Name: surgical swine model of chronic cardiac ischemia treated by off-pump coronary artery bypass graft surgery
Uploaded: 2018-03-27T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 12 s
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이 작품으로는 버지니아 장점 검토 #I01 BX000760 (RFK) 미국 (미국)에서 지원 학과의 재향 군인 담당 BLR & 디 이 작품의 내용을의 미국 재향 군인 담당 부서는 미국 정부의 의견을 대표 하지 않는다.

모든 동물 연구 기관 동물 관리 및 사용 위원회는 미니애폴리스 VA 의료 센터 및 미네소타의 대학에 의해 승인 되었다. 및 실험 동물 사용에 대 한 현재 국립 보건원의 지침을 따르십시오.
1. 최대 절전 모드 수술
<ol><li>동물 준비<ol>
<li>동 면 심근의 모델을 만들고, 5 주 오래 된, 여성을 사용 하 여, 요크 셔 돼지는 무게 9.2 k g k g 8-10의 범위에서 평균 체중으로.</li>
		<li>미리 수술 상태 모니터링에 대 한 수술 전 3 일 내 동물을 무게.</li>
		<li>마 취를 시작 하기 전에 12 h에 대 한 빠른 동물. 물 단식 동물에 대 한 모든 시간에 사용할 수 있는지 확인 합니다.</li>
		<li>수술 전에 SR Buprenorphine 0.18 mg/kg IM 24 h를 제공 합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>유도<ol>
<li>피하 주어진 6.6 mg/kg tiletamine-zolazepam와 xylazine 칵테일 동물 진정 5-15 분 약에 대 한 허용 적용 칵테일.</li>
		<li>Aseptically 3 번 IV 카 테 테 르 배치에 대 한 70% 이소프로필 알코올로 닦아 하 여 귀 정 맥을 준비 합니다. 참고: 한 귀 정 맥 충분 하지 않으면 다른 주변 정 맥 수 있습니다 (즉, 두 부) 사용.</li>
		<li>각 막 건조 방지 하기 위해 두 눈 안과 연 고를 적용 합니다.</li>
		<li>필요한 경우, propofol IV의 1-2 mg/kg을 투여 하 여 마 취를 유도 하거나 tracheal 삽 관 법에 대 한 있도록 3 L/min의 산소와 3 %isoflurane 마스크. 참고: 동물이 여겨진다 적절 하 게 마 취 때 깜빡임 반사 또는 턱 톤은 결 석.</li>
		<li>적절 한 크기의 endotracheal 튜브 동물 넣어야</li>
	</ol></li>
	<li>수술<ol>
<li>일단 동물 마 취는 수술에 대 한 왼쪽된 흉부 영역을 면도.</li>
		<li>1-4 L/min, 및 isoflurane 1.0 및 3.0% 마 취의 수술 평면을 유지 하는 데 필요한 사이 분 설정된 산소 당 10-15 호흡에서 기계 환기를 시작 합니다.</li>
		<li>동물에 감시 장치를 놓습니다. 심전도, 혈압, 온도, 및 펄스 속도도 모니터링 장치 포함 되어야 합니다.</li>
		<li>5-10 mL/kg의 비율로 0.9% 정상적인 염 분으로 IV 드립에 IV 카 테 터를 연결/h.</li>
		<li>Aseptically는 FDA 승인 수술 스크럽으로 왼쪽된 측면 가슴을 준비 합니다.</li>
		<li>깊이 평가 마 취의 5-15 분 마다 기록 기준선 생체 신호 (심 박수, 심전도, SpO2, NIBP, ETCO2 및 온도) 매 15 분. 참고: 동물이 여겨진다 적절 하 게 마 취 때 깜빡임 반사 또는 턱 톤은 결 석.</li>
		<li>동물의 오른쪽 측면에 누워, 장소 살 균 살 균 분야에서 제 3 늑 골의 공간을 중심으로 견 갑 골을 척추에서 가슴의 왼쪽 커튼. 참고: 살 균 필드 왼쪽된 전면 어깨 cranially 여섯 번째 갈비뼈 공간에 흉 골을 계속 액 지역을 포함 하 여 포함 됩니다.</li>
		<li>부드럽게 문질러 액체 글 루 콘 산 등 FDA 승인 수술 방법 또는 대상의 패턴을 사용 하 여 2 분 동안 요오드 수술 스크럽 필드.</li>
		<li>린스 물으로 필드는 FDA 승인 방법으로 위의 2 분 린스 세척, 중간 물으로 수술 필드에 대 한 두 번 더 씻어 다음 팻 건조 살 균 toweling 또는 4 x 4 cm 거 즈 스폰지와 함께.</li>
		<li>요오드 솔루션 영역을 스프레이 하 고 무 균 커튼으로 (수술 필드)를 제외 하 고 전체 동물을 드러 워 진. 사용 하 여 증기 또는 가스 살 균 소독 기기, 가운, 및 절차에 대 한 커튼.</li>
		<li>0.5 %bupivicaine 0.3 mL를 사용 하 여 2, 3, 4 갈비뼈에 있는 신경 블록을 관리 합니다.</li>
		<li>가슴 열기 전에 cefazolin IV의 125 밀리 그램을 제공 합니다. 참고: 1.5 m g/k g succinylcholine IV 주어진 수 있습니다 마비 요원으로 동안을 줄이기 위해 의사의 요청에 따라 근육 운동 가슴 구멍의 개통.</li>
		<li>왼쪽된 thoracotomy 통해 마음을 노출 합니다. 마음 조작, 이전 2 mg/kg IV bolus 부정맥을 방지 하기 위해 lidocaine의 줄. Monopolar electrocautery 확인 측면 3 공간 thoracotomy 절 개. 절 개는 견 갑 골의 두개골 측면에서 액 지역에 대 한 약 10 cm.는 있지만 사용 하 여 피부와 흉을 수 있도록 기본 근육 incise에 연장 해야 합니다.</li>
		<li>Finochietto 리브 견인 놓고 폐를 철회 하는 제 3의 늑 공간에서 흉 막 공간을 입력 합니다.</li>
		<li>급격히 심 낭 incise 그리고 2-0 polyglactin 숙박 봉합을 사용 하 여, 젊은이 동맥과 정 맥 노출 면에 철회. 거 즈 커버 주걱 견인으로 왼쪽된 심 방 부속 기 철회.</li>
		<li>아이리스가 위를 사용 하 여 젊은이에 adventitia를 엽니다.</li>
		<li>퉁 명 스럽게 해 부 한 젊은이와 곡절 동맥 접합 원심 젊은이 동맥 약 1 cm의 약 0.25 cm 부분. 직각 클램프를 사용 하 여 젊은이 둘러싸 자.</li>
		<li>어떤 긴장을 삽입 하지 않고 동맥 주위 두 4-0 폴리에스터 봉합을 배치 합니다.</li>
		<li>혈관 경색 없이 첫 번째 대각선에 인접 젊은이에 1.5 m m의 내부 직경을 가진 플라스틱 c 모양의 위 장소.</li>
		<li>보안 그것 두 4-0와 폴 리 에스테 르 관계는 젊은이 포위 망.</li>
		<li>느슨하게 간단한 중단된 패턴에 2-0 polyglactin 봉합 사를 사용 하 여 심 낭을 닫습니다.</li>
		<li>있는 근육 층을 폐쇄 하는 동안 가슴에서 공기를 제거 하는 호흡 보류를 수행 합니다. 물 20-30 cm의 적절 한 범위에서 압력을 유지 하 고 완료 되 면 릴리스를 마 취 기계에 기도 압력 압력 계는 신중 하 게 모니터링 합니다. 참고:이 수술 기간에 가슴 튜브에 대 한 필요가 없습니다.</li>
		<li>2-0와 3-0 흡수 봉합 사를 사용 하 여 표준 방식에서 근육과 피부 레이어를 닫습니다.</li>
		<li>절 개를 통해 피부 접착제를 사용 하 여 피부 폐쇄에 대 한.</li>
		<li>프로시저의 끝에 절 개의 길이 따라 여러 사이트에서 피하 1 mg/kg bupivacaine의 총계 복용량을 관리 합니다. 관리 meloxicam 0.2 mg/kg SQ 전송 하기 전에 복구 영역에.</li>
		<li>피부 층을 닫을 호흡기에서 동물을 유아.</li>
		<li>그것은 자발적으로 숨을 쉴 수 있는 보호 반사 반환 하기 시작 때까지 마 취 기계에 연결 된 동물을 둡니다.</li>
		<li>동물 보호의 기도를 삼 킬 수 있는 때까지 endotracheal 튜브를 제거 하지 마십시오.</li>
		<li>절 개를 통해 트리플-항생제 연 고와 살 균, 비 점착 드레싱을 적용 합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>수술 후<ol>
<li>기록 심장 박동, 호흡 속도, 온도 점 막 동물 남의 sternal 위치를 저장할 수 있는 때까지 15 분 마다 색상.</li>
		<li>방치 하지 마십시오 동물 리프트 수 있습니다 그것은 때까지 그것의 머리를 잡고 고 남의 설 수 있습니다.</li>
		<li>피하 meloxicam (0.2 mg/kg)를 제공 합니다.</li>
		<li>지속적인된 출시 buprenorphine 초기 미리 수술 복용량에 따라 6 h를 관리 합니다.</li>
		<li>깨끗 하 고 건조 유지 하는 경우 최대 3 일 동안 절 개에 드레싱을 둡니다. 오염 되는 드레싱을 교체 합니다.</li>
		<li>통증 수준, 일반적인 복지 및 절차는 5 일 동안 절 개의 상태를 모니터링 합니다. 참고: 돼지 얼굴을 찡 그리기 규모는 지금 post-operatively이 동물에 고통의 수준을 평가 하기 위해 사용할 수14. 절반 복용량 meloxicam를 사용 하 여 획기적인 통증에 하루 한 번 필요에 따라.</li>
		<li>단일-집 활동을 제한 하 고 상처 치유를 허용 5 일의 회복 기간 동안 동물.</li>
		<li>완전히 동 면 심근 표현 형을 개발 하기 위해 8 주 수 있습니다.</li>
	</ol></li>
</ol>2. revascularization 켜거나 펌프 바이패스
<ol><li>동물 준비<ol>
<li>수술 전 3 일 내 동물의 무게.</li>
		<li>수술 전에 12 h에 대 한 빠른 동물. 물 단식 동물에 대 한 모든 시간에 사용할 수 있는지 확인 합니다.</li>
		<li>수술 전에 지속적인된 출시 buprenorphine 0.18 mg/kg 피하 24 h를 제공 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>유도<ol>
<li>피하 6.6 mg/kg tiletamine-zolazepam/xylazine 칵테일으로 동물을 진정. 진정, 후 5-15 분 준비 귀 정 맥 aseptically 카 테 터 배치. 참고: 한 귀 정 맥 충분 하지 않으면 다른 주변 정 맥 수 있습니다 (즉, 두 부) 사용.</li>
		<li>두 눈에 안과 연 고를 적용 합니다.</li>
		<li>1-2 mg/kg IV propofol의와 마 취를 유도.</li>
		<li>적절 한 크기의 endotracheal 튜브 동물 넣어야</li>
	</ol>
</li>
	<li>수술<ol>
<li>동물의 흉 골, 왼쪽된 측면 가슴 및 수술에 대 한 대 퇴 삼각형 면도.</li>
		<li>10-15 분, 1-4 L/분, 산소와 마 취의 수술 평면을 유지 하기 위해 필요에 따라 1.0-3.0%에서 isoflurane 호흡을 기계적 환기를 설정 합니다.</li>
		<li>모니터링 장비 위치 (심 박수, 심전도, SpO2, 직접 혈압, ETCO2 , 온도) 동물에.</li>
		<li>일반적인 염 분 또는 LRS IV 드립에 IV 카 테 터를 연결 합니다.</li>
		<li>Aseptically povidone 요오드 스크럽 또는 다른 FDA 승인 방법으로 피부를 준비 합니다.</li>
		<li>동물 마 취의 깊이 평가 합니다. 참고: 동물 이라고 여겨진다 깊은 마 취 때 눈 또는 턱 반사 이다 결 석.</li>
		<li>동물 dorsally 위치, 앞에서 설명한 피부를 준비 하 고 메 마른 수건으로 동물을 드러 워 진.</li>
		<li>대 퇴 동맥 및 cannulation 컷을 수행 합니다. Monopolar electrocautery를 사용 하 여 만들는 cannulation에 대 한 폭로 대 퇴 동맥을 통해 약 3 cm 피부 절 개.</li>
		<li>약물의 정확한 배치를 허용 하는 절 개 만든 후 대 퇴 신경 블록을 수행 합니다. 수술 중 혈액 압력을 모니터링 하는 트랜스듀서에 대 퇴 정 맥을 연결 합니다.</li>
		<li>전기로 사용 하 여 칼 프로세스에는 위에서 incise에 뿐 아니라 근육, 지방, 그리고 흉 골의 수준에 결합 조직 incise에.</li>
		<li>진동 톱으로 흉 골을 나눕니다. 참고: 사용 하는 진동 본 보다는 표준 sternal 본 위 배치는 젊은이에 대 한 thoracotomy 결과로 pericardial 유착에서 잠재적인 심근 상해 방지.</li>
		<li>Lidocaine (2mg/kg IV 선적 복용량, 50 µ g/k g/분 연속 IV 주입) arrhythmias 방지 하기 위해 관리 합니다. 1 mg/mL의 농도에 정상적인 염 분의 500 mL 가방에 lidocaine을 희석.</li>
		<li>바로 마요네즈가 위 후부 sternal 접시를 나눕니다.</li>
		<li>가슴 견인을 사용 하 여 흉 강 노출.</li>
		<li>Monopolar 전기로 유착을 내려.</li>
		<li>같은 견인을 사용 하 여, 조 수에 의해 왼쪽된 sternal 국경의 부드러운 상승으로 해 부 가슴 벽에서 왼쪽된 내부 유 방 동맥.</li>
		<li>Hemoclips와 동맥 분기를 제어 합니다.</li>
		<li>헤 파 린 4의 100-300 단위/k g으로 동물 heparinize</li>
		<li>3 분 후 분할 선단부와 동맥 이상 수 놓은. 접목에 대 한 근 위 끝을 준비 합니다.</li>
		<li>열고 심 낭을 제거 합니다. 젊은이에 적절 한 anastomotic 사이트에 도달 하는 리마의 길이 한지 확인 합니다.</li>
		<li>7-0 폴 리 프로필 렌 봉합 사 떨어져 펌프를 사용 하 여 젊은이 문 합을 리마 수행 심장 안정제, 봄 양식 클립, 그리고 적절 한 크기의 intraluminal 장치 기술.</li>
		<li>왼쪽된 측면 가슴, externalized 고 15-30 분의 흉에서 공기를 제거 하는 진공에 갈비뼈 사이 가슴 튜브를 놓습니다.</li>
		<li>#5 폴 리 에스테 봉합 숫자 8 패턴을 사용 하 여 흉 골을 대략적인.</li>
		<li>근육, 피하, 피부 레이어 절전 수술에 설명 된 대로 평소 패션에 닫습니다. 가슴 구멍에서 잔류 공기를 제거 하 고 절 개 한 피부 봉합을 닫습니다 하 Valsalva 기동을 수행 하는 동안 가슴 튜브를 제거 합니다.</li>
		<li>Sternal 절 개를 보호 하기 위해 피부를 통해 피부 접착제를 적용 합니다. 부드럽게 대 퇴 카 테 터를 제거 하 고 동맥 지갑 문자열 패턴에 7-0 폴 리 프로필 렌 봉합 사를 사용 하 여 복구 합니다. Subcuticular 패턴에서 2-0 polyglactin 봉합 사를 사용 하 여 피부를 닫습니다.</li>
		<li>프로시저의 끝에 절 개의 길이 따라 여러 사이트에서 피하 1 mg/kg bupivacaine의 총계 복용량을 관리 합니다.</li>
		<li>관리 meloxicam 0.2 mg/kg 피하 복구 영역을 전송 하기 전에.</li>
		<li>최대 절전 모드 절차에 수술 프로토콜을 따릅니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Mozaffarian, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+Disease+and+Stroke+Statistics-2016+Update+A+Report+From+the+American+Heart+Association.">Heart Disease and Stroke Statistics-2016 Update A Report From the American Heart Association.</a> Circulation. 133 (4), 350 (2015).</li><li>Di Carli, M. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Value+of+metabolic+imaging+with+positron+emission+tomography+for+evaluating+prognosis+in+patients+with+coronary+artery+disease+and+left+ventricular+dysfunction.">Value of metabolic imaging with positron emission tomography for evaluating prognosis in patients with coronary artery disease and left ventricular dysfunction.</a> Am J Cardiol. 73 (8), 527-533 (1994).</li><li>Gerber, B. 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Impact of pre-operative myocardial function, perfusion, and metabolism.</a> Eur Heart J. 21 (2), 125-136 (2000).</li></ol>

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여기, 우리가 흠의 우리의 돼지 모델 정확 하 게 모방 단일 혈관 질환 환자의 임상 경험 및 좌 심 실 기능을 보존 보여줍니다. Revascularization, 이전 단일 선박 HM와 동물 전시 방출 분수에 의해 측정으로 글로벌 함수에 최소한의 손상 하지만 지역 벽 두껍게 있는 쇼 뜻깊은 감소. Revascularization, 다음 복구의 하나 또는 3 개월에 CMR 이미징 저용량 dobutamine 스트레스 테스트와 수축 예비 견적에 의해 지적으...

관상 동맥 심장 질환 (CHD) 미국 1 에서 약된 15.5 백만 명에 영향을 하 고 세계적으로 죽음의 주요 원인 중 하나입니다. CHD와 관련 된 사망률은 최근 몇 년 동안에서 추락 했습니다, 발병 률과 환자와 의료 시스템에 대 한 부담이 남아 있다 높은 1. 심한 CAD의 기본 처리 revascularization 생존을 향상 하 고 협 심 증2,,34감소 이다. 그러나, 심장 기능의 자주 우울 하 고, 특히 워크 로드 증가에서 남아 있고 심장 마비5,6를 진행 할 수 있습니다. 만성 허 혈에 대 한 관상 동맥 바이패스 수술 (관상)의 임상 시험 생존에 증상 개선만 8-10 7,8의 방출 분수 쇼만 겸손 한 개선을 보여 줍니다. 우리의 혁신적이 고 잘 특징이 돼지 모델 만성 심근 허 혈의 진보적인 혈관 협 착 증으로 임상 CAD의 모델이입니다. 우리 혈액 흐름 9점진적 감소에서 유래 하는 감소 된 심근 수축 설명 했다. 심근 경색 되지 않으며,이 시나리오에서 가능한 남아 있을 수 있습니다. 결과 변수도 적시 revascularization 복구 가능 하다. 만성 가능한 남아 있는 허 혈 성 심근을 감소 혈액 흐름에 의해 특징 및 기능 유지 수축 예비와 나머지에 HM 불렸다 하며 치료 관상. HM의 revascularization 수축 기능을 복원 해야 합니다, 비록 실험 및 임상 관찰 복구는 불완전 한8,10보여 줍니다.
역 기능 심근의 존재에 감소 지역 혈액 흐름11아직 흠의 가능한 존재에 의해 특징입니다. 도 불구 하 고 장애인 수축와 휴식, HM 신진 대사 활동 inotropic 자극12아래 기능 및 대사 준비를 보여 주기 위해 수 있다. 흠 cad, 환자의 대다수에 의심 되 고 질병의 광범위 한 스펙트럼을 포함. 이 프로토콜에서 임상 시나리오를 모방 하는 젊은이 동맥 왼쪽된 내부 유 방 동맥 (리마)와 무시 하는 HM의 우리의 설립된 돼지 모델을 설명 합니다. 돼지 epicardial 브리징 민간인을 필요가 없습니다으로 다른 큰 동물에 심장 질환의 훌륭한 모델을 제공 합니다. 13지역 국 소 빈 혈 결과를 혼자 젊은이의 협 수 있습니다.
여기는 젊은이 동맥에서 단일 혈관 협 착 증을 작성 하 여 유도 하는 돼지에서 동 면 심근의 수술 방법에 설명 합니다. 일단 만성 허 혈 설립 되었습니다 (8 주 후 젊은이 압축의 임 플 란 트), 우리 우리의 돼지 모델에서 HM에 대 한 임상 치료를 재현 하는 방법에 설명: 떨어져 펌프 관상동맥 바이패스 접목. 이러한 수술 방법은 뿐만 아니라 만성 심장 허 혈의 임상 관련 모델을 연구 또한 하 심장 허 혈에 대 한 잠재적인 대체 또는 대체 요법을 테스트 뿐만 아니라 심장 허 혈에 바이패스 수술의 효과 조사 사용할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>Bair Hugger</td><td>3M</td><td>Model 505</td><td>Patient Warming system</td></tr><tr><td>SR Buprenorphine 10 mg/mL</td><td>Abbott Labs</td><td>NADA 141-434</td><td>Post operative Analgesic</td></tr><tr><td>Surgical Spring Clip</td><td>Applied Medical</td><td>A1801</td><td>Clamp end of LIMA after takedown</td></tr><tr><td>Arterial Line Kit</td><td>Arrow</td><td>ASK-04510-HF</td><td>Femoral catheter for blood pressure monitoring</td></tr><tr><td>1000mL 0.9% Sodium chloride</td><td>Baxter</td><td>2B1324X</td><td>IV replacement fluid</td></tr><tr><td>250 mL 0.9% saline</td><td>Baxter</td><td>&amp;nbsp;UE1322D</td><td>Replacement IV Fluid&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>500mL 0.9% Sodium chloride</td><td>Baxter</td><td>2B1323Q</td><td>Drug delivery, Provide mist for Blower Mister</td></tr><tr><td>Flo-thru 1.0</td><td>Baxter</td><td>FT-12100</td><td>used to anastomos LIMA to L</td></tr><tr><td>Flo-thru 1.25</td><td>Baxter</td><td>FT-12125</td><td></td></tr><tr><td>Flo-thru 1.5</td><td>Baxter</td><td>FT-12150</td><td></td></tr><tr><td>Flo-thru 2.0</td><td>Baxter</td><td>FT-12200</td><td></td></tr><tr><td>Cloroprep</td><td>Becton Dickenson</td><td>260815</td><td>Surgical skin prep</td></tr><tr><td>Meloxicam</td><td>Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc.</td><td>0010-6013-01</td><td>NSAID for analgesia</td></tr><tr><td>Hypafix</td><td>BSN Medical</td><td>4210</td><td>Secure wound dressing and IV catheters</td></tr><tr><td>IV Tubing for Blower Mister</td><td>Carefusion</td><td>42493E</td><td>Adapts to IV Fluids for Blower/Mister</td></tr><tr><td>Bovie Cautery hand piece&amp;nbsp;</td><td>Covidien</td><td>E2516</td><td>Hemostasis&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Chest Tube</td><td>Covidien</td><td>8888561043</td><td>Evacuates air from chest cavity&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Monopolar Cautery&amp;nbsp;</td><td>Covidien</td><td>Valleylab FT10</td><td>Hemostasis&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Telpha pad</td><td>Covidien</td><td>2132</td><td>Sterile wound dressing</td></tr><tr><td>4-0 Tevdek II Strands</td><td>Deknatel</td><td>7-922</td><td>Suture to secure constrictor around LAD</td></tr><tr><td>Propofol</td><td>Diprivan</td><td>269-29</td><td>Induction agent</td></tr><tr><td>&amp;nbsp;long blade for laryngoscope&amp;nbsp;</td><td>DRE</td><td>12521</td><td>Allows for visualization of trachea for intubation</td></tr><tr><td>ECG Pads</td><td>DRE</td><td>1496</td><td>Monitor heart rhythm</td></tr><tr><td>laryngoscope&amp;nbsp;</td><td>DRE</td><td>12515</td><td></td></tr><tr><td>Anesthesia Machine + ventilator</td><td>DRE Drager- Fabius Tiro</td><td>DRE0603FT</td><td>Deliver Oxygen and inhalant to patient</td></tr><tr><td>&amp;nbsp;5 Ethibond&amp;nbsp;</td><td>Ethicon</td><td>MG46G</td><td>Suture</td></tr><tr><td>0 Vicryl</td><td>Ethicon</td><td>J208H</td><td>Suture</td></tr><tr><td>2-0 Vicryl</td><td>Ethicon</td><td>J317H</td><td>Suture</td></tr><tr><td>3-0 Vicryl</td><td>Ethicon</td><td>VCP824G</td><td>Suture</td></tr><tr><td>7-0 Prolene</td><td>Ethicon</td><td>M8702</td><td>Suture</td></tr><tr><td>Dermabond</td><td>Ethicon</td><td>DNX12</td><td>Skin adhesive</td></tr><tr><td>Ligaclips</td><td>Ethicon</td><td>MSC20</td><td>Surgical Staples for LIMA takedown</td></tr><tr><td>Sterile Saline 20 mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>20T700220</td><td>Flush for IV catheters</td></tr><tr><td>Telazol 100 mg/mL</td><td>Fort Dodge</td><td>01L60030</td><td>Pre operative Sedative</td></tr><tr><td>Triple Antibiotic Ointment</td><td>Johnson &amp;amp; Johnson</td><td>23734</td><td>Topical over wound</td></tr><tr><td>6.0 mm ID endotracheal tube</td><td>Mallinckrodt</td><td>86049</td><td>Establish airway for Revasc,MRI and Termination</td></tr><tr><td>1&quot; medical tape</td><td>Medline</td><td>MMM15271Z</td><td>Secure wound dressing and IV catheters</td></tr><tr><td>4.0 mm ID endotracheal tube</td><td>Medline</td><td>DYND43040</td><td>Establish airway for Hibernation</td></tr><tr><td>4.5 mm ID endotracheal tube</td><td>Medline</td><td>DYND43045</td><td>Establish airway for Hibernation</td></tr><tr><td>5.0 mm ID endotracheal tube</td><td>Medline</td><td>DYND43050</td><td>Establish airway for Hibernation</td></tr><tr><td>6.5 mm ID endotracheal tube</td><td>Medline</td><td>DYND43065</td><td>Establish airway for Revasc,MRI and Termination</td></tr><tr><td>7.0 mm ID endotracheal tube</td><td>Medline</td><td>DYND43070</td><td>Establish airway for Revasc,MRI and Termination</td></tr><tr><td>Bair Hugger Blanket -&amp;nbsp; Large size, underbody</td><td>Medline</td><td>AUG55501</td><td>Patient Warming system</td></tr><tr><td>Basic pack</td><td>Medline</td><td>DYNJP1000</td><td>Sterile drapes and table cover</td></tr><tr><td>Bone Wax</td><td>Medline</td><td>ETHW31G</td><td>Hemostasis of cut bone</td></tr><tr><td>Suction&amp;nbsp; tubing</td><td>Medline</td><td>DYND50223</td><td></td></tr><tr><td>Suction Container&amp;nbsp;</td><td>Medline</td><td>DYNDCL03000</td><td></td></tr><tr><td>1 mL Syringe</td><td>Medtronic/Covidien</td><td>1188100777</td><td>Administer injectable agents</td></tr><tr><td>12 mL Syringe</td><td>Medtronic/Covidien</td><td>8881512878</td><td>Administer injectable agents</td></tr><tr><td>20 mL Syringe</td><td>Medtronic/Covidien</td><td>8881520657</td><td>Administer injectable agents</td></tr><tr><td>3 mL Syinge</td><td>Medtronic/Covidien</td><td>1180300555</td><td>Administer injectable agents</td></tr><tr><td>6&amp;nbsp; mL Syringe</td><td>Medtronic/Covidien</td><td>1180600777</td><td>Administer injectable agents</td></tr><tr><td>60 mL Syringe</td><td>Medtronic/Covidien</td><td>8881560125</td><td>Administer injectable agents</td></tr><tr><td>Blower Mister Kit</td><td>Medtronic/Covidien</td><td>22120</td><td>Clears surgical field for vessel anastomosis</td></tr><tr><td>Roncuronium</td><td>Mylan</td><td>67457-228-05</td><td>Neuromuscular blocking agent</td></tr><tr><td># 40 clipper blade</td><td>Oster</td><td>078919-016-701</td><td>Remove hair from surgery sites</td></tr><tr><td>Hair Clipper</td><td>Oster</td><td>078566-011-002</td><td>Remove hair from surgery sites</td></tr><tr><td>Bupivicaine</td><td>Pfizer</td><td>00409-1161-01</td><td>Local Anesthetic</td></tr><tr><td>Cephazolin</td><td>Pfizer</td><td>00409-0805-01</td><td>Antibiotic</td></tr><tr><td>Heparin&amp;nbsp;</td><td>Pfizer</td><td>&amp;nbsp;0409-2720-03</td><td>anticoaggulant</td></tr><tr><td>Lidocaine 2%</td><td>Pfizer</td><td>00409-4277-01</td><td>Local Anesthetic/ antiarrthymic</td></tr><tr><td>Succinylcholine 20 mg/mL</td><td>Pfizer</td><td>00409-6629-02</td><td>Neuromuscular blocking agent</td></tr><tr><td>Anesthesia Monitor</td><td>Phillips&amp;nbsp; Intellivue&amp;nbsp;</td><td>MP70&amp;nbsp;</td><td>Supports ventilation with inhalant</td></tr><tr><td>Artificial Tears</td><td>Rugby</td><td>0536-1086-91</td><td>Lubricate eyes to prevent corneal drying</td></tr><tr><td>Buprenorphine 0.3 mg/mL</td><td>Sigma Aldrich</td><td>B9275</td><td>Pre operative Analgesic for survivial procedures</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Sigma Aldrich</td><td>CDS019936</td><td>General Anesthestic- Inhalant</td></tr><tr><td>36&amp;rdquo; Pressure monitoring tubing</td><td>Smith&amp;rsquo;s Medical</td><td>MX563</td><td>Connect art. Line&amp;nbsp; to transducer</td></tr><tr><td>48&amp;rdquo; Pressure monitoring tubing</td><td>Smith&amp;rsquo;s Medical</td><td>MX564</td><td>Connect art. Line&amp;nbsp; to transducer</td></tr><tr><td>Jelco 18 ga IV catheter&amp;nbsp;</td><td>Smiths medical</td><td>4054</td><td>IV access in Revasc, MRI and Term</td></tr><tr><td>Jelco 20 ga IV catheter</td><td>Smiths medical</td><td>4059</td><td>IV access in the MRI</td></tr><tr><td>Jelco 22 ga&amp;nbsp; IV catheter</td><td>Smiths medical</td><td>4050</td><td>IV access in Hibernation Procedure</td></tr><tr><td>OPVAC Synergy II</td><td>Terumo Cardiovascular System</td><td>401-230</td><td>Heart positioner and Stabilizer</td></tr><tr><td>Sternal Saw/ Necropsy Saw</td><td>Thermo Fisher</td><td>812822</td><td>Used to open chest cavity</td></tr><tr><td>Delrin Constrictor</td><td>U of MN</td><td>Custom made</td><td>Creates stenosis of LAD</td></tr><tr><td>Oxygen Tank E cylinder</td><td>various</td><td>various</td><td>Used for Blower Mister if anesthesia machine doesn&#039;t have auxiliary flow meter</td></tr><tr><td>Pressure Transducer</td><td>various</td><td>Must adapt to anesthesia monitor</td><td>Monitor direct arterial pressures</td></tr><tr><td>Xylazine 100 mg/mL</td><td>Vedco</td><td>468RX</td><td>Pre operative Sedative/ analgesic</td></tr></tbody></table>

surgical swine model of chronic cardiac ischemia treated by off-pump coronary artery bypass graft surgery

만성 심장 허 혈, 심장 기능의 손상 하지만 경색, 귀착되 지 않는다 동 면 심근 (HM) 이라고 불린다. 관상 동맥 질환 (CAD) 환자의 큰 임상 하위 집합 흠, 일으키는 장애인된 기능 이외에 부정맥 및 미래 심장 사건에 대 한 높은 위험에 그들을 두고 있다. 이 조건에 대 한 표준 치료 revascularization, 하지만이 불완전 한 치료 되도록 표시 되었습니다. 전 임상 심장 연구의 대부분의 심장 허 혈, 경색 모델에 크게 못하는 만성 허 혈 환자의이 부분 집합을 떠날 초점을 맞추고. 돼지는 인간의 심장 질환에 대 한 이상적인 변환 모델 연구에이 격차를 해결 하기 위해 우리 돼지, 동 면 심근의 특징이 잘 매우 재현 모델을 개발 했습니다. 이 독특한 질병 모델을 만들 뿐만 아니라 우리 돼지에서 관상 동맥 우회 수술의 임상 관련 치료 모델을 최적화 했습니다. 정확 하 게 심장 질환에 바이패스 수술의 효과 연구 뿐 아니라 추가 또는 대체 요법을 조사할 수 있습니다. 이 모델은 수술 위 젊은 돼지에 왼쪽된 앞쪽 내림차순 (젊은이) 동맥에 이식 하 여 단일 혈관 협 착 증을 유도 한다. 돼지 성장 함에 따라 위는 점진적인 협 착 증, 장애인 지역 기능, 만성 허 혈의 결과로 하지만 조직의 생존을 유지 만듭니다. 동 면 심근 표현 형의 설립에 따라 우리 병원에서 환자에 대 한 황금 표준 치료를 흉내 낸 허 혈 성 지역 revascularize를 떨어져 펌프 관상동맥 바이패스 접목 수술을 수행 합니다.

초기 절전 수술 다음 70% 이상의 협 착 증 같은 혈관 또는 심장 MRI (그림 1A) 임상 이미징 기법에 의해 관찰 될 수 있어야 합니다. 젊은이 위 수술 적용 다음 8 주 에코 또는 심장 MRI에 의해 지역 함수 분석 증가 작업 (그림 2)에서 감소 된 기능을 보여준다. 이 dobutamine (5 mg/kg/min), 함께 마음을 자극 하 고 완곡 한 긴장과 ?...

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Surgical Swine Model of Chronic Cardiac Ischemia Treated by Off-Pump Coronary Artery Bypass Graft Surgery

이 프로토콜은 지역 이상에서 발생 하지만 이라고 동 면 심근 경색을 생성 하지 않는 만성, 단일 혈관 허 혈의 수술 큰 동물 모델을 선물 한다. 만성 허 혈의 설립, 다음 동물 revascularize 허 혈 성 조직에 펌프에서 리마 젊은이 관상 동맥 바이패스 이식 수술으로 처리 됩니다.

떨어져 펌프 관상동맥 바이패스 접목 수술에 의해 치료 만성 심장 허 혈의 수술 돼지 모델

Chronic cardiac ischemia that impairs cardiac function, but does not result in infarct, is termed hibernating myocardium (HM). A large clinical subset of ...

surgical-swine-model-chronic-cardiac-ischemia-treated-off-pump

Research

JoVE Journal

Medicine

9.4K 조회수.  University of Minnesota. 이 프로토콜은 지역 이상에서 발생 하지만 이라고 동 면 심근 경색을 생성 하지 않는 만성, 단일 혈관 허 혈의 수술 큰 동물 모델을 선물 한다. 만성 허 혈의 설립, 다음 동물 revascularize 허 혈 성 조직에 펌프에서 리마 젊은이 관상 동맥 바이패스 이식 수술으로 처리 됩니다.

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A Swine Model of Neonatal Asphyxia

Annually more than 1 million neonates die worldwide as related to asphyxia. Asphyxiated neonates commonly have multi-organ failure including hypotension, perfusion deficit, hypoxic-ischemic encephalopathy, pulmonary hypertension, vasculopathic enterocolitis, renal failure and thrombo-embolic complications. Animal models are developed to help us understand the patho-physiology and pharmacology of neonatal asphyxia. In comparison to rodents and newborn lambs, the newborn piglet has been proven to be a valuable model. The newborn piglet has several advantages including similar development as that of 36-38 weeks human fetus with comparable body systems, large body size (&tilde;1.5-2 kg at birth) that allows the instrumentation and monitoring of the animal and controls the confounding variables of hypoxia and hemodynamic derangements.
We here describe an experimental protocol to simulate neonatal asphyxia and allow us to examine the systemic and regional hemodynamic changes during the asphyxiating and reoxygenation process as well as the respective effects of interventions. Further, the model has the advantage of studying multi-organ failure or dysfunction simultaneously and the interaction with various body systems. The experimental model is a non-survival procedure that involves the surgical instrumentation of newborn piglets (1-3 day-old and 1.5-2.5 kg weight, mixed breed) to allow the establishment of mechanical ventilation, vascular (arterial and central venous) access and the placement of catheters and flow probes (Transonic Inc.) for the continuously monitoring of intra-vascular pressure and blood flow across different arteries including main pulmonary, common carotid, superior mesenteric and left renal arteries. Using these surgically instrumented piglets, after stabilization for 30-60 minutes as defined by Z&lt;10% variation in hemodynamic parameters and normal blood gases, we commence an experimental protocol of severe hypoxemia which is induced via normocapnic alveolar hypoxia. The piglet is ventilated with 10-15% oxygen by increasing the inhaled concentration of nitrogen gas for 2h, aiming for arterial oxygen saturations of 30-40%. This degree of hypoxemia will produce clinical asphyxia with severe metabolic acidosis, systemic hypotension and cardiogenic shock with hypoperfusion to vital organs. The hypoxia is followed by reoxygenation with 100% oxygen for 0.5h and then 21% oxygen for 3.5h. Pharmacologic interventions can be introduced in due course and their effects investigated in a blinded, block-randomized fashion.

Large animal models have good translational values in the examination of physiology and pharmacology of neonatal asphyxia. Using newborn piglets, we develop an experimental protocol to simulate neonatal asphyxia which has advantages of studying the systemic and regional hemodynamics, oxygen transport with biochemical and pathologic pathways and correlations.

신생아 질식의 돼지 모델

Annually more than 1 million neonates die worldwide as related to asphyxia. Asphyxiated neonates commonly have multi-organ failure including hypotension, ...

연구

의학

Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One important prerequisite is a good understanding of all safety and efficacy aspects obtained in a large animal model that validly reflect the human scenario of myocardial infarction (MI). Pigs are widely used in this regard since their cardiac size, hemodynamics, and coronary anatomy are close to that of humans. Here, we present an effective protocol for using the porcine MI model using a closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. This approach is based on 90 min of myocardial ischemia, inducing large left ventricle infarction of the anterior, septal and inferoseptal walls. Furthermore, we present protocols for various measures of outcome that provide a wide range of information on the heart, such as cardiac systolic and diastolic function, hemodynamics, coronary flow velocity, microvascular resistance, and infarct size. This protocol can be easily tailored to meet study specific requirements for the validation of novel cardioregenerative biologics at different stages (i.e. directly after the acute ischemic insult, in the subacute setting or even in the chronic MI once scar formation has been completed). This model therefore provides a useful translational tool to study MI, subsequent adverse remodeling, and the potential of novel cardioregenerative agents.

This protocol describes the porcine myocardial infarction (MI) model using a 90 min closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. Furthermore, the protocol for several outcome parameters, such as cardiac function, hemodynamics, microvascular resistance, and infarct size, are also presented.

돼지의 심근 경색 및 기능적 결과의 평가

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One ...

Implantation of Inferior Vena Cava Interposition Graft in Mouse Model

Biodegradable scaffolds seeded with bone marrow mononuclear cells (BMCs) are often used for reconstructive surgery to treat congenital cardiac anomalies. The long-term clinical results showed excellent patency rates, however, with significant incidence of stenosis. To investigate the cellular and molecular mechanisms of vascular neotissue formation and prevent stenosis development in tissue engineered vascular grafts (TEVGs), we developed a mouse model of the graft with approximately 1 mm internal diameter. First, the TEVGs were assembled from biodegradable tubular scaffolds fabricated from a polyglycolic acid nonwoven felt mesh coated with &#949;-caprolactone and L-lactide copolymer. The scaffolds were then placed in a lyophilizer, vacuumed for 24 hr, and stored in a desiccator until cell seeding. Second, bone marrow was collected from donor mice and mononuclear cells were isolated by density gradient centrifugation. Third, approximately one million cells were seeded on a scaffold and incubated O/N. Finally, the seeded scaffolds were then implanted as infrarenal vena cava interposition grafts in C57BL/6 mice. The implanted grafts demonstrated excellent patency (&#62;90%) without evidence of thromboembolic complications or aneurysmal formation. This murine model will aid us in understanding and quantifying the cellular and molecular mechanisms of neotissue formation in the TEVG.

To improve our knowledge of cellular and molecular neotissue formation, a murine model of the TEVG was recently developed. The grafts were implanted as infrarenal vena cava interposition grafts in C57BL/6 mice. This model achieves similar results to those achieved in our clinical investigation, but over a far shortened time-course.

마우스 모델에서 하대 정맥 끼어 이식의 주입

Biodegradable scaffolds seeded with bone marrow mononuclear cells (BMCs) are often used for reconstructive surgery to treat congenital cardiac anomalies. ...

Evaluation of a Novel Laser-assisted Coronary Anastomotic Connector - the Trinity Clip - in a Porcine Off-pump Bypass Model

To simplify and facilitate beating heart (i.e., off-pump), minimally invasive coronary artery bypass surgery, a new coronary anastomotic connector, the Trinity Clip, is developed based on the excimer laser-assisted nonocclusive anastomosis technique. The Trinity Clip connector enables simplified, sutureless, and nonocclusive connection of the graft to the coronary artery, and an excimer laser catheter laser-punches the opening of the anastomosis. Consequently, owing to the complete nonocclusive anastomosis construction, coronary conditioning (i.e., occluding or shunting) is not necessary, in contrast to the conventional anastomotic technique, hence simplifying the off-pump bypass procedure. Prior to clinical application in coronary artery bypass grafting, the safety and quality of this novel connector will be evaluated in a long-term experimental porcine off-pump coronary artery bypass (OPCAB) study. In this paper, we describe how to evaluate the coronary anastomosis in the porcine OPCAB model using various techniques to assess its quality. Representative results are summarized and visually demonstrated.

This paper describes a novel nonocclusive coronary anastomotic connector in a porcine off-pump coronary artery bypass (OPCAB) model. This easy-to-use coronary connector has intrinsic potential to facilitate minimally invasive OPCAB surgery.

삼위 일체 클립 - - 소설 레이저를 이용한 관상 동맥 문합 커넥터의 평가 돼지 오프 펌프 바이 패스 모델에

To simplify and facilitate beating heart (i.e., off-pump), minimally invasive coronary artery bypass surgery, a new coronary anastomotic connector, the ...

A Chronic Cardiac Ischemia Model in Swine Using an Ameroid Constrictor

Cardiovascular disease remains the number one cause of mortality in the United States. There are numerous approaches to treating these diseases, but regardless of the approach, an in vivo model is needed to test each treatment. The pig is one of the most used large animal models for cardiovascular disease. Its heart is very similar in anatomy and function to that of a human. The ameroid placement technique creates an ischemic area of the heart, which has many useful applications in studying myocardial infarction. This model has been used for surgical research, pharmaceutical studies, imaging techniques, and cell therapies.
There are several ways of inducing an ischemic area in the heart. Each has its advantages and disadvantages, but the placement of an ameroid constrictor remains the most widely used technique. The main advantages to using the ameroid are its prevalence in existing research, its availability in various sizes to accommodate the anatomy and size of the vessel to be constricted, the surgery is a relatively simple procedure, and the post-operative monitoring is minimal, since there are no external devices to maintain. This paper provides a detailed overview of the proper technique for the placement of the ameroid constrictor.

The purpose of this protocol is to demonstrate the placement of a delayed constricting device (an ameroid constrictor) around a coronary artery in a swine model. This device creates an ischemic area of the heart that is useful for studying new diagnostic imaging techniques and new methods of treatment.

Ameroid 압축을 사용 하 여 돼지에서 만성 심장 허 혈 모델

Cardiovascular disease remains the number one cause of mortality in the United States. There are numerous approaches to treating these diseases, but ...

A Pre-Clinical Porcine Model of Orthotopic Heart Transplantation

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart failure. Multiple small-animal models of heart transplantation have been used to study the acute and long-term effects of novel therapies. However, few are tested and demonstrated success in clinical trials. It is of critical importance to evaluate new therapies in a clinically relevant large-animal model for efficient and reliable translation of basic studies&#39;&#160;findings. Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and previously used to investigate novel cardioprotective strategies. This procedure focuses on acute ischemia-reperfusion injury and is a reliable method to investigate novel interventions which have been tested and validated in smaller experimental models, such as the murine model. We demonstrate its usefulness in assessing cardiac performance during the early post-transplantation period and other potential possibilities enabled by the model.

Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and utilized to investigate novel cardioprotective strategies.

정형외 심장 이식의 전 임상 돼지 모델

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart ...

Establishment and Evaluation of a Porcine Vein Graft Disease Model

Venous graft disease (VGD) is the leading cause of coronary artery bypass graft (CABG) failure. Large animal models of CABG-VGD are needed for the investigation of disease mechanisms and the development of therapeutic strategies. 
To perform the surgery, we enter the cardiac chamber through the third intercostal space and carefully dissect the internal mammary vein and immerse it in normal saline. The right main coronary artery is then treated for ischemia. The target vessel is incised, a shunt plug is placed, and the distal end of the graft vein is anastomosed. The ascending aorta is partially blocked, and the proximal end of the graft vein is anastomosed after perforation. The graft vein is checked for patency, and the proximal right coronary artery is ligated. 
CABG surgery is performed in minipigs to harvest the left internal mammary vein for its use as a vascular graft. Serum biochemical tests are used to evaluate the physiological status of the animals after surgery. Ultrasound examination shows that the proximal, middle, and distal end of the graft vessel are unobstructed. In the surgical model, turbulent blood flow in the graft is observed upon histological examination after the CABG surgery, and venous graft stenosis associated with intimal hyperplasia is observed in the graft. The study here provides detailed surgical procedures for the establishment of a repeatable CABG-induced VGD model.

In this protocol, novel pig vein bypass grafting was performed through a small incision in the left chest wall without cardiopulmonary bypass. A postoperative pathology study was done, which showed intimal thickening.

돼지 정맥 이식 질환 모델의 수립 및 평가

Venous graft disease (VGD) is the leading cause of coronary artery bypass graft (CABG) failure. Large animal models of CABG-VGD are needed for the ...

Extracorporeal Cardiopulmonary Resuscitation in Animal Model After Cardiac Arrest

Pediatric Animal Model of Extracorporeal Cardiopulmonary Resuscitation After Prolonged Circulatory Arrest

Congenital heart disease (CHD) is the most prevalent congenital malformation, with about one million births impacted worldwide per year. Comprehensive investigation of this disease requires appropriate and validated animal models. Piglets are commonly used for translational research due to their analogous anatomy and physiology. This work aimed to describe and validate a neonatal piglet model of cardiopulmonary bypass (CPB) with circulatory and cardiac arrest (CA) as a tool for studying severe brain damage and other complications of cardiac surgery. In addition to including a list of materials, this work provides a roadmap for other investigators to plan and execute this protocol. After experienced practitioners performed several trials, the representative results of the model demonstrated a 92% success rate, with failures attributed to small piglet size and variant vessel anatomy. Furthermore, the model allowed practitioners to select from a wide variety of experimental conditions, including varying times in CA, temperature alterations, and pharmacologic interventions. In summary, this method uses materials readily available in most hospital settings, is reliable and reproducible, and can be widely employed to enhance translational research in children undergoing heart surgery.

저자 스포트라이트: 신생아 자돈 모델을 사용한 소아 심장 수술 시뮬레이션

This protocol describes a neonatal porcine model of cardiopulmonary bypass (CPB), with circulatory and cardiac arrest as a tool for studying severe brain damage and other complications secondary to CPB.

장기간의 순환 정지 후 체외 심폐 소생술의 소아 동물 모델

Congenital heart disease (CHD) is the most prevalent congenital malformation, with about one million births impacted worldwide per year. Comprehensive ...

떨어져 펌프 관상동맥 바이패스 접목 수술에 의해 치료 만성 심장 허 혈의 수술 돼지 모델

요약

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Ameroid 압축을 사용 하 여 돼지에서 만성 심장 허 혈 모델

정형외 심장 이식의 전 임상 돼지 모델

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장기간의 순환 정지 후 체외 심폐 소생술의 소아 동물 모델

장기간의 순환 정지 후 체외 심폐 소생술의 소아 동물 모델

장기간의 순환 정지 후 체외 심폐 소생술의 소아 동물 모델