microvasculature, pulmonary intravital imaging is ideally performed on a freely-moving lung. These preparations, however, typically suffer from extensive motion artifact. We demonstrate how closed-chest intravital microscopy of a freely-moving mouse lung can be used to measure glycocalyx integrity via ESL exclusion of fluorescently-labeled high molecular weight dextrans from the endothelial surface. This non-recovery surgical technique, which requires simultaneous brightfield and fluorescent imaging of the mouse lung, allows for longitudinal observation of the subpleural microvasculature without evidence of inducing confounding lung injury.

In vivo Measurement of the Mouse Pulmonary Endothelial Surface Layer

The endothelial glycocalyx/endothelial surface layer is ideally studied using intravital microscopy. Intravital microscopy is technically challenging in a moving organ such as the lung. We demonstrate how simultaneous brightfield and fluorescent microscopy may be used to estimate endothelial surface layer thickness in a freely-moving in vivo mouse lung.

في قياس الجسم الحي من الماوس الرئوي الطبقة السطحية غشائي

The endothelial glycocalyx is a layer of proteoglycans and associated glycosaminoglycans lining the vascular lumen. In vivo, the glycocalyx is highly ...

Fetal Echocardiography and Pulsed-wave Doppler Ultrasound in a Rabbit Model of Intrauterine Growth Restriction

Fetal intrauterine growth restriction (IUGR) results in abnormal cardiac function that is apparent antenatally due to advances in fetoplacental Doppler ultrasound and fetal echocardiography. Increasingly, these imaging modalities are being employed clinically to examine cardiac function and assess wellbeing in utero, thereby guiding timing of birth decisions. Here, we used a rabbit model of IUGR that allows analysis of cardiac function in a clinically relevant way. Using isoflurane induced anesthesia, IUGR is surgically created at gestational age day 25 by performing a laparotomy, exposing the bicornuate uterus and then ligating 40-50% of uteroplacental vessels supplying each gestational sac in a single uterine horn. The other horn in the rabbit bicornuate uterus serves as internal control fetuses. Then, after recovery at gestational age day 30 (full term), the same rabbit undergoes examination of fetal cardiac function. Anesthesia is induced with ketamine and xylazine intramuscularly, then maintained by a continuous intravenous infusion of ketamine and xylazine to minimize iatrogenic effects on fetal cardiac function. A repeat laparotomy is performed to expose each gestational sac and a microultrasound examination (VisualSonics VEVO 2100) of fetal cardiac function is performed. Placental insufficiency is evident by a raised pulsatility index or an absent or reversed end diastolic flow of the umbilical artery Doppler waveform. The ductus venosus and middle cerebral artery Doppler is then examined. Fetal echocardiography is performed by recording B mode, M mode and flow velocity waveforms in lateral and apical views. Offline calculations determine standard M-mode cardiac variables, tricuspid and mitral annular plane systolic excursion, speckle tracking and strain analysis, modified myocardial performance index and vascular flow velocity waveforms of interest. This small animal model of IUGR therefore affords examination of in utero cardiac function that is consistent with current clinical practice and is therefore useful in a translational research setting.

We describe examination of fetal cardiac function with contemporary functional fetal echocardiography and fetoplacental Doppler ultrasound using the VisualSonics VEVO 2100 microultrasound in a surgically induced model of intrauterine fetal growth restriction in a rabbit.

ضربات القلب الجنين ودوبلر نابض موجة الموجات فوق الصوتية في نموذج الأرنب من تقييد النمو داخل الرحم

Fetal intrauterine growth restriction (IUGR) results in abnormal cardiac function that is apparent antenatally due to advances in fetoplacental Doppler ...

In vivo 19F MRI for Cell Tracking

In vivo 19F MRI allows quantitative cell tracking without the use of ionizing radiation. It is a noninvasive technique that can be applied to humans. Here, we describe a general protocol for cell labeling, imaging, and image processing. The technique is applicable to various cell types and animal models, although here we focus on a typical mouse model for tracking murine immune cells. The most important issues for cell labeling are described, as these are relevant to all models. Similarly, key imaging parameters are listed, although the details will vary depending on the MRI system and the individual setup. Finally, we include an image processing protocol for quantification. Variations for this, and other parts of the protocol, are assessed in the Discussion section. Based on the detailed procedure described here, the user will need to adapt the protocol for each specific cell type, cell label, animal model, and imaging setup. Note that the protocol can also be adapted for human use, as long as clinical restrictions are met.

In vivo 19F MRI for Cell Tracking

We describe a general protocol for in vivo cell tracking using MRI in a mouse model with ex vivo labeled cells. A typical protocol for cell labeling, image acquisition processing and quantification is included.

في الجسم الحي 19 F التصوير بالرنين المغناطيسي لتتبع الخليوي

In vivo 19F MRI allows quantitative cell tracking without the use of ionizing radiation. It is a noninvasive technique that can be applied to humans. ...

Accuracy in Dental Medicine, A New Way to Measure Trueness and Precision

Reference scanners are used in dental medicine to verify a lot of procedures. The main interest is to verify impression methods as they serve as a base for dental restorations. The current limitation of many reference scanners is the lack of accuracy scanning large objects like full dental arches, or the limited possibility to assess detailed tooth surfaces. A new reference scanner, based on focus variation scanning technique, was evaluated with regards to highest local and general accuracy. A specific scanning protocol was tested to scan original tooth surface from dental impressions. Also, different model materials were verified. The results showed a high scanning accuracy of the reference scanner with a mean deviation of 5.3 &#177; 1.1 &#181;m for trueness and 1.6 &#177; 0.6 &#181;m for precision in case of full arch scans. Current dental impression methods showed much higher deviations (trueness: 20.4 &#177; 2.2 &#181;m, precision: 12.5 &#177; 2.5 &#181;m) than the internal scanning accuracy of the reference scanner. Smaller objects like single tooth surface can be scanned with an even higher accuracy, enabling the system to assess erosive and abrasive tooth surface loss. The reference scanner can be used to measure differences for a lot of dental research fields. The different magnification levels combined with a high local and general accuracy can be used to assess changes of single teeth or restorations up to full arch changes.

Accuracy is a major demand in dental medicine. To verify accuracy, reference scanners are needed. This article presents a new reference scanner with an adjusted scanning method to acquire a broad variety of dental morphologies with high trueness and precision.

الدقة في طب الأسنان، طريقة جديدة لقياس الصدق والدقة

Reference scanners are used in dental medicine to verify a lot of procedures. The main interest is to verify impression methods as they serve as a base ...

Measurement of the Pressure-volume Curve in Mouse Lungs

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential phenotypic changes are best assessed by measurement of the changes in lung elasticity. To best understand specific mechanisms underlying such pathologies in mice, it is essential to make functional measurements that can reflect the developing pathology. Although there are many ways to measure elasticity, the classical method is that of the total lung pressure-volume (PV) curve done over the whole range of lung volumes. This measurement has been made on adult lungs from nearly all mammalian species dating back almost 100 years, and such PV curves also played a major role in the discovery and understanding of the function of pulmonary surfactant in fetal lung development. Unfortunately, such total PV curves have not been widely reported in the mouse, despite the fact that they can provide useful information on the macroscopic effects of structural changes in the lung. Although partial PV curves measuring just the changes in lung volume are sometimes reported, without a measure of absolute volume, the nonlinear nature of the total PV curve makes these partial ones very difficult to interpret. In the present study, we describe a standardized way to measure the total PV curve. We have then tested the ability of these curves to detect changes in mouse lung structure in two common lung pathologies, emphysema and fibrosis. Results showed significant changes in several variables consistent with expected structural changes with these pathologies. This measurement of the lung PV curve in mice thus provides a straightforward means to monitor the progression of the pathophysiologic changes over time and the potential effect of therapeutic procedures.

Here we present a protocol to simply and reliably measure the lung pressure-volume curve in mice, showing that it is sufficiently sensitive to detect phenotypic parenchymal changes in two common lung pathologies, pulmonary fibrosis and emphysema. This metric provides a means to quantify the lung&#8217;s structural changes with developing pathology.

قياس منحنى الضغط الحجم في الرئتين ماوس

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential ...

Trabecular Meshwork Response to Pressure Elevation in the Living Human Eye

The mechanical characteristics of the trabecular meshwork (TM) are linked to outflow resistance and intraocular pressure (IOP) regulation. The rationale behind this technique is the direct observation of the mechanical response of the TM to acute IOP elevation. Prior to scanning, IOP is measured at baseline and during IOP elevation. The limbus is scanned by spectral-domain optical coherence tomography at baseline and during IOP elevation (ophthalmodynamometer (ODM) applied at 30 g force). Scans are processed to enhance visualization of the aqueous humor outflow pathway using ImageJ. Vascular landmarks are used to identify corresponding locations in baseline and IOP elevation scan volumes. Schlemm canal (SC) cross-sectional area (SC-CSA) and SC length from anterior to posterior along its long axis are measured manually at 10 locations within a 1 mm segment of SC. Mean inner to outer wall distance (short axis length) is calculated as the area of SC divided by its long axis length. To examine the contribution of adjacent tissues to the effect IOP elevations, measurements are repeated without and with smooth muscle relaxation with instillation of tropicamide. TM migration into SC is resisted by TM stiffness, but is enhanced by the support of its attachment to adjacent smooth muscle within the ciliary body. This technique is the first to measure the living human TM response to pressure elevation in situ under physiological conditions within the human eye.

Trabecular meshwork (TM) migration into Schlemm&#8217;s canal space can be induced by acute pressure elevation by ophthalmodynamometer, and observed by spectral domain optical coherence tomography. The goal of this method is to quantify the morphometric response of the living outflow tract to acute pressure elevation in living tissues in situ.

استجابة الشبكة التربيقية إلى الارتفاع الضغط في العين البشرية المعيشة

The mechanical characteristics of the trabecular meshwork (TM) are linked to outflow resistance and intraocular pressure (IOP) regulation. The rationale ...

Cardiac Catheterization in Mice to Measure the Pressure Volume Relationship: Investigating the Bowditch Effect

Animal models that mimic human cardiac disorders have been created to test potential therapeutic strategies. A key component to evaluating these strategies is to examine their effects on heart function. There are several techniques to measure in vivo cardiac mechanics (e.g., echocardiography, pressure/volume relations, etc.). Compared to echocardiography, real-time left ventricular (LV) pressure/volume analysis via catheterization is more precise and insightful in assessing LV function. Additionally, LV pressure/volume analysis provides the ability to instantaneously record changes during manipulations of contractility (e.g., &#946;-adrenergic stimulation) and pathological insults (e.g., ischemia/reperfusion injury). In addition to the maximum (+dP/dt) and minimum (-dP/dt) rate of pressure change in the LV, an accurate assessment of LV function via several load-independent indexes (e.g., end systolic pressure volume relationship and preload recruitable stroke work) can be attained. Heart rate has a significant effect on LV contractility such that an increase in the heart rate is the primary mechanism to increase cardiac output (i.e., Bowditch effect). Thus, when comparing hemodynamics between experimental groups, it is necessary to have similar heart rates. Furthermore, a hallmark of many cardiomyopathy models is a decrease in contractile reserve (i.e., decreased Bowditch effect). Consequently, vital information can be obtained by determining the effects of increasing heart rate on contractility. Our and others data has demonstrated that the neuronal nitric oxide synthase (NOS1) knockout mouse has decreased contractility. Here we describe the procedure of measuring LV pressure/volume with increasing heart rates using the NOS1 knockout mouse model.

This article describes the measurement of murine left ventricular function via pressure/volume analysis at different heart rates.

قسطرة القلب في الفئران لقياس العلاقة حجم الضغط: دراسة تأثير بوديتش

Animal models that mimic human cardiac disorders have been created to test potential therapeutic strategies. A key component to evaluating these ...

Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. Indeed, research focusing on the discovery of new potential therapeutic targets using genetically altered mice requires a reliable, long-term assessment of the systemic arterial pressure variation. Currently, the gold standard for obtaining long-term measurements of blood pressure in ambulatory mice uses implantable radio-transmitters, which require&#160;artery cannulation. This technique eliminates the need for tethering, restraining, or anesthetizing the animals which introduce stress and artifacts during data sampling. However, arterial blood pressure monitoring in mice via catheterization can be rather challenging due to the small size of the arteries. Here we present a step-by-step guide to illustrate the crucial key passages for a successful subcutaneous implantation of radio-transmitters and carotid artery cannulation in mice. We also include examples of long-term blood pressure activity taken from freely moving mice after a period of post-surgery recovery. Following this procedure will allow reliable direct blood pressure recordings from multiple animals simultaneously.

The goal of this protocol is to assess systemic blood pressure in conscious freely moving mice using implantable radio-telemetry devices.

على المدى الطويل قياس ضغط الدم في الانتقال بحرية الفئران عن طريق القياس

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. ...

Depletion of Mouse Cells from Human Tumor Xenografts Significantly Improves Downstream Analysis of Target Cells

The use of in vitro cell line models for cancer research has been a useful tool. However, it has been shown that these models fail to reliably mimic patient tumors in different assays1. Human tumor xenografts represent the gold standard with respect to tumor biology, drug discovery, and metastasis research 2-4. Tumor xenografts can be derived from different types of material like tumor cell lines, tumor tissue from primary patient tumors4 or serially transplanted tumors. When propagated in vivo, xenografted tissue is infiltrated and vascularized by cells of mouse origin. Multiple factors such as the tumor entity, the origin of xenografted material, growth rate and region of transplantation influence the composition and the amount of mouse cells present in tumor xenografts. However, even when these factors are kept constant, the degree of mouse cell contamination is highly variable.
Contaminating mouse cells significantly impair downstream analyses of human tumor xenografts. As mouse fibroblasts show high plating efficacies and proliferation rates, they tend to overgrow cultures of human tumor cells, especially slowly proliferating subpopulations. Mouse cell derived DNA, mRNA, and protein components can bias downstream gene expression analysis, next-generation sequencing, as well as proteome analysis 5. To overcome these limitations, we have developed a fast and easy method to isolate untouched human tumor cells from xenografted tumor tissue. This procedure is based on the comprehensive depletion of cells of mouse origin by combining automated tissue dissociation with the benchtop tissue dissociator and magnetic cell sorting. Here, we demonstrate that human target cells can be can be obtained with purities higher than 96% within less than 20 min independent of the tumor type.

Human tumor xenografts are vascularized and infiltrated by cells of mouse origin during the growth phase in vivo. To circumvent the bias caused by these contaminating cells during downstream analysis, we developed a method allowing for comprehensive depletion of all mouse cells by magnetic cell sorting.

نضوب خلايا الفأر من Xenografts ورم الإنسان يحسن بشكل ملحوظ تحليل المصب من الخلايا المستهدفة

The use of in vitro cell line models for cancer research has been a useful tool. However, it has been shown that these models fail to reliably mimic ...