이 연구는 국립 청각 장애 및 기타 의사 소통 장애 보조원 R01DC015824 (KMS) 및 T32DC00038 (SD 지원), 국방부의 W81XWH-15-1-0472 (KMS), Bertarelli Foundation (KMS), Nancy Sayles Day Foundation (KMS), Lauer 이명 연구 센터 (KMS) 등이 있습니다. Jessica E. Sagers, 원고에 대한 통찰력있는 의견에 감사드립니다.

연구 프로토콜은 매사추세츠의 눈과 귀의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)의 승인을 받았습니다. 실험은 세계 의학 협회의 윤리 강령에 따라 수행되었습니다. 1. 절개 준비 <ol><li> 외과 테이블 준비하기 <ol><li> 수술 테이블을 소독하기 위해 70 % 에탄올을 사용하십시오. </li><li> 현미경 옆에 두 개의 nonsterile prep pad를 놓습니다. </li><li> 가열 살균 된 작동 가위, 메스칼 핸들, 마이크로 나이프 및 포셉 (# 4 및 # 55 각각 2 개)을 포함하여 도구 트레이를 준비합니다. 악기 쟁반과 50mm의 깨끗한 벽으로 된 유리 바닥의 페트리 접시를 비 살균 패드 위에 놓습니다. </li><li> 살균 된 # 15 메스 블레이드를 얻습니다. 밀봉 가능한 비닐 봉지 또는 용기 (기관 지침에 따라 도체를 처리하는 것); 양동이에 얼음; 및 감기, 무균 행크스 균형 소금 솔루션 (HBSS). 이 항목을다른 비 스테로이드 패드. </li><li> 50 ML 플라스틱 실험실 튜브에 HBSS를 전송하고 얼음에 넣어. </li></ol></li><li> 문화 준비 <ol><li> 모든 물질을 층류 후드에서 준비하십시오. 4 개의 시편마다 35mm 4-well petri dish의 4 개의 인레이에 4 개의 오토 클레이브 된 10mm 둥근 유리 커버 슬립을 놓습니다. </li><li> 매 4 개의 시편에 대해 microcentrifuge tube에 다음과 같이 구성된 300 μL의 총 부피를 섞으십시오 : 조직 접착제 10 μL, NaHCO 3 285 μL 및 NaOH 5 μL. </li><li> 모든 커버 슬립에 결과 용액 45 μL를 넣고 RT에서 최소 20 분 동안 그대로 두십시오. 이 솔루션은 몇 시간 동안 coverslip에 남아있을 수 있지만 O / N을 남길 수 없습니다. </li><li> 오염에 대한 두 가지 장벽을 만들기 위해 하나 또는 두 개의 35mm 4 잘 배양 접시 (10) 페트리 접시 안에 놓습니다. </li><li> 98 % Dulbecco 수정 된 이글의 배지 (DMEM), 1 % N-2 및 1 % 암피실린 ((마이크로) 원심 분리 튜브 내 웰 당 65μL)로 처리 하였다. 사용하기 전에 용액을 25 ° C로 예열하십시오. </li></ol></li></ol> 2. 마우스 달팽이관 Explant의 해부 <ol><li> 신생아 마우스의 목을 베다. <ol><li> 60mm 플라스틱 페트리 접시를 얻고 뚜껑에 70 % 에탄올을 뿌려 표면이 젖도록하십시오. </li><li> 차가운 HBSS를 플라스틱 실험실 튜브에서 60mm 플라스틱의 바닥 부분과 50mm 벽으로 덮인 유리 바닥 페트리 접시에 붓는다. 절개하지 않을 때마다 조직을 차가운 상태로 유지하기 위해 플라스틱 실험실 튜브와 두 페트리 접시를 얼음에 보관하십시오. </li><li> P3 - P5 세 신생아 마우스를 라텍스 장갑의 절단 손가락에 얼음 위에 놓고 저체온증이 의식 상실을 유발할 때까지 기다립니다 (약 1-3 분). </li><li> 작동 가위로 마우스를 신속하게 처치하고 몸체를 밀봉 가능한 플라스틱 백에 폐기하십시오. 절단 된 신생아 머리를60mm 플라스틱 페트리 접시의 뚜껑에 70 % 에탄올. </li></ol></li><li> 측두골의 거시적 절제술 <ol><li> 메스 블레이드를 사용하여 전방에서 후방 끝으로 (표면 봉합 바로 위에) 표면 절단을하여 두개골의 피부를 제거합니다. </li><li> 외이도를 메스 칼로 모두 자르고 피부를 앞쪽으로 접어서 전체 두개골을 드러내십시오. 참고 : 해부 현미경은 일반적으로이 단계에 필요하지 않지만 시각화를 개선하는 데 사용할 수 있습니다. </li><li> # 15 메스 블레이드를 사용하여 화살 봉합을 따라 두개골을 엽니 다. 달팽이관의 압축을 피하기 위해 칼날을 앞뒤로 부드럽게 움직여서 두개골을 자르십시오. 참고 : 두개골은이 나이에 골화되어서는 안되며 쉽게 절단해야합니다. </li><li> # 15 메스를 사용하여 궤도 바로 뒤쪽에서 수직으로 절단하여 주둥이를 제거하고 버립니다.잎. 참고 : 두개골의 후부에는 여전히 뇌와 달팽이가 있어야합니다. </li><li> # 4 포셉으로 무딘 절개를 통해 forebrain, 소뇌, 그리고 brainstem의 처분. </li></ol></li><li> 달팽이관의 현미경 적 추출 <ol><li> 범위 아래에 집게를 놓고 조명과 초점을 최적화하여 현미경 (배율 6.5X) 및 광원을 조정합니다. </li><li> 차가운 HBSS로 가득 찬 60mm 플라스틱 페트리 접시에 두개골의 두 반쪽을 놓습니다. </li><li> 주위의 stapedial artery (측두골 내의 구불 구불 한 동맥)에 인접한 것으로 확인되는 달팽이관 / e를 완전히 노출시키고 # 4 포셉을 사용하여 뼈를 일시적으로 뼈에서 분리합니다. </li><li> 달팽이관을 50mm의 유리 벽으로 덮인 유리 바닥 페트리 접시에 옮기고 접시를 현미경에 놓습니다. </li><li> 얼음에 두개의 다른 절반과 60mm 플라스틱 페트리 접시를 놓습니다. </li&gt; <li> vestibular 시스템에서 달팽이관을 제거하고 조심스럽게 # 4 포 셉와 달팽이관 (이 연령대의 연골) 캡슐을 해부. 모든 추가 단계에 # 55 포셉을 사용하십시오. </li></ol></li><li> 조직 처리의 최종 단계 <ol><li> 조심스럽게 코티의 장기에 부착 된 나선형 인대와 마이크로 나이프 또는 2 개의 집게를 사용하여 modiolus를 분리하여 내이 조직을 가공합니다. <ol><li> 나선형 인대와 유모 세포 영역 사이의 틈새에있는 더 어둡고 반투명 한 부분을 잘라내어 가장 기초적인 부분을 잡고 부드럽게 풀어서 나선형 인대를 제거합니다. </li></ol></li><li> 표본을 배치하여 달팽이관의 길이 방향, 시상면을 얻은 다음 마이크로 나이프를 사용하여 달팽이관을 2 개에서 3 개 섹션으로 잘라 내고이 섹션을 꼭지점, (중간,) 및 basal turns. 페트리 접시에 수평으로 놓일 수있는 달팽이 explant 조각을 달성하기 위해 유모 세포와 신경 돌의 실제 레이어로 상사와 하체를 제거합니다. 참고 : 배양 접시에 안정적으로 접착하기에 적합한 크기는 달팽이관 회선의 약 절반입니다. </li><li> tortial 멤브레인, 코르티의 기관에 즉시 우수한 매우 얇은 반투명 레이어 제거, 부드럽게 포 셉와 멀리 벗겨. </li><li> Reissner의 멤브레인을 SGN 바로 위에 놓고 양쪽에 집게를 씌우고 벗겨냅니다. 참고 : 옆으로 위치한 손상된 헤어 셀 영역을 마이크로 나이프로 잘라서 제거하십시오. </li></ol></li></ol> 3. 표본의 문화 플레이트로의 이전 <ol><li> 네 커버 슬립에서 조직 접착제 솔루션 45 μL를 제거합니다. 멸균 H 2 O 50 μL로 각 커버 슬립을 씻으십시오. 물을 기음. </li><li> 1 ML 피펫을 들어. 표본이 팁 내부에 달라 붙지 않도록 DMEM 약 120 μL로 피펫 팁을 적셔주십시오. </li><li> 1 ML 피펫을 사용하여 개별적으로 표본을 전송하십시오. HBSS로 채워진 작고 투명한 벽이있는 유리 바닥 페트리 접시에서 최대 70 μL를 피펫으로 추출한 다음 4 웰 배양 접시에있는 4 개의 인레이 (커버 슬립으로 준비) 중 하나에 시편을 액체와 함께 놓으십시오 . </li><li> 현미경 (배율 50 배)에서 시편의 방향이 올바른지 확인하십시오. tectorial 막이 제거 된 유모 세포의 영역이 위쪽을 향하고 있는지 확인하십시오. modilarus의 기본 부분과 함께 basilar 막이 아래쪽을 향하게하고 coverslip에 붙어 있는지 확인하십시오. <ol><li> 시험편을 거꾸로 뒤집어 놓은 경우 피펫 팁에 남아있는 HBSS를 인레이에 넣고 올바른 방향이 될 때까지 조각의 위치를 ​​변경합니다. 아니TE : 이것은 퇴화로 이어질 수있는 coverslip에서 구조적 지원없이 유모 세포가 문화 매체에 떠 다니는 것을 방지합니다. </li></ol></li><li> 1 ML 피펫을 사용하여 초과 HBSS를 대기음. 15 초를 기다리십시오. </li><li> 준비된 따뜻한 문화 매체 (98 % DMEM, 1 % N - 2, 1 % 암피실린) 60 μL를 표본에 직접 피펫. 피펫으로 시료를 만지지 않도록주의하십시오. 내부 및 외부 페트리 접시 커버를 교체하고 37 ° C에서 O / N 품어. </li><li> 스톡 용액을 모두 적당한 곳에 다시 채우고 시체와 잔여 폐기물을 처분하고 기관 지침 ( 예 : 에탄올이나 차아 염소산염을 사용)에 따라 수술 테이블을 오염 제거하고기구를 세척하고 고압으로 멸균 한 다음 적절한 용기에 날카로운 물건을 버리십시오 . </li></ol> 4. 최종 배양 배지 및 관심 대상 물질 추가 참고 : Cochlear explants는 10-16 시간 후에 사용할 준비가됩니다. <ol><li> 믹스 룸 준비하기97 % DMEM, 1 % 태아 소 혈청 (FBS), 1 % N-2 및 1 % 암피실린 (마이크로 원심 분리 관에서 1 웰 당 65μL; 사용 전에 25 ℃로 가열). </li><li> 해당 치료 그룹의 솔루션에 관심있는 다른 물질을 추가하십시오. 형광 물질이 첨가 된 경우 ( 예 : 녹색 형광 단백질 (GFP) 발현 바이러스, 최근 발표에서는 50 μL에서 48 시간 동안 10 10 GC의 Adeno-Associated Virus (AAV) 농도가 사용됨) 18 , 빛. </li><li> 인큐베이터에서 달팽이 explant 포함 petri 접시를 전송하고 층류 후드 아래에 놓으십시오. </li><li> 인레이에서 피펫으로 오래된 문화 매체 (FBS 제외)를 대기음. </li><li> 준비된 따뜻한 문화 (치료) 매체 (97 % DMEM, 1 % FBS, 1 % N - 2, 1 % 암피실린 및 관심 물질)의 잘 당 60 μL를 추가합니다. </li><li> 인큐베이터 (37 ° C)에 페트리 접시를 다시 놓습니다. </li><li> 보기 r악성 종양, 세포 이동 또는 달팽이 해부 체의 박리를 확인하고 최대 7 일 후에 염색을 수행하기 위해 현미경하에 egularly 수행합니다. </li></ol> 5. 면역 형광법 - 1 일째 <ol><li> 차단 용액 (94 % 인산 완충 식염수 (PBS), 5 % 정상 염소 또는 말 혈청 (2 차 항체에 따라 NGS / NHS), 1 % 비이 온성 계면 활성제 ( 표 2 참조) 항체 용액 (98.6 % PBS, 1 % NHS 및 각각의 항체와 함께 0.4 % 비이 온성 계면 활성제)를 첨가 하였다. 참고 : 항체에는 1 : 400+ (myosin 7A, 내외부 유모 세포 용) 및 mouse anti-TuJ1 1 : 200+ (SGNs 용 β-tubulin) 또는 마우스 (IgG1) 항생제의 농도에서 토끼 항 -Myo7A (postsynapse density), postsynapse의 경우 postsynaptic density) 및 닭 항 -NF-H1 : 1000+ (neurofilament, anti-NF-H1 : SGN 및 신경 섬유의 경우). &quot;+&quot;means &quot;이상이어야합니다. </li><li> 피펫을 사용하여 문화 매체를 대기음. 시험편을 만지지 않도록주의하십시오. </li><li> 층류 후드 아래, 멸균 PBS로 달팽이 explants 두 번 씻어 각 세탁 후 5 분 동안 표본을 쉐이커에 배치. </li><li> 쉐이커 (후드 아래)에서 20 분 동안 4 % 파라 포름 알데히드 (PFA -주의)에 조직을 고정시킵니다. PFA를 흡인하십시오. </li><li> 달팽이 explants에 PBS 60 μL를 적용하고 5 분 동안 쉐이커에 배양 접시를 놓습니다. PBS를 대기음. 3 배 반복. </li><li> 인공 호흡기를 준비된 차단 용액 (94 % PBS, 5 % NHS 및 1 % 비이 온성 계면 활성제)에 쉐이커에서 30 분간 놓습니다. </li><li> RT에서 카운터에 각각의 기본 항체 (사용하기 전에 소용돌이) O / N와 준비 주식 항체 솔루션 (98.6 % PBS, 1 % NHS 및 0.4 % 비 이온 계면 활성제)에 달팽이 explants를 놓으십시오. 참고 : 젖은 종이 타월로 플라스틱 포장 (또는 추가 된 solut 경우 알루미늄 호일)로 묶인 페트리 접시를 포장하십시오이온은 GFP 발현 바이러스와 같은 형광 물질을 포함하고 있습니다)을 사용하여 접시를 습기있게 유지하고 항체 용액 O / N의 증발을 방지합니다. </li></ol> 6. 면역 형광법 - 2 일차 <ol><li> 4 &#39;, 6 - diamidino - 2 - phenylindole (DAPI) 얼룩 (300 nm)을 준비하고 단계 5.1에서 기본 항체에 보완 올바른 올바른 보조 항체 혼합물을 얻기 위해 재고 항체 솔루션을 사용합니다. ( 예 : 염소 항 토끼 488 1 : 200+ 및 염소 항 마우스 568 1 : 200+ 또는 염소 항 마우스 (IgG1) 568 1 : 1000+, 염소 항 마우스 (IgG2a) 488 1 : 500+, 및 염소 항 - 치킨 647 1 : 200+ 또는 Phalloidin 568 1 : 200+ (내외부 유모 세포 용)). </li><li> 일차 항체 용액을 대기음. </li><li> 달팽이 explants에 PBS 60 μL를 적용하고 5 분 동안 쉐이커에 배양 접시를 놓습니다. PBS를 대기음. 3 배 반복. </li><li> 인공 호흡기를 준비된 항체 용액 (98.6 % PBS, 1 % NHS 및 0.4 % 비이 온성 계면 활성제)에 놓고카운터에 1.5 시간 동안 이차 항체 (사용 전 와류)를 가하고 빛으로부터 보호하십시오. </li><li> 2 차 항체 용액을 흡인하고 DAPI 얼룩 (1 분간 진탕 기 위에 놓은 후 흡인)로 달팽이 외식 편을 씻어냅니다. </li><li> 달팽이 explants에 PBS 60 μL를 적용하고 5 분 동안 쉐이커에 배양 접시를 놓습니다. PBS를 대기음. 3 배 반복. </li><li> 포 셉을 사용하여 4 - 웰 플레이트에서 표본과 coverslips를 제거하고, 증류수 H 2 O로 가득한받는 사람에 그들을 찍어, 그리고 종이 수건과 접촉하여 coverslips을 수직으로 가져 와서 건조. </li><li> 현미경 슬라이드에 삽입 방지 매체 한 방울을 놓고 커버 슬립을 거꾸로 뒤집어서 매체에 묻힌 조직을 담그십시오. </li><li> 유리 아래에 시편을 분쇄하지 않고 가장자리를 원주 방향으로 덮는 깨끗한 손톱 광택을 사용하여 coverslip을 봉인합니다. 슬라이드를 15 ~ 20 분 동안 빛이 닿지 않는 곳에 덮고 평평하게 놓고 건조한 상태로 놓습니다.상자에 넣거나 공 촛점 현미경으로 검사하십시오. 참고 : 형광 염색은 슬라이드를 4 ° C 또는 -20 ° C에 보관하여 보존하는 것이 가장 좋습니다. </li></ol> 7. 공 촛점 이미징 <ol><li> 신경 돌기와 SGN을 포함하여 Corti 지역의 기관에 대한 개요와 확대 된 그림을 얻습니다. 참고 : 이미징 프로세스의 표준 설정 : 1,024 x 1,024 픽셀, 400 Hz의 속도, 프레임 평균 3, 전체 레이저 강도 20 %, 오일 침지 (일반적으로 2 배 디지털 줌과 결합 된) 20X 및 63X 렌즈의 형식. DAPI, Myo7A 및 TuJ1 염색 프로토콜에 대한 채널 설정은 위에 요약되어 있습니다. 405 5 % DAPI, &quot;Smart Gain&quot;766.8V, &quot;Smart Offset&quot;0.0 % - 488 15 % FITC (fluorescein isothiocyanate), &quot;Smart Gain&quot;622.2V , &quot;스마트 오프셋&quot;0.0 % - 561 13 % 테트라 메틸로 마틴 이소 티오 시아 네이트 (TRITC), &quot;스마트 게인&quot;562.4V, &quot;스마트 오프셋&quot;0.0 %. </li><li> 이미지를 z 스택에 병합하려면소프트웨어를 사용하여 z 축 투영을 얻습니다. </li></ol>

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S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regenerated+synapses+between+postnatal+hair+cells+and+auditory+neurons.">Regenerated synapses between postnatal hair cells and auditory neurons.</a> J Assoc Res Otolaryngol. 14 (3), 321-329 (2013).</li><li>Yuan, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ouabain-induced+cochlear+nerve+degeneration:+synaptic+loss+and+plasticity+in+a+mouse+model+of+auditory+neuropathy.">Ouabain-induced cochlear nerve degeneration: synaptic loss and plasticity in a mouse model of auditory neuropathy.</a> J Assoc Res Otolaryngol. 15 (1), 31-43 (2014).</li><li>Fernandez, K. A., Jeffers, P. W., Lall, K., Liberman, M. C., Kujawa, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aging+after+noise+exposure:+acceleration+of+cochlear+synaptopathy+in+&amp;#34;recovered&amp;#34;+ears.">Aging after noise exposure: acceleration of cochlear synaptopathy in &amp;#34;recovered&amp;#34; ears.</a> J Neurosci. 35 (19), 7509-7520 (2015).</li><li>Barclay, M., Constable, R., James, N. R., Thorne, P. R., Montgomery, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reduced+sensory+stimulation+alters+the+molecular+make-up+of+glutamatergic+hair+cell+synapses+in+the+developing+cochlea.">Reduced sensory stimulation alters the molecular make-up of glutamatergic hair cell synapses in the developing cochlea.</a> Neuroscience. , 50-62 (2016).</li><li>Zinn, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+Silico+Reconstruction+of+the+Viral+Evolutionary+Lineage+Yields+a+Potent+Gene+Therapy+Vector.">In Silico Reconstruction of the Viral Evolutionary Lineage Yields a Potent Gene Therapy Vector.</a> Cell Rep. 12 (6), 1056-1068 (2015).</li><li>Wu, Z., Yang, H., Colosi, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+genome+size+on+AAV+vector+packaging.">Effect of genome size on AAV vector packaging.</a> Mol Ther. 18 (1), 80-86 (2010).</li><li>Shu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+Adeno-Associated+Viral+Vectors+That+Target+Neonatal+and+Adult+Mammalian+Inner+Ear+Cell+Subtypes.">Identification of Adeno-Associated Viral Vectors That Target Neonatal and Adult Mammalian Inner Ear Cell Subtypes.</a> Hum Gene Ther. , (2016).</li><li>Kao, S. Y., Soares, V. Y., Kristiansen, A. G., Stankovic, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activation+of+TRAIL-DR5+pathway+promotes+sensorineural+degeneration+in+the+inner+ear.">Activation of TRAIL-DR5 pathway promotes sensorineural degeneration in the inner ear.</a> Aging Cell. 15 (2), 301-308 (2016).</li></ol>

저자는 공개 할 것이 없습니다.

연구원은 달팽이관 외식에 관련된 실험을하기 전에 해부 기술을 완벽하게해야합니다. 유모 세포는 일반적으로 학습 곡선에서 초기에 수행되는 해부 중에 손상되며, 완전 무결 한 특히 문제가되는 순간은 안정적인 손, 적절한 도구 및 경험이 필요한 tectorial membrane의 제거입니다. 시간과 자원을 절약하기 위해 해부 현미경으로 시각 제어를 수행해야하며 잠재적으로 손상된 부위를 기록해야합니다....

Sensorineural Hearing Loss (SNHL)은 내이 또는 오름차순 청각 경로의 손상을 나타냅니다. 청력 상실은 인간 1 에서 가장 흔한 감각 결손이지만 치유 요법은 아직 존재하지 않습니다 2 . 인공 와우 또는 청각의 뇌간 이식 물이 심한 SNHL 환자의 청력을 어느 정도 회복시킬 수는 있지만, 이러한 장치가 제공하는 청력은 특히 자연스러운 청력과는 매우 다르며 특히 소음의 말을 이해하거나 음악을 듣는 동안 매우 다릅니다. 유모 세포 변성은 오랫동안 외상성 청각 사건 ( 예 : 시끄러운 소음에 노출)의 주요 결과로 간주되어 왔지만, 유모 세포에서 청각 신경으로 정보를 전송하는 시냅스가 적어도 음향 외상에 취약한 증거가 증가하고 있습니다 3 , 4 , 5 </sup<html> &gt; , 6 . 청각 기능 평가를위한 현재의 금 표준 인 인간의 청력 역치는 내이의 특정 세포 손상을 예측하지 않기 때문에 가능한 한 빨리 세포 변성을 감지하고 적절한 치료를 시작하기 위해보다 정교한 도구가 필요합니다. 청력 상실에 대한 유망한 약제 처리법 은 시험 관내 에서 균질 세포 배양 물 에서 종종 시험되지만, 그러한 시스템은 달팽이 미세 환경을 정확하게 모델링하지 않습니다. Cochlear 세포는 Corti 10 , 11 또는 Spiral Ganglion Neurons (SGNs) 12 의 기관을 분리하여 또는 배양 할 때 손실되는 중요한 생체 내 과정 인 달팽이관 8,9 에서 다른 세포 유형에 영향을주는 영양 요소를 분비하는 것으로 알려져 있습니다 분자 마커를 분석그러나 &quot;정밀 의학&quot;을 추구하기 위해 생체 외 데이터를 검증하여 청력 상실에 대한 새로운 개인 맞춤 치료법을 확립하는 데 필요한 생체 내 연구는 상당한 자원과 시간을 필요로합니다. 이는 특히 고려할 때 적합합니다 청력 검사와 이어지는 인공 와우의 절개를 통해 중이 중이거나 둥근 창 막 주입을 완벽하게 수행하고 수행하는 데 얼마나 많은 노력이 필요한가 인공 와우로 알려진 체외의 체외 배양에서 유망한 화합물을 효율적으로 스크리닝하는 것은 경제적이며 신뢰할 수있는 대안을 제공합니다 14 , 15 , 16 , 17 . 이 기사에서는 치료 된 달팽이 외식편을 생성, 유지 및 평가하는 프로토콜에 대해 자세히 설명합니다. 이 모델의 특정 응용 프로그램은 심사에서의 사용을 포함하여 강조됩니다.유전자 치료를위한 바이러스 성 벡터의 비교 평가를 포함한다. ex vivo explant approach는 연구자들이 주어진 세포 치료법 이 다른 세포 집단 에 미치는 영향을 그 자리 에서 가시화 할 수있게하여 세포 유형별 메커니즘의 확인과 그 이후의 목표 화 된 치료법의 정제를 용이하게한다. 전반적으로,이 기술은 달팽이관 내 에서 공존하는 매우 다른 세포 유형 사이의 중요한 혼선을 보존하면서 생체 내 에서 달팽이관을 연구 할 수있는 모델을 제공합니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Ampicillin, Sodium Salt</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>11593-027</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-CtBP2 antibody, mouse(IgG1)</td>
			<td>BD Transduction Laboratories</td>
			<td>612044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-Myo7A antibody, rabbit</td>
			<td>Proteus Biosciences</td>
			<td>25-6790</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-NF-H antibody, chicken</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>AB5539</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-PSD95 antibody, mouse(IgG2a)</td>
			<td>Antibodies Inc.</td>
			<td>75-028</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-TuJ1 antibody, mouse</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>801202</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell-Tak Cell and Tissue Adhesive, 5 mg</td>
			<td>Corning</td>
			<td>354241</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CELLSTAR 15 ml Centrifuge Tubes, Conical bottom, Graduation, Sterile</td>
			<td>Greiner Bio-One</td>
			<td>188161</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CELLSTAR Cell Culture Dish, 100x20 mm</td>
			<td>Greiner Bio-One</td>
			<td>664160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CELLSTAR Cell Culture Dish, 35x10 mm, four inner rings</td>
			<td>Greiner Bio-One</td>
			<td>627170</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CELLSTAR Cell Culture Dish, 60x15 mm</td>
			<td>Greiner Bio-One</td>
			<td>628160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CELLSTAR 50 ml Centrifuge Tubes, Conical bottom, Graduation, Sterile</td>
			<td>Greiner Bio-One</td>
			<td>227261</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clear Nail Polish</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>72180</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clear Wall Glass Bottom Dishes (Glass 40mm), PELCO&#174;, Sleeve/20, 50x7 mm</td>
			<td>Ted Pella Inc.</td>
			<td>14027-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslips, Round, Glass, 10 mm diameter, Thickness #1, 0.13-0.16mm</td>
			<td>Ted Pella Inc.</td>
			<td>260368</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAPI (4&#39;,6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>D1306</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Distilled water, 500 ml</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>15230-162&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM, high glucose, pyruvate, no glutamine, 500 ml</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>10313-039</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dumont #4 Forceps</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11241-30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dumont #55 Forceps (Dumostar)</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11295-51</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethyl alcohol, Pure, 200 proof, anhydrous, &#8805;99.5%</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>459836-1L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum, qualified, USDA-approved regions, 500 ml</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>10437-028&#160;</td>
			<td>Aliquot in 50 ml tubes and store in -20&#176;C freezer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutamate - GlutaMAX supplement, 100 ml</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>35050-061</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>goat anti-chicken-647 secondary antibody</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A-21469</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>goat anti-mouse(IgG)-568 secondary antibody</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A-11004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>goat anti-mouse(IgG1)-568 secondary antibody</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A-21124</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>goat anti-mouse(IgG2a)-488 secondary antibody</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A-21131</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>goat anti-rabbit-488 secondary antibody</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>R37116</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>H2O, sterile, EmbryoMax Ultra Pure Water, 500ml</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>TMS-006-B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HBSS, calcium, magnesium, no phenol red, 500 ml</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>14025-092</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Instrument Tray with Lid Stainless Steel</td>
			<td>Mountainside Medical</td>
			<td>TechMed4255</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro (dissecting) knife &#8211; angled 30&#176;</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>10056-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope slides, VistaVision, color-coded, 75 x 25 mm (3 x 1&#34;), 1 mm thick, white, pack of 72</td>
			<td>VWR</td>
			<td>16004-382</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N-2 Supplement (100X), 5 ml</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>17502-048</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaHCO3, Sodium Bicarbonate 7.5% solution, 100 ml</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>25080-094</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaOH, sodium hydroxide solution, 1 l</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>SS266-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Normal Horse Serum (NHS)</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>16050130</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Operating scissors</td>
			<td>Roboz Surgical Instruments Co.</td>
			<td>RS-6806</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraformaldehyde, Reagent Grade, Crystalline</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P6148</td>
			<td>Prior to use: Establish Standard Operating Procedures based on protocols available online</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS, pH 7.4, 500 ml</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>10010-023&#160;</td>
			<td>Autoclave prior to use</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phalloidin, Alexa Fluor 568&#160;</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A12380</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prep Pad, Non Sterile&#160;</td>
			<td>Medline</td>
			<td>05136CS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Safe-Lock Microcentrifuge Tubes, Polypropylene, 0.5 ml</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>022363719</td>
			<td>Autoclave prior to use</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Safe-Lock Microcentrifuge Tubes, Polypropylene, 1.5 ml</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>022363204</td>
			<td>Autoclave prior to use</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel Blades - #15</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>10015-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel Handle - #4</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>10004-13</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stemi 2000-C Stereo Microscope</td>
			<td>Zeiss&#160;</td>
			<td>000000-1106-133</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TCS SP5 confocal microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton-X (non-ionic surfactant)</td>
			<td>Integra</td>
			<td>T756.30.30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VectaShield antifade mounting medium for fluorescence</td>
			<td>Vector Laboratories, Inc.</td>
			<td>H-1000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zipper Bag, Reclosable, 4&#39;&#39; x 6&#39;&#39; - 2 mil. thick</td>
			<td>Zipline</td>
			<td>0609132541599</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

neonatal murine cochlear explant technique as an in vitro screening tool in hearing research

지난 수십 년 동안 청력 연구가 눈에 띄게 발전했지만, 내이의 민감한 mechanosensory 구조를 손상 시키거나 손상시키는 감각 신경성 청력 손실 (SNHL)에 대한 치료법은 아직 없습니다. 정교한 in vitro 및 ex vivo 분석법이 최근 수년간 출현하여 SNHL 치료법 개발을위한 자원을 최소화하고 치료 노력을 가속화하면서 잠재적으로 치료 화합물의 증가를 시험 할 수있게되었습니다. 특정 세포 유형의 균질 배양이 현재의 연구에서 중요한 역할을 계속하고 있지만, 많은 과학자들은 이제 달팽이 외식 편으로 알려진보다 복잡한 기관 내 배양에 의존합니다. 내이에서 조직화 된 세포 구조를 보존하면 내외부 유모 세포, 나선형 신경절 뉴런, 신경 세포를 포함한 달팽이관 인프라의 다양한 구성 요소를 현장에서 평가할 수 있습니다.ites 및 지원 세포. 여기에서는 신생아 생쥐 달팽이 explants의 준비, 문화, 치료 및 immunostaining을 제시합니다. 이러한 explants의주의 깊은 준비는 SNHL에 기여하는 메커니즘의 식별을 용이하게하고 청각 연구 커뮤니티를위한 중요한 도구를 구성합니다.

많은 프로토콜이 Corti 체외 이식편의 기관에 초점을 맞추고 있지만이 기술은 SGNs를 포함하여 전체 달팽이관의 해부학 구조를 보존하려고 시도합니다. 이것은 연구자들에게 Corti 기관뿐만 아니라 SGNs의 신경 돌기 및 somata에 대한 주어진 치료의 효과를 분석 할 수있는 기회를 제공합니다. 여기에 설명 된 것처럼 모 틸리 움의 일부를 보존하는 절개를 수행하는 것은 Corti만의 ...

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Neonatal Murine Cochlear Explant Technique as an In Vitro Screening Tool in Hearing Research

이 프로토콜의 목표는 신생아 생쥐 달팽이 explants의 준비, 문화, 치료 및 immunostaining를 입증하는 것입니다. 이 기술은 청각 연구 에서 체외 선별 도구로 활용 될 수 있습니다.

신생아 쥐의 달팽이관 Explant 기법으로<em&gt; 체외에서</em&gt; 청력 연구의 스크리닝 도구

While there have been remarkable advances in hearing research over the past few decades, there is still no cure for Sensorineural Hearing Loss (SNHL), a ...

neonatal-murine-cochlear-explant-technique-as-an-vitro-screening-tool

Research

Education

JoVE Journal

JoVE Core

Biology

Medicine

Neonatal Murine Cochlear Explant Technique as an In Vitro Screening Tool in Hearing Research

Human Biology

Sensory Systems

SCIENTISTS IN ACTION

17.4K 조회수.  Massachusetts Eye and Ear.  이 프로토콜의 목표는 신생아 생쥐 달팽이 explants의 준비, 문화, 치료 및 immunostaining를 입증하는 것입니다. 이 기술은 청각 연구 에서 체외 선별 도구로 활용 될 수 있습니다. 

비디오: Neonatal Murine Cochlear Explant Technique as an In Vitro Screening Tool in Hearing Research

Making Sense of Listening: The IMAP Test Battery

The ability to hear is only the first step towards making sense of the range of information contained in an auditory signal. Of equal importance are the abilities to extract and use the information encoded in the auditory signal. We refer to these as listening skills (or auditory processing AP). Deficits in these skills are associated with delayed language and literacy development, though the nature of the relevant deficits and their causal connection with these delays is hotly debated.
When a child is referred to a health professional with normal hearing and unexplained difficulties in listening, or associated delays in language or literacy development, they should ideally be assessed with a combination of psychoacoustic (AP) tests, suitable for children and for use in a clinic, together with cognitive tests to measure attention, working memory, IQ, and language skills. Such a detailed examination needs to be relatively short and within the technical capability of any suitably qualified professional. Current tests for the presence of AP deficits tend to be poorly constructed and inadequately validated within the normal population. They have little or no reference to the presenting symptoms of the child, and typically include a linguistic component. Poor performance may thus reflect problems with language rather than with AP. To assist in the assessment of children with listening difficulties, pediatric audiologists need a single, standardized child-appropriate test battery based on the use of language-free stimuli.
We present the IMAP test battery which was developed at the MRC Institute of Hearing Research to supplement tests currently used to investigate cases of suspected AP deficits. IMAP assesses a range of relevant auditory and cognitive skills and takes about one hour to complete. It has been standardized in 1500 normally-hearing children from across the UK, aged 6-11 years. Since its development, it has been successfully used in a number of large scale studies both in the UK and the USA. IMAP provides measures for separating out sensory from cognitive contributions to hearing. It further limits confounds due to procedural effects by presenting tests in a child-friendly game-format. Stimulus-generation, management of test protocols and control of test presentation is mediated by the IHR-STAR software platform. This provides a standardized methodology for a range of applications and ensures replicable procedures across testers. IHR-STAR provides a flexible, user-programmable environment that currently has additional applications for hearing screening, mapping cochlear implant electrodes, and academic research or teaching.

A test battery (IMAP) for performing an in-depth assessment of auditory and cognitive abilities contributing to listening skills is described. It is quick to administer, child-friendly and free from linguistic confounds. Stimulus generation and protocol management are controlled via a software platform (IHR-STAR) to ensure replicable procedures.

IMAP 테스트 배터리 : 듣기의 감각을 만들기

The ability to hear is only the first step towards making sense of the range of information contained in an auditory signal. Of equal importance are the ...

연구

의학

A Strategy to Identify de Novo Mutations in Common Disorders such as Autism and Schizophrenia

There are several lines of evidence supporting the role of de novo mutations as a mechanism for common disorders, such as autism and schizophrenia. First, the de novo mutation rate in humans is relatively high, so new mutations are generated at a high frequency in the population. However, de novo mutations have not been reported in most common diseases. Mutations in genes leading to severe diseases where there is a strong negative selection against the phenotype, such as lethality in embryonic stages or reduced reproductive fitness, will not be transmitted to multiple family members, and therefore will not be detected by linkage gene mapping or association studies. The observation of very high concordance in monozygotic twins and very low concordance in dizygotic twins also strongly supports the hypothesis that a significant fraction of cases may result from new mutations. Such is the case for diseases such as autism and schizophrenia. Second, despite reduced reproductive fitness1 and extremely variable environmental factors, the incidence of some diseases is maintained worldwide at a relatively high and constant rate. This is the case for autism and schizophrenia, with an incidence of approximately 1% worldwide. Mutational load can be thought of as a balance between selection for or against a deleterious mutation and its production by de novo mutation. Lower rates of reproduction constitute a negative selection factor that should reduce the number of mutant alleles in the population, ultimately leading to decreased disease prevalence. These selective pressures tend to be of different intensity in different environments. Nonetheless, these severe mental disorders have been maintained at a constant relatively high prevalence in the worldwide population across a wide range of cultures and countries despite a strong negative selection against them2. This is not what one would predict in diseases with reduced reproductive fitness, unless there was a high new mutation rate. Finally, the effects of paternal age: there is a significantly increased risk of the disease with increasing paternal age, which could result from the age related increase in paternal de novo mutations. This is the case for autism and schizophrenia3. The male-to-female ratio of mutation rate is estimated at about 4&#x2013;6:1, presumably due to a higher number of germ-cell divisions with age in males. Therefore, one would predict that de novo mutations would more frequently come from males, particularly older males4. A high rate of new mutations may in part explain why genetic studies have so far failed to identify many genes predisposing to complexes diseases genes, such as autism and schizophrenia, and why diseases have been identified for a mere 3% of genes in the human genome. Identification for de novo mutations as a cause of a disease requires a targeted molecular approach, which includes studying parents and affected subjects. The process for determining if the genetic basis of a disease may result in part from de novo mutations and the molecular approach to establish this link will be illustrated, using autism and schizophrenia as examples.

Molecular genetic strategy for finding de novo mutations causing common disorders such as autism and schizophrenia.

같은 자폐증과 정신 분열증과 같은 일반적인 장애에 드 노보 변이를 식별하는 전략

There are several lines of evidence supporting the role of de novo mutations as a mechanism for common disorders, such as autism and schizophrenia. First, ...

Excitotoxic Stimulation of Brain Microslices as an In vitro Model of Stroke

Examining molecular mechanisms involved in neuropathological conditions, such as ischemic stroke, can be difficult when using whole animal systems. As such, primary or &#39;neuronal-like&#39; cell culture systems are commonly utilized. While&#160;these systems are relatively easy to work with, and are useful model systems in which various functional outcomes (such as cell death) can be readily quantified, the examined outcomes and pathways in cultured immature neurons (such as excitotoxicity-mediated cell death pathways) are not necessarily the same as those observed in mature brain, or in intact tissue. Therefore, there is the need to develop models in which cellular mechanisms in mature neural tissue can be examined. We have developed an in vitro technique that can be used to investigate a variety of molecular pathways in intact nervous tissue. The technique described herein utilizes rat cortical tissue, but this technique can be adapted to use tissue from a variety of species (such as mouse, rabbit, guinea pig, and chicken) or brain regions (for example, hippocampus, striatum, etc.). Additionally, a variety of stimulations/treatments can be used (for example, excitotoxic, administration of inhibitors, etc.). In conclusion, the brain slice model described herein can be used to examine a variety of molecular mechanisms involved in excitotoxicity-mediated brain injury.

Excitotoxic Stimulation of Brain Microslices as an In vitro Model of Stroke

We have developed a brain slice model which can be used to examine molecular mechanisms involved in excitotoxicity-mediated brain injury.&#160;This technique generates viable mature brain tissue and reduces animal numbers required for experimentation, whilst keeping the neuronal circuitry, cellular interactions, and postsynaptic compartments partly intact.

같은 뇌 Microslices의 흥분 독성 자극<em&gt; 체외</em&gt; 스트로크의 모델

Examining molecular mechanisms involved in neuropathological conditions, such as ischemic stroke, can be difficult when using whole animal systems. As ...

Dissection and Explant Culture of Murine Allantois for the In Vitro Analysis of Allantoic Attachment

The placenta is essential for the growth and development of mammalian embryos. For this reason, numerous genetic alterations and likely also environmental insults that disturb placenta development or function can cause early pregnancy loss in mice and humans. Nevertheless, simple in vitro assays to screen for potential effects on placenta formation are lacking. Here, we focus on modeling the first and critical step in placenta formation, which consists of the attachment of the allantois to the chorion. We describe a method to rapidly assess the attachment of allantoic explants on immobilized &#945;4&#946;1 integrin, which serves as a chorio-mimetic substrate.This in vitro approach enables a qualitative evaluation of the attachment and spreading behavior of multiple allantois explants at different consecutive time points. The protocol may be used to investigate the effect of targeted mouse mutations, drugs, or various environmental factors that have been linked to pregnancy complications or fetal loss on allantois attachment ex vivo.

Dissection and Explant Culture of Murine Allantois for the In Vitro Analysis of Allantoic Attachment

We describe an in vitro assay to model chorioallantoic attachment, the first step in placenta formation. The protocol demonstrates the dissection and explant culture of murine allantoides on immobilized &#945;4&#946;1 integrin. Allantois attachment is evaluated microscopically at pre-determined time points.

해 부와 Allantoic 첨부 파일의 생체 외에서 분석 Murine Allantois Explant 문화

The placenta is essential for the growth and development of mammalian embryos. For this reason, numerous genetic alterations and likely also environmental ...

Vagus Nerve Stimulation As an Adjunctive Neurostimulation Tool in Treatment-resistant Depression

Vagus nerve stimulation (VNS) is an approved neurostimulation therapy. The purpose of the method is to treat patients with therapy-resistant depression (TRD). VNS exhibits antidepressive and stabilizing effects. This method is particularly useful as a long-term treatment, in which up to two-thirds of patients respond. The vagus nerve stimulator is positioned on the left vagus nerve during a surgical procedure and is activated telemetrically by a wand connected to a handheld computerized device. The treating physician can perform various adjustments of the vagus nerve stimulator during in-office visits (e.g., by modifying stimulation intensity or stimulation frequency) to achieve maximum therapeutic effects with low side effects. Set-up of the device usually takes several months. Typical side effects include wound infection, temporary salivation, coughing, paralysis of the vocal cords, bradycardia, or even asystole. The patient can stop the VNS by placing a magnet over the generator. The current protocol describes delivery of the specific stimulation tool and methods for adjusting the tuning parameters to achieve the best remission rates in patients with TRD.

Vagus nerve stimulation (VNS) has been shown to be effective as an adjunct treatment for treatment-resistant depression (TRD). VNS leads to antidepressive and antisuicidal effects and quality of life improvements. This protocol offers a step-by-step guide to managing and adjusting a vagus nerve stimulator for efficient treatment of TRD.

Vagus nerve stimulation (VNS) is an approved neurostimulation therapy. The purpose of the method is to treat patients with therapy-resistant depression ...

Murine Precision-Cut Liver Slices as an Ex Vivo Model of Liver Biology

Understanding the mechanisms of liver injury, hepatic fibrosis, and cirrhosis that underlie chronic liver diseases (i.e., viral hepatitis, non-alcoholic fatty liver disease, metabolic liver disease, and liver cancer) requires experimental manipulation of animal models and in vitro cell cultures. Both techniques have limitations, such as the requirement of large numbers of animals for in vivo manipulation. However, in vitro cell cultures do not reproduce the structure and function of the multicellular hepatic environment. The use of precision-cut liver slices is a technique in which uniform slices of viable mouse liver are maintained in laboratory tissue culture for experimental manipulation. This technique occupies an experimental niche that exists between animal studies and in vitro cell culture methods. The presented protocol describes a straightforward and reliable method to isolate and culture precision-cut liver slices from mice. As an application of this technique, ex vivo liver slices are treated with bile acids to simulate cholestatic liver injury and ultimately assess the mechanisms of hepatic fibrogenesis.

This protocol provides a simple and reliable method for the production of viable precision-cut liver slices from mice. The ex vivo tissue samples can be maintained under laboratory tissue culture conditions for multiple days, providing a flexible model to examine liver pathobiology.

뮤린 정밀 절단 간 슬라이스 간 생물학의 Ex Vivo 모델로

Understanding the mechanisms of liver injury, hepatic fibrosis, and cirrhosis that underlie chronic liver diseases (i.e., viral hepatitis, non-alcoholic ...

Measurement of Strial Blood Flow in Mouse Cochlea Utilizing an Open Vessel-Window and Intravital Fluorescence Microscopy

Transduction of sound is metabolically demanding, and the normal function of the microvasculature in the lateral wall is critical for maintaining endocochlear potential, ion transport, and fluid balance. Different forms of hearing disorders are reported to involve abnormal microcirculation in the cochlea. Investigation of how cochlear blood flow (CoBF) pathology affects hearing function is challenging due to the lack of feasible interrogation methods and the difficulty in accessing the inner ear. An open vessel-window in the lateral cochlear wall, combined with fluorescence intravital microscopy, has been used for studying CoBF changes in vivo, but mostly in guinea pig and only recently in the mouse. This paper and the associated video describe the open vessel-window method for visualizing blood flow in the mouse cochlea. Details include 1) preparation of the fluorescent-labeled blood cell suspension from mice; 2) construction of an open vessel-window for intravital microscopy in an anesthetized mouse, and 3) measurement of blood flow velocity and volume using an offline recording of the imaging. The method is presented in video format to show how to use the open window approach in mouse to investigate structural and functional changes in the cochlear microcirculation under normal and pathological conditions.

An open vessel-window approach using fluorescent tracers provides sufficient resolution for cochlear blood flow (CoBF) measurement. The method facilitates the study of structural and functional changes in CoBF in mouse under normal and pathological conditions.

열린 혈관 창과 생체 내 형광 현미경을 사용한 마우스 달팽이관의 심방 혈류 측정

Transduction of sound is metabolically demanding, and the normal function of the microvasculature in the lateral wall is critical for maintaining ...

Performing Intracochlear Electrocochleography During Cochlear Implantation

Electrocochleography (ECochG) measures inner ear potentials generated in response to acoustic stimulation of the ear. These potentials reflect the residual function of the cochlea. In cochlear implant candidates with residual hearing, the implant electrode can directly measure ECochG responses during the implantation process. Various authors have described the ability to monitor the inner ear function by continuous ECochG measurements during the surgery. The measurement of ECochG signals during surgery is not trivial. There are no interpretable signals in up to 20% of cases. For a successful recording, a standardized procedure is recommended to achieve the highest measurement reliability and avoid possible pitfalls. Therefore, seamless collaboration between the CI surgeon and CI technician is key. This video consists of an overview of the system setup and a stepwise procedure of performing intracochlear ECochG measurements during CI surgery. It shows the surgeon's and the CI technician's roles in the process, and how a smooth collaboration between the two is made possible.

Electrocochleography (ECochG) measures inner ear potentials generated in response to acoustic stimulation. In cochlear implant (CI) candidates, such inner ear potentials can be measured directly with the implant electrodes. In this video, we systematically explain how to perform ECochG recordings during CI surgery.

인공와우 이식 중 Intracochlear Electrocochleography 수행

Electrocochleography (ECochG) measures inner ear potentials generated in response to acoustic stimulation of the ear. These potentials reflect the ...

Modified Technique for the Use of Neonatal Murine Hearts in the Langendorff Preparation

The use of the ex-vivo retrograde perfused heart has long been a cornerstone of ischemia-reperfusion investigation since its development by Oskar Langendorff over a century ago. Although this technique has been applied to mice over the last 25 years, its use in this species has been limited to adult animals. Development of a successful method to consistently cannulate the neonatal murine aorta would allow for the systematic study of the isolated retrograde perfused heart during a critical period of cardiac development in a genetically modifiable and low-cost species. Modification of the Langendorff preparation enables cannulation and establishment of reperfusion in the neonatal murine heart while minimizing ischemic time. Optimization requires a two-person technique to permit successful cannulation of the newborn mouse aorta using a dissecting microscope and a modified commercially available needle. The use of this approach will reliably establish retrograde perfusion within 3 min. Because the fragility of the neonatal mouse heart and ventricular cavity size prevents direct measurement of intraventricular pressure generated using a balloon, use of a force transducer connected by a suture to the apex of the left ventricle to quantify longitudinal contractile tension is necessary. This method allows investigators to successfully establish an isolated constant-flow retrograde-perfused newborn murine heart preparation, permitting the study of developmental cardiac biology in an ex-vivo manner. Importantly, this model will be a powerful tool to investigate the physiological and pharmacological responses to ischemia-reperfusion in the neonatal heart.

The present protocol describes aortic cannulation and retrograde perfusion of the ex-vivo neonatal murine heart. A two-person strategy, using a dissecting microscope and a blunted small gauge needle, permits reliable cannulation. Quantification of longitudinal contractile tension is achieved using a force transducer connected to the apex of the left ventricle.

Langendorff 준비에서 신생아 뮤린 하트의 사용을위한 수정 된 기술

The use of the ex-vivo retrograde perfused heart has long been a cornerstone of ischemia-reperfusion investigation since its development by Oskar ...

Effect of Hyaluronic Acid 35 kDa on an In Vitro Model of Preterm Small Intestinal Injury and Healing Using Enteroid-Derived Monolayers

In vitro scratch wound assays are commonly used to investigate the mechanisms and characteristics of epithelial healing in a variety of tissue types. Here, we describe a protocol to generate a two-dimensional (2D) monolayer from three-dimensional (3D) non-human primate enteroids derived from intestinal crypts of the terminal ileum. These enteroid-derived monolayers were then utilized in an in vitro scratch wound assay to test the ability of hyaluronan 35 kDa (HA35), a human milk HA mimic, to promote cell migration and proliferation along the epithelial wound edge. After the monolayers were grown to confluency, they were manually scratched and treated with HA35 (50 &#181;g/mL, 100 &#181;g/mL, 200 &#181;g/mL) or control (PBS). Cell migration and proliferation into the gap were imaged using a transmitted-light microscope equipped for live-cell imaging. Wound closure was quantified as percent wound healing using the Wound Healing Size Plugin in ImageJ.&#160;The scratch area and rate of cell migration and the percentage of wound closure were measured over 24 h. HA35 in vitro accelerates wound healing in small intestinal enteroid monolayers, likely through a combination of cell proliferation at the wound edge and migration to the wound area. These methods can potentially be used as a model to explore intestinal regeneration in the preterm human small intestine.

Effect of Hyaluronic Acid 35 kDa on an In Vitro Model of Preterm Small Intestinal Injury and Healing Using Enteroid-Derived Monolayers

This protocol describes a method to establish and perform a scratch wound assay on two-dimensional (2D) monolayers derived from three-dimensional (3D) enteroids isolated from non-human primate ileum.

히알루론산 35kDa가 장내 유래 단분자층을 사용한 조기 소장 손상 및 치유의 시험관 내 모델에 미치는 영향

In vitro scratch wound assays are commonly used to investigate the mechanisms and characteristics of epithelial healing in a variety of tissue types. ...