미국 국립 보건 연구소에서 자금 조달, CIMIT 프로젝트 번호 12-1732 및 감사 인정 어린이를위한 이너스 병원 (R01EB008678, R01DK096075, R01DK084053, R00DK088962과 F32의 DK103500을 부여). 우리는 기꺼이이 작업을 지원하기 위해 뉴 잉글랜드 장기 은행을 감사드립니다.

인체 조직의 사용은 기관 검토위원회 (IRB) 상당 검토해야합니다. 여기에 설명 된 작업은 승인 매사 추세 츠 종합 병원 임상 시험 심사위원회 (제 2011P001496)에 의해 면제 선언했다. 1. 솔루션 준비 <ol><li> 무균 표 1에 설명 된대로 빨간색이없는 윌리엄스 &#39;매체 E를 페놀 보충제를 추가합니다.이 솔루션은 사용하기 전에 신선한 준비를해야합니다. 인슐린은 사용 직전에 추가해야합니다. </li></ol> 간 2. 위로 표 준비 <ol><li> 멸균, 드리 워진 표면에 얼음 가득 기관 그릇을 놓습니다. 차가운 보존 용액의 가방에두고 상자에서 간을 제거합니다. 주로 침수 간을 유지합니다. </li><li> 대동맥 패치 말단 위치 할 간동맥 (HA)를 확인합니다. Metzenbaum 가위를 사용하여 길이를 따라 다양한 컷 가지를 공개 무료 동맥을 해부하다. 조심스럽게 너가 너무CT 동맥의 전체 길이는 간 공급 용기를 절단 방지한다. 잘라내거나 볼 끝이없는 가지를 묶어하지 마십시오. </li><li> 용기의 크기에 따라 크기가 0 내지 4-0 범위 실크 봉합사를 이용하여 간암을 공급하지 동맥 가지 모두 매달아. 7-0 prolene으로의 스티치 동맥에 구멍 묶어 너무 짧거나 닫기 분기합니다. 넥타이는 복강 트렁크에 자신의 기원에 가까운 지라 왼쪽 위 동맥을 잘라. </li><li> 패치 바로 아래 복강 트렁크를 절단하여 대동맥 패치를 제거합니다. 대동맥 캐뉼라를 사용하여 복강 트렁크 Cannulate. </li><li> 포털 정맥 (PV)를 확인하고 퉁명스럽게 자유를 해부하다. 어떤 지점을 묶어 크기 24 튜브의 제조 세그먼트와 PV를 cannulate. </li><li> 정맥 자체를 절단하지 않고, suprahepatic 대정맥에서 다이아 프램의 섹션을 제거합니다. 직접 장기 챔버로 대정맥 배수에서 유출. </li><li> 이 전체 둘레 TI 컷ssue 샘플 담관의 끝에서 (2-3 밀리미터 길이); 스냅 (-80 ° C에서 보관) 액체 질소를 고정하고 각각 조직과 조직 학적 분석을 위해, 10 % 포르말린에 다른 저장합니다. 용기 캐 뉼러 및 막 형산 튜브 이루어지는 배액관 담관을 Cannulate. </li><li> 확인하고 0 실크 넥타이와 담낭 관을 결찰. 담낭 관을 담관 및 담낭 사이에서 발견된다. </li><li> 모든 공기를 제거 락 테이트 링거 (LR) 솔루션 및 주요 튜브의 얼음처럼 차가운 가방, 설정 플러시 튜브를 연결합니다. </li><li> 느린 물방울에 플러시 튜브의 유량 조절기를 설정합니다. 간문맥 캐 뉼러에 플러시 연결 튜브에 앞서, 폐문에 손가락 문맥을 막고 간문맥으로부터 공기를 제거 플러시 및 정맥 캐뉼라를 채운다. 에 과도한 압력을 방지하기 위해 차가운​​ 세척하는 동안 가방에게 간의 높이를 더 이상 20cm 상승하지 마십시오정맥. </li><li> 플러시 잠시 동안 최저점 PV를 흡장. 누출 PV를 검사합니다. 상술 한 바와 같이 선박 분기 폐쇄 할 수 있습니다. 얼음처럼 차가운 LR의 2 L의 총 태양 광 발전을 통해 간을 플래시합니다. </li><li> 반복 LR의 1 L에 HA를 위해 2.10, 2.11 단계를 반복합니다. </li></ol> 3. 초벌 SNMP 시스템 <ol><li> 프라임 기관 그릇에 관류 (21 ° C)의 2 L을 추가하고 주요 튜브에 장치를 시작하여 관류 장치. 21 ° C로 온도를 설정, 관류을 준비하기 위해 장치의 지시를 따르십시오. 3 mmHg로 각각 PV와 HA, 30 mmHg로의 압력으로 시작합니다. 가스 탱크를 열고 3 L / min의 유량으로 설정. </li><li> 샘플 포트에서 0.3 ml의 샘플을 드로잉하고 제조자의 지시에 따라 혈액 가스 분석 시스템에서 실행하여 HA 및 PV 모두로부터 유입 가스 혈액 샘플을 채취. 충분한 산소를 확인 (PO 2&gt; 700 mmHg로)과 산도 (7.35-7.45). </li><li> 접속된다 간은 -80 ° C에서 에펜 도르프 튜브 및 저장소의 측정 = 0에서의 관류 액으로 1.0 ml의 샘플을 채취하기 전에. 단일 예리 스틸 칼날을 사용하여 간에서 두 ± 250 mg의 쐐기 생검을 잘라; 스냅 (-80 ° C에서 보관) 액체 질소를 고정하고 10 % 포르말린에 다른 저장합니다. 관류 전에 간 무게. </li></ol> 4. 인간의 간 관류 <ol><li> 디바이스 간 전송. 단계 2.10에서와 같이 PV에서 공기를 제거한 후, PV 정맥에 태양 광 유입을 연결합니다. 비슷한 방식으로 HA를 연결합니다. 설정 PV 3 30 mmHg로에 HA 압력. 간은 거의 관류에 의해 침수되어야한다. 탈수를 방지하기 위해 젖은 멸균 거즈로, 유입 혈관을 포함한 모든 건조한 표면을 커버 </li><li> 수집 용기에 담즙 관 배수를 보자. 오 담즙의 실행을 허용 할 수 담즙 유출의 개방 간 수준에 있는지 또는 낮은 확인자유롭게 유타. </li><li> 간은 21 ° C로 가열되면 대상 유량은 각각 275-325 ㎖ / min.kg 및 PV에 대한 50 ~ 100 ㎖ / min.kg 및 HA 있습니다. 모든 간 관류 다르게 반응하기 때문에, 제 분 동안 흐름을 면밀히 모니터. 증가 또는 목표 유량에 도달하지 않으면 용기 중 하나에 압력을 감소시킨다. HA 50 mmHg로와 PV에 5 mmHg로를 초과하지 마십시오. </li><li> 샘플은 연구자 환경에서 간 조직, 관류 및 담즙에서 취할 수 있습니다. 우리는 관류하는 동안 최소한 다음 샘플 수집 요법을 권장합니다. <ol><li> 조직 생검, N = 2 × 250 ㎎, 매 시간마다. 저장 : -80 ° C 장기에서 액체 질소 저장 한 동결 스냅. 또한, 이전과 관류 후 다른 생검을 10 % 포르말린에 고정 (N = 1) </li><li> 관류 샘플, N = 2 × 1 ㎖, 첫번째 시간 동안 매 15 분 후, 30 분마다. 태양 광 발전 INF에서 샘플을 그립니다낮은 샘플 포트. 저장 : -80 ° C 장기. </li><li> PV 및 HA 유입 및 대정맥 유출의 혈액 가스 분석. N = 3 × 0.3 ml를, 매 30 분. PV 및 HA 샘플 포트 모두에서 샘플을 그립니다. 정맥에 주사기를 삽입하여 대정맥에서 0.3 ml의 샘플을 그리고 혈액 가스 분석기에서 실행 직접. 적절한 산소와 산도를 보장하기 위해 출력을 사용합니다. </li><li> 담즙 생산, N = 1 × 1 ml의 모든 시간. 시각적으로 담즙 생산마다 시간을 정량화하고, 수집 용기에서 샘플을 채취. 샘플링 후의 용기 갱신. 저장 : 드라이 아이스와 -80 ° C 장기. </li></ol></li><li> 3 시간 동안 재관류를 계속합니다. 압력, pH와 산소를 모니터링 및 전반에 걸쳐 샘플을 채취. 관류 액에 탄산 수​​소 나트륨을 첨가하여 그 산도를 조정한다. </li><li> 간이 관류되는 동안 관류 최종 샘플을 채취. 간을 분리하고 담관 정맥을 제거합니다. 2 사후 관류 조직 샘플을 채취C ° 10 % 포르말린에 -80 저장을 위해 전술 한 바와 같이 담관. </li><li> 적절한 생물 학적 처리 지침에 따라 인간의 간을 폐기하십시오. </li></ol>

<ol>
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박사. Uygun, K Uygun 및 Yarmush이 연구 (WO / 2011 / 002926), 및 박사 관련된 특허 출원의 발명자들은이되는지를 확인해야합니다. Uygun, K Uygun 및 Yarmush이 연구 (WO 2011 / / 35223)에 관련 특허 출원의 발명자들은이되는지를 확인해야합니다. 박사. K Uygun 및 Bruinsma이 일에 관련된 임시 특허 응용 프로그램이 있습니다. 닥터 K Uygun 할 Uygun이 장기 솔루션에 재무 적 관심을 가지고, 회사는 장기 보존 기술 개발에 초점을 맞추었다. 닥터 K Uygun과는 Uygun의 관심은 금리 정책의 자신의 충돌에 따라 MGH와 파트너 헬스 케어에 의해 관리 될 수있다.

간 허혈 손상을 복구하기위한 시도에서, 우리는 냉장 기간 후에 사용될 수있다 SNMP 시스템을 개발 하였다. Subnormothermic 기계 관류은 기존의 저온 저장뿐만 아니라 저체온과 정상 체온 기계 관류 양식에 대한 실행 가능한 대안을 제공합니다. 여러 다양한 시스템이 존재; 모두가 서로 다른 장점과 단점의 3,9,20을 제공합니다. SNMP 21에서 산소 대사 요구로서, 산소 담체없이 관류를 허용 ° C는 관류의 활성 산소에 의해 충족된다. subnormothermic 조건에서 감소하지만, 대사가 충실하고 영양이 풍부한 관류 솔루션의 지원이 필요합니다. 이러한 Belzer 기계 관류 솔루션으로 기존의 관류 솔루션은 구성에 일반적으로 최소화 차가운 관류을 위해 설계되었습니다. 윌리엄스 E 중간 수년 동안 간세포 배양 배지로 사용하고, C가 포함되어있다따뜻한 생체 조건에서 특히, 세포 기능을 지원하는 보편적 omponents. 기계 관류 동안 이루어진 측정은 기관의 기능을 반영. 그러한 담즙산 생산 및 산소 섭취량 직접적 관찰 파라미터 간 이식을 미리 평가할 수있다 실시간으로 측정된다. 마찬가지로, 세포 손상 및 허혈 (K +, 젖산 자료)의 마커는 관류 용액에 직접 측정 할 수 있고, 장기의 기능 (20)를 표시 할 수있다. 기계 관류 기술이 더욱 발전하고 더 널리 임상 응용을 달성 같이, 생체 기능 및 임상 결과 사이의 정확한 상관 관계가 만들어 질 수 있고, 관류 매개 이식 또는 한계 품질 간을 거부하는 ​​결정을 돕는데 유용 할 것이다. 또한, 관리 분석 도구를 사전 시점으로,보다 정교한 분석은 직접 perfu 기계 동안 사용할 수있게됩니다시온 (21). 이 작품에서 우리는 간 조직학 및 ALT의 방출에 의해 반사, 간 최소한의 부상으로 SNMP 시스템에서 지원 될 수 있음을 보여준다. 간 기능 회복이 가장 간 생존 상관 관계를 보여 및 동물 모델에 이식 성공 강하게 암시 된 ATP에 의해 반영된다 (22). 예 생체 간 이식의 이식 전 복구는 기증자의 중요한 확장을 허용하는 간 풀, 공급 및 이식의 기증자 간 수요 사이의 불균형을 보정.

간 이식 수만 말기 간 질환으로 고통 수천명의 환자에 대한 치료 만 경화제이다. 성공적인 이식, 그것이이 그래프트의 급속한 저하를 방지 할 필요가 수신자에 주입 될 때까지 상기 도너로부터 획득되는 시간으로부터 간 최적의 보존을 용이하게하기 위해. 간 보존을위한 현재 표준은 &#39;정적 냉장&#39;라한다 : 간시켜 간 대사를 감소시키고 허혈 악영향을 늦추고, 빙냉 보존 용액에 냉각된다. 이 냉장 기술이 성공적으로 이식 허용하고 있지만, 이러한 따뜻한 허혈 또는 ​​지방간 쇼 불량 환자에 의해 손상 DCD 기관 등의 한계 품질의 장기는 1 성과. 증거의 급속하게 확장 몸 대안 보존 양상으로 간 이식의 생체 기계 관류는 할 수 잠재적으로 메신저가이러한 한계 장기 2,3에 대한 결과를 증명한다. 간 이식은 자신의 성공의 피해자가되었다. 훨씬 더 많은 환자를 사용할 간이보다 이식라고, 그리고 수천 매년 미국에서 대기자 명단에 죽는다. 기증자 간 부족의 현실과 가난한받는 사람에 대한 최적 품질의 간 이식의 증가 활용 감안할 때, 그것은 널리 주입하기 전에 간 이식의 생체 기계 관류 간 이식의 패러다임의 변화의 약속을 보유하고 있음을 개최한다. 최근 몇 년 동안 4-8에서이 항목의 연구 관심에 띄게 증가 하였다. 다양한 유럽과 북미 센터에서 저체온 기계 관류는 생리적 온도에서 임상 소개 (8)과 정상 체온 기계 관류 최근 폐기 인간의 간 적용되었습니다 및 임상뿐만 아니라 9로 번역되는했다.지속적인 최적화가 최적 관류 10-12 파라미터 식별하면서 광범위한 개발은 다양한 프로토콜의 개발을 유도 하였다. 한계 품질 이식편의 사용은보다 지난 십 (13)를 통해 10 배 증가했다. 간 보존을위한 현재 표준 (정적 냉장)와 비교했을 때, 생체 기계 관류는 기관 풀을 많이 필요로 확장 될 및 잠재적으로 이식 후 합병증의 발생 빈도 감소 모두 다수의 잠재적 인 이점을 제공합니다. 특히, 현재 이식 후 최적 품질의 간 이식을 괴롭히는 담도 합병증은 상당한 문제 14-18 남아있다. subnormothermic 조건에서 기계 관류는 시간 창이 이식 (19)에 대한 적합성 여부를 객관적으로 이식 기능을 평가하기 위해 제공합니다. 간은, 생체 회로에서 관류되는 동안 모두 관류의ND 재관류 동안 생성 담즙 장기의 기능의 마커의 측정에 샘플링 될 수있다. 이러한 방법으로 현재의 기준에 따라 이식 폐기 간 객관적으로 이식 적합성에 대해 평가 될 수있다 &#39;심각한 손상&#39;. 이들의 대부분이 장기 이식을 위해 이용 될 수 있도록 생존력 평가는 잠재적으로 허용한다. 기계 관류 동일하게 강력한 장점은 수리와 따뜻한 / 차가운 허혈에 의해 손상된 간의 개선이다. ATP는 따뜻한 이후 차가운 허혈 동안 매우 빠르게 고갈 전에 간 (20)의 주입에 기계 관류의 기간 동안 repleted 할 수 있습니다. 간은, 에너지 저장 및 대사 상태 보충으로 미리 조정하고,받는 사람에 주입 후 재관류 손상의 해로운 효과를 더 잘 준비. 이 작품은 인간의 간 그라프의 생체 기계 관류하는 방법을 설명합니다기술과 생체 기계 관류의 유익한 효과를 모두 공부하고자하는 연구자 도움이 될 것 실험실에서 TS. 우리는 이식 거부 된 후 연구 목적으로 할당 된 인간 공여자 간 사용한다. 표준 간 조달 기법은 뇌사 기증자 (DBD) 또는 다른 20보다 상세하게 설명 순환 죽음 기증자 (DCD)에서 순환 정지 후 대동맥 클램핑 다음 간 현장 동맥 플러시에 포함됩니다. 또한, 간, 얼음 도너의 복강을 작​​성하여 조달 동안 냉각된다. 세척 용액 기본 설정은 위스콘신 또는 히스티딘 트립토판 - 케 토글 루타 레이트 (HTK) 솔루션의 대학을 사용하여 조달의 대부분으로, 지역에 따라서 다릅니다. 포털 정맥의 또 다시 테이블 플러시 잔여 혈액의 유실을 향상시킨다. 간은 종종 대동맥 세그먼트 쉬르를 떠나 조달복강 트렁크를 반올림. 담낭은 담즙 흡인, 절개 및 담관 플러시된다. 간 빙냉 보존 용액을 함유 멸균 봉지에 포장 상자 나 지정된 냉각기에 수송된다. 대표적인 결과를 따뜻하고 차가운 허혈 시간은 각각 60 분 및 12 시간으로 제한해야합니다. 인간의 장기를 나눠 경우 전염성 병원균에 대한 일상적인 혈청 학적 검사에도 불구하고, 표준 예방 조치, 인간의 기관에서 얻은 샘플 및 폐기물을주의해야합니다. 프로토콜은 여기에 시판 간 관류 장치를 이용하여 기계 subnormothermic 관류를 설명한다. 이러한 장치의 사용은 임상 및 연구 그룹과 이식 센터의 사이에 서로 다른 프로토콜과 장치 설정의 교차 유효성 검사에보다 신속하게 번역 할 수 있습니다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Liver Assist perfusion device</td>
			<td>Organ Assist B.V.</td>
			<td>Liver Assist</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liver Assist disposable set</td>
			<td>Organ Assist B.V.</td>
			<td>Liver Assist disposable</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Williams&#8217; Medium E</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>W1878&#8211;6x500ml</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin</td>
			<td>Eli Lilly &#38; Co</td>
			<td>Humulin R U-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin/Streptomycin 5,000 U/ml</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>15070-063</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamine</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>25030-156</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrocortisone</td>
			<td>MGH pharmacy</td>
			<td>7750500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carbogen gas tank 95% O2/5% CO2</td>
			<td>Airgas</td>
			<td>ZO2OX9522000043</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Specialty gas regulator</td>
			<td>Airgas</td>
			<td>Y11244D580</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lactated Ringer&#8217;s solution</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>2B2324X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% neutral buffered formalin</td>
			<td>Fischer Scientific</td>
			<td>316-155</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Toothed Adson forceps</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-5234</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Debakey tissue forceps, 7.75&#8221;, 2.25 mm</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-7562</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Metzenbaum Scissors 7&#34; Curved SureCut Tungsten</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-6965SC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Castroviejo Needle holder 5.5&#8211;7&#8221;</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>12565-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0 blackbraided silk sutures</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>SA66G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-0 nylon suture, Nurolon RB1</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>C554D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blood gas analysis machine</td>
			<td>Siemens</td>
			<td>RapidPoint 500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Balance scale</td>
			<td>Cole Parmer</td>
			<td>EW-10000-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pressure display box</td>
			<td>Medtronic</td>
			<td>66000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable pressure display sets</td>
			<td>Medtronic</td>
			<td>61000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Handheld thermocouple thermometer and probe</td>
			<td>Cole Parmer</td>
			<td colspan="2">EW-91500-04 and EW-08516-55</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acorn-tipped vessel cannula, 4 mm</td>
			<td>Medtronic</td>
			<td>30005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Irrigation set flush tubing</td>
			<td>Hospira</td>
			<td>06543-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mixing bowl, 4L</td>
			<td>Cole Parmer</td>
			<td>EW-07300-40</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

functional human liver preservation and recovery by means of subnormothermic machine perfusion

There is currently a severe shortage of liver grafts available for transplantation. Novel organ preservation techniques are needed to expand the pool of donor livers. Machine perfusion of donor liver grafts is an alternative to traditional cold storage of livers and holds much promise as a modality to expand the donor organ pool. We have recently described the potential benefit of subnormothermic machine perfusion of human livers. Machine perfused livers showed improving function and restoration of tissue ATP levels. Additionally, machine perfusion of liver grafts at subnormothermic temperatures allows for objective assessment of the functionality and suitability of a liver for transplantation. In these ways a great many livers that were previously discarded due to their suboptimal quality can be rescued via the restorative effects of machine perfusion and utilized for transplantation. Here we describe this technique of subnormothermic machine perfusion in detail. Human liver grafts allocated for research are perfused via the hepatic artery and portal vein with an acellular oxygenated perfusate at 21 &#176;C.

관찰 및 분석의 수는 이러한 유량 담즙 생산 직접적인 실시간 관측 포함한 관류 동안 간에서 수행 될 수있다; 이러한 관류의 가스 분석, 생화학 관류의 분석 및 조직과 조직 학적 분석을 포함한 시료 채취 후 만들어진 사후 측정을 실시간으로 측정. 여기에 언급 된 결과는 22 관류 인간의 간에서 있습니다. 간 기증자의 연령, 과도한 따뜻한 허혈성 시간, 조직 검사 결과 (지방증, 염증, 섬유증) 및 물류 이유를 포함하여 다양한 이유로 이식 거부했다. 18 간은 뇌사 다음 심장 죽음을 다음과 조달, 4되었다. 두 경우 모두, 도너 헤파린 30,000 유닛으로 전처리하고, 반응계에서 UW 용액과 함께 다시 테이블에 플러시. 냉 허혈 시간이 평균이었다 531 ± 237 (SD) 분, 평균 따뜻한 허혈성 시간이었다 27 ± 10 (SD) 분, 삶의 철수에서 측정차가운 플러시에 지원. 실시간 관측 및 측정은 사후 측정은 재관류 후에 계시하면서, 재관류 동안 간을 평가하는데 사용될 수있다. 실시간 관측 플로 쓰루 간 감기 간에서 높은 저항의 결과로서, 목표 유량보다 낮은 시작한다. 타겟 흐름은 일반적으로 간 후에 달성 될 수 HA에 PV 3 mmHg로 30 mmHg로의 압력을 이용하여 21 개까지 따뜻하게 &#160; 관류 (그림 1A)의 60 분 후에 C를 °. 담즙의 흐름은 일반적으로 관류 10 분 이내에 관찰 될 수 있고, 관류 (도 1b) 동안 지속적으로 생성된다. 담즙의 양이 간의 품질에 따라 18 ml / 분 / kg 0.3 ㎖ / 시간 / kg 간 범위. 심지어 더 안정 또는 짧은 따뜻한 허혈성 시간의 결과를 증가시키는 동시에 더 이상 따뜻한 허혈성 시간 간에서 담즙의 흐름은 점점 줄 경향이담즙 생산. 실시간 측정 두 실험을 위해 필수적인 혈액 가스 분석에 의한 관류 직접 자주 측정뿐만 아니라 유지 적절한 관류 조건, 중요한 것은 산소와 pH를. 용존 산소 분압은 PV 및 HA 모두의 유입에보다 큰 700 mmHg로해야한다. 대정맥에서 측정 유출 산소 압력은 일반적으로 증가하는 산소 섭취량을 반영 관류 이상 감소한다. t = 3 시간 (도 1C)에서 2.4-9.7 ㎖의 O 2 / 분 / kg으로 관류의 시작 이전에 (13)를 설명하고 0.5-2.2 ㎖의 O 2 / 분 / kg에서 ranged로서 산소 흡수 속도가 계산 될 수있다. pH의 감소는 주로 관류 젖산 방출의 결과로서, 제 30 분간 (도 1D)에서 관찰된다. 이는 8.4 % 나트륨 bicarbo으로 보충에 의해지지 될 수있다네이트는 약 90 분 후에 pH는 정상 범위에 빠진다. 일반적으로, 8.4 %의 중탄산 나트륨의 30 ~ 50 ml를가 요구된다. 젖산 농도 빠르게 처음 15 ~ 30 분에 증가하지만 첫 번째 시간 (그림 1E) 후 사망하기 시작합니다. 사후 측정 이러한 ALT 등 간 트랜스 아미나 제는 관류 측정 할 수있다. 처음 30 분에서 ALT의 큰 증가는 일반적으로 국소 빈혈 (그림 1 층) 동안 출시 된 ALT의 유실을 반영하는 관찰된다. ALT는 따뜻한 허혈성 시간 13 상관 관계가 나타났다. 기계 관류는 복구 에너지 상태 (그림 1G)를 반영, ATP 함량이 2.8 배 증가. H &amp; E 조직 학적 분석은 기계 관류 (그림 1H, I) 동안 지속 추가 부상을 알 수 없습니다. 이것은이 프로토콜에서 제안 생검 요법은 입술위한 것임을 주목해야한다earch 목적과 임상 목적으로 적용 할 수없는 경우가 있습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/52777/52777fig1.jpg" /> 도 1 :. 기계 관류 동안 인간 간 평가 관류 (B), 산소 uprate 레이트 (OUR) 유입의 차이로부터 계산 (PV 시간당 정량 PV 및 HA SNMP (A) 중, 담즙 생산 흐르지 + HA) 및 유출 (대정맥)는 선이 관류 (F), ATP에 관류 동안 관류 (C), pH와 젖산 동안 IN- 및 유출에 부분 산소 압력 (D, E), ALT의 방출을 보여 중단 (H)과 후 (I) 관류 전에 간 (54년 된 DCD, 19 분 따뜻한 허혈, 559 분 냉 허혈)의 시간당 생검 (G) 및 H &amp; E 얼룩 조직에서 측정 내용. 결과는 SEM ± 평균으로 표시하고 있습니다. <a= &quot;https://www.jove.com/files/ftp_upload/52777/52777fig1large.jpg&quot;대상 = &quot;_ 빈&quot;HREF&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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Functional Human Liver Preservation and Recovery by Means of Subnormothermic Machine Perfusion

우리는 subnormothermic 온도 (21 ° C에서)에서 인간의 간 이식의 생체 기계 관류하는 방법을 설명합니다.

Subnormothermic 기계 관류의 수단으로 기능 인간의 간 보존 및 복구

There is currently a severe shortage of liver grafts available for transplantation.  Novel organ preservation techniques are needed to expand the pool of ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

16.6K 조회수.  Massachusetts General Hospital, Harvard Medical School.  우리는 subnormothermic 온도 (21 ° C에서)에서 인간의 간 이식의 생체 기계 관류하는 방법을 설명합니다. 

비디오: Functional Human Liver Preservation and Recovery by Means of Subnormothermic Machine Perfusion

Technique of Subnormothermic Ex Vivo Liver Perfusion for the Storage, Assessment, and Repair of Marginal Liver Grafts

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. In most transplant regions 20-30% of patients on the waiting list for liver transplantation die without receiving an organ transplant or are delisted for disease progression. One strategy to increase the donor pool is the utilization of marginal grafts, such as fatty livers, grafts from older donors, or donation after cardiac death (DCD). The current preservation technique of cold static storage is only poorly tolerated by marginal livers resulting in significant organ damage. In addition, cold static organ storage does not allow graft assessment or repair prior to transplantation.
These shortcomings of cold static preservation have triggered an interest in warm perfused organ preservation to reduce cold ischemic injury, assess liver grafts during preservation, and explore the opportunity to repair marginal livers prior to transplantation. The optimal pressure and flow conditions, perfusion temperature, composition of the perfusion solution and the need for an oxygen carrier has been controversial in the past.
In spite of promising results in several animal studies, the complexity and the costs have prevented a broader clinical application so far. Recently, with enhanced technology and a better understanding of liver physiology during ex vivo perfusion the outcome of warm liver perfusion has improved and consistently good results can be achieved.
This paper will provide information about liver retrieval, storage techniques, and isolated liver perfusion in pigs. We will illustrate a) the requirements to ensure sufficient oxygen supply to the organ, b) technical considerations about the perfusion machine and the perfusion solution, and c) biochemical aspects of isolated organs.

Technique of Subnormothermic Ex Vivo Liver Perfusion for the Storage, Assessment, and Repair of Marginal Liver Grafts

Marginal grafts, such as fatty livers, grafts from older donors, or livers retrieved after cardiac death (DCD) tolerate conventional, cold static storage only poorly. We developed a novel model of subnormothermic ex vivo liver perfusion for preservation, assessment, and repair of marginal liver grafts prior to transplantation.

Subnormothermic의 기술<em&gt; 전의 VIVO</em&gt; 간 스토리지, 평가를위한 관류 및 한계 간 이식의 수리

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. In most transplant regions 20-30% of patients on the waiting list for ...

연구

의학

Ex Situ Normothermic Machine Perfusion of Donor Livers

In contrast to conventional static cold preservation (0-4 &#176;C), ex situ machine perfusion may provide better preservation of donor livers. Continuous perfusion of organs provides the opportunity to improve organ quality and allows ex situ viability assessment of donor livers prior to transplantation. This video article provides a step by step protocol for ex situ normothermic machine perfusion (37 &#176;C) of human donor livers using a device that provides a pressure and temperature controlled pulsatile perfusion of the hepatic artery and continuous perfusion of the portal vein. The perfusion fluid is oxygenated by two hollow fiber membrane oxygenators and the temperature can be regulated between 10 &#176;C and 37 &#176;C. During perfusion, the metabolic activity of the liver as well as the degree of injury can be assessed by biochemical analysis of samples taken from the perfusion fluid. Machine perfusion is a very promising tool to increase the number of livers that are suitable for transplantation.

Ex Situ Normothermic Machine Perfusion of Donor Livers

Here we present a protocol describing oxygenated ex situ machine perfusion of donor liver grafts. This article contains a step by step protocol to procure and prepare the liver graft for machine perfusion, prepare the perfusion fluid, prime the perfusion machine and perform oxygenated normothermic machine perfusion of the liver graft.

기증자의 간을의 현지 외 정상 체온 기계 관류

In contrast to conventional static cold preservation (0-4 &#176;C), ex situ machine perfusion may provide better preservation of donor livers. Continuous ...

Normothermic Ex Vivo Kidney Perfusion for the Preservation of Kidney Grafts prior to Transplantation

Kidney transplantation has become a well-established treatment option for patients with end-stage renal failure. The persisting organ shortage remains a serious problem. Therefore, the acceptance criteria for organ donors have been extended leading to the usage of marginal kidney grafts. These marginal organs tolerate cold storage poorly resulting in increased preservation injury and higher rates of delayed graft function. To overcome the limitations of cold storage, extensive research is focused on alternative normothermic preservation methods.
Ex vivo normothermic organ perfusion is an innovative preservation technique. The first experimental and clinical trials for ex vivo lung, liver, and kidney perfusions demonstrated favorable outcomes.
In addition to the reduction of cold ischemic injury, the method of normothermic kidney storage offers the opportunity for organ assessment and repair. This manuscript provides information about kidney retrieval, organ preservation techniques, and isolated ex vivo normothermic kidney perfusion (NEVKP) in a porcine model. Surgical techniques, set up for the perfusion solution and the circuit, potential assessment options, and representative results are demonstrated.

Normothermic Ex Vivo Kidney Perfusion for the Preservation of Kidney Grafts prior to Transplantation

The severe organ shortage has resulted in increased use of marginal kidney grafts for transplantation. This has triggered interest in alternative storage methods, since marginal grafts especially tolerate cold storage poorly. The technique of normothermic ex vivo kidney perfusion (NEVKP) represents a novel preservation method for kidney grafts prior to &#160;transplantation.

정상 체온<em&gt; 전의 VIVO</em&gt; 신장의 보존을위한 신장 관류는 이식 전에 이식

Kidney transplantation has become a well-established treatment option for patients with end-stage renal failure. The persisting organ shortage remains a ...

Method of Direct Segmental Intra-hepatic Delivery Using a Rat Liver Hilar Clamp Model

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ischemia/reperfusion (I/R) injury with myriad negative consequences. Potential I/R injury in marginal organs destined for liver transplantation contributes to the current donor shortage secondary to a decreased organ utilization rate. A significant need exists to explore hepatic I/R injury in order to mediate its impact on graft function in transplantation. Rat liver hilar clamp models are used to investigate the impact of different molecules on hepatic I/R injury. Depending on the model, these molecules have been delivered using inhalation, epidural infusion, intraperitoneal injection, intravenous administration or injection into the peripheral superior mesenteric vein. A rat liver hilar clamp model has been developed for use in studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating I/R injury. The described model for rat liver hilar clamp includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic hepatic segment via a side branch of the portal vein, allowing for direct segmental hepatic delivery. Our approach is to induce ischemia in the left lateral and median lobes for 60 min, during which time the substance under study is infused. In this case, pegylated-superoxide dismutase (PEG-SOD), a free radical scavenger, is infused directly into the ischemic segment. This series of experiments demonstrates that infusion of PEG-SOD is protective against hepatic I/R injury. Advantages of this approach include direct injection of the molecule into the ischemic segment with consequent decrease in volume of distribution and reduction in systemic side effects.

A unique rat liver hilar clamp model was developed for studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating ischemia-reperfusion injury. This model includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic liver segment via a branch of the portal vein, allowing for direct hepatic delivery.

쥐 간 문부 클램프 모델을 사용하여 직접 분절 인트라 간 납품 방법

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ...

A Small Animal Model of Ex Vivo Normothermic Liver Perfusion

There is a significant shortage of liver allografts available for transplantation, and in response the donor criteria have been expanded. As a result, normothermic ex vivo liver perfusion (NEVLP) has been introduced as a method to evaluate and modify organ function. NEVLP has many advantages in comparison to hypothermic and subnormothermic perfusion including reduced preservation injury, restoration of normal organ function under physiologic conditions, assessment of organ performance, and as a platform for organ repair, remodeling, and modification. Both murine and porcine NEVLP models have been described. We demonstrate a rat model of NEVLP and use this model to show one of its important applications &#8212; the use of a therapeutic molecule added to liver perfusate. Catalase is an endogenous reactive oxygen species (ROS) scavenger and has been demonstrated to decrease ischemia-reperfusion in the eye, brain, and lung. Pegylation has been shown to target catalase to the endothelium. Here, we added pegylated-catalase (PEG-CAT) to the base perfusate and demonstrated its ability to mitigate liver preservation injury. An advantage of our rodent NEVLP model is that it is inexpensive in comparison to larger animal models. A limitation of this study is that it does not currently include post-perfusion liver transplantation. Therefore, prediction of the function of the organ post-transplantation cannot be made with certainty. However, the rat liver transplant model is well established and certainly could be used in conjunction with this model. In conclusion, we have demonstrated an inexpensive, simple, easily replicable NEVLP model using rats. Applications of this model can include testing novel perfusates and perfusate additives, testing software designed for organ evaluation, and experiments designed to repair organs.

A Small Animal Model of Ex Vivo Normothermic Liver Perfusion

There is a significant liver donor shortage, and criteria for liver donors have been expanded. Normothermic ex vivo liver perfusion (NEVLP) has been developed to evaluate and modify organ function. This study demonstrates a rat model of NEVLP and tests the ability of pegylated-catalase, to mitigate liver preservation injury.

Ex Vivo Normothermic 간 관류의 작은 동물 모델

There is a significant shortage of liver allografts available for transplantation, and in response the donor criteria have been expanded. As a result, ...

Dynamic Navigation in Endodontics: Guided Access Cavity Preparation by Means of a Miniaturized Navigation System

In the case of teeth with pulp canal calcification (PCC) and apical pathology or pulpitis, root canal treatment can be very challenging. PCC are common sequelae of dental trauma but can also occur with stimuli such as caries, bruxism, or after placing a restoration. In order to access the root canal as minimally invasive as possible in case of a necessary root canal treatment, dynamic navigation has recently been introduced in endodontics in addition to static navigation. The use of a dynamic navigation system (DNS) requires pre-operative cone-beam computed tomography (CBCT) imaging and a digital surface scan. If necessary, reference markers must be placed on the teeth before the CBCT scan; with some systems, these can also be planned and created digitally afterward. By means of a stereo camera connected to the planning software, the drill can now be coordinated with the help of reference markers and virtual planning. As a result, the position of the drill can be displayed on the monitor in real-time during preparation in different planes. In addition, the spatial displacement, the angular deviation, and the depth position are also displayed separately. The few commercially available DNS mostly consist of relatively large camera-marker-systems. Here, the DNS contains miniaturized components: a low-weight camera (97 g) mounted on the micromotor of the electric handpiece utilizing a manufacturer-specific connecting mechanism and a small marker (10 mm x 15 mm), which can be easily attached to an individually manufactured intraoral tray. For research purposes, a post-operative CBCT scan can be matched with the pre-operative one, and the volume of tooth structure removed can be calculated by the software. This work aims to present the technique of guided access cavity preparation by means of a miniaturized navigation system from imaging to clinical implementation.

Dynamic navigation systems (DNS) provide real-time visualization and guidance to the operator during endodontic access cavities preparation. The planning of the procedure requires three-dimensional imaging utilizing cone beam computed tomography and surface scans. After the export of the planning data to the DNS, access cavities can be prepared with minimal invasion.

근관 치료의 동적 내비게이션: 소형화된 내비게이션 시스템을 통한 접근 캐비티 준비 안내

In the case of teeth with pulp canal calcification (PCC) and apical pathology or pulpitis, root canal treatment can be very challenging. PCC are common ...

Normothermic Ex Vivo Pancreas Perfusion for the Preservation of Pancreas Allografts before Transplantation

Pancreas transplantation (PTx) is a curative treatment for people who live with the burden of a diagnosis of diabetes mellitus (DM). However, due to organ shortages and increasing numbers of patients being listed for PTx, new strategies are needed to increase the number of available grafts for transplantation. 
Static cold storage (SCS) is considered the gold standard for standard criteria organs. However, standard criteria donors (SCD) are becoming scarce and new strategies that can increase the rate of organ acceptance from extended criteria donors (ECD) are urgently needed. 
Normothermic ex vivo perfusion (NEVP) is one of the strategies that has become increasingly popular over the past couple of decades. This preservation method has already been used successfully in other organs (liver, kidneys, and lungs) but has been minimally explored in pancreas transplantation. The few papers that describe the method for pancreas show little success, edema being one of the major issues. The following manuscript describes the successful NEVP method and setup developed by our group to perfuse swine pancreas.

Normothermic Ex Vivo Pancreas Perfusion for the Preservation of Pancreas Allografts before Transplantation

Normothermic ex vivo machine perfusion (NEVP) has scarcely been explored for the preservation of pancreas allografts. We present an innovative preservation technique for pancreas allografts before transplantation.

이식 전 췌장 동종이식의 보존을 위한 Normothermic Ex Vivo 췌장 관류

Pancreas transplantation (PTx) is a curative treatment for people who live with the burden of a diagnosis of diabetes mellitus (DM). However, due to organ ...

Lung Rapid Recovery Procurement Combined with Abdominal Normothermic Regional Perfusion in Controlled Donation after Circulatory Death

Controlled donation after circulatory death (cDCD) has contributed to increasing donor numbers all over the world. Experiences published in the last years confirm that the outcomes after lung transplantation from cDCD are similar to those from brain death donors; however, the utilization of lungs from asystole donors remains low. Several reasons may be involved: different legal frameworks among countries and centers with different premortem interventions, inadequate lung donor care before procurement, or even poor experience with cDCD procedures and protocols.
Initially, the rapid recovery technique was commonly employed for the procurement of thoracic and abdominal organs in cDCD, but, in the last decade, abdominal normothermic regional perfusion (ANRP) with extracorporeal membrane oxygenation devices has become a useful method to restore blood flow to abdominal organs, allowing their quality improvement and their functional assessment prior to transplantation. This makes the donation procedure more complex and generates doubts about injury to the grafts due to dual temperature.
The aim of this article is to describe a protocol based on a single center experience with Maastricht III donors combining lung cooling rapid recovery in the thorax and abdominal normothermic regional perfusion. Tips and tricks focused on premortem interventions and lung procurement procedure techniques are explained. This may help to minimize the reluctance among professionals to use this combined technique and encourage other donor centers to use it, despite the increased complexity of the procedure.

The protocol combines a lung cooling rapid recovery technique with abdominal normothermic regional perfusion for abdominal graft procurement in controlled asystole donors, which is a safe and useful method to expand the donor pool.

순환기 사망 후 통제된 기증에서 복부 정상 국소 관류와 결합된 폐 빠른 회복 조달

Controlled donation after circulatory death (cDCD) has contributed to increasing donor numbers all over the world. Experiences published in the last years ...

In Situ Mouse Liver Perfusion Model to Study Metabolic Responses to Substrates

Hepatic Glucose Production, Ureagenesis, and Lipolysis Quantified using the Perfused Mouse Liver Model

The liver has numerous functions, including nutrient metabolism. In contrast to other in vitro and in vivo models of liver research, the isolated perfused liver allows the study of liver biology and metabolism in the whole liver with an intact hepatic architecture, separated from the influence of extra-hepatic factors. Liver perfusions were originally developed for rats, but the method has been adapted to mice as well. Here we describe a protocol for in situ perfusion of the mouse liver. The liver is perfused antegradely through the portal vein with oxygenated Krebs-Henseleit bicarbonate buffer, and the output is collected from the suprahepatic inferior vena cava with clamping of the infrahepatic inferior vena cava to close the circuit. Using this method, the direct hepatic effects of a test compound can be evaluated with a detailed time resolution. Liver function and viability are stable for at least 3 h, allowing the inclusion of internal controls in the same experiment. The experimental possibilities using this model are numerous and may infer insight into liver physiology and liver diseases.

Author Spotlight: Investigating Hepatic Adaptations and Prediabetic Progression in Liver Diseases 

Here, we present a robust method for in situ perfusion of the mouse liver to study the acute and direct regulation of liver metabolism without disturbing the hepatic architecture but in the absence of extra-hepatic factors.

The liver has numerous functions, including nutrient metabolism. In contrast to other in vitro and in vivo models of liver research, the isolated perfused ...

Mouse Liver Operation and Perfusion for Studying Hepatic Metabolism 

To begin, place the anesthetized C57 Black/6 JRj mouse. Supine on a heated operation table. Confirm the absence of reflex responses to toe pinching.Spray the mouse with 70%ethanol to prevent hair from sticking to the scissors. Using scissors, make an abdominal incision at the base, cutting upwards on both sides to the rib cage to expose the abdominal cavity. Use a cotton swab to move the intestines to the right, exposing the portal vein.Using curved forceps, place two ligatures under the portal vein and loosely tie each ligature. Next, insert a 0.7-millimeter catheter into the portal vein. When perforated, remove the needle from the catheter and guide the catheter through the vein until the tip of the catheter is close to the liver.Then, tighten the ligatures. Observe the liver. Set the flow rate from the roller pump and attach the profusion tube.Initiate the profusion of the liver at 37 degrees Celsius. Once the liver turns pale, use scissors to cut the rib cage and diaphragm. Then, using fine point forceps, place ligature under the suprahepatic inferior vena cava.Next, insert a catheter into the suprahepatic inferior vena cava through the right atrium of the heart. When perforated, remove the needle and guide the catheter through the vein closer to the liver. Then, tighten the ligature.Attach a tube for the collection of perfusion effluent and secure all tubes with waterproof tape. Using a vessel clamp adapter, place a vessel clamp across the infrahepatic vena cava immediately above the right renal vein to prevent dead mixture. Next, increase the perfusion flow rate to 3.5 milliliters per minute.Start the timer and pressure recording. Cover the liver with a sterile drape moistened with saline, equilibrate for 30 minutes, and measure the volume of effluent. After 30 minutes of equilibration, initiate the experiment for the first baseline sample collection in the fraction collector.Monitor the bubble trap regularly and refill with perfusion buffer when close to empty. Collect a buffer sample via a three-way stopcock immediately before it enters the organ and from the collecting catheter inserted in the inferior vena cava. Using a blood gas analyzer, measure the collected sample to confirm that the organ is metabolically active.After 15 minutes of baseline perfusion, using a syringe pump, start the first stimulation by infusing a test substance through a three-way stopcock at desired flow rate. After the simulation, collect baseline samples for 20 to 30 minutes before starting the second stimulation. The production of urea in the perfused liver with steady baseline periods preceding each of two stimulation periods suggested that the response of urea to two consecutive stimulations with mixed amino acids is consistent.A steady basal release of glucose and non-esterified fatty acids was observed. Before a robust increase in glucose and non-ED fatty acids during the glucagon infusion. The mean value at the basal state and during the glucagon infusion suggests that glucagon rapidly stimulates hepatic glycogenolysis and lipolysis.However, without steady basal periods, it becomes impossible to distinguish one urea response from the next.