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Method Article
Nós descrevemos um procedimento para a desagregação de câncer colorretal (CRC) para produzir células viáveis única, que são, então, capturado em microarrays de anticorpos personalizado reconhecer antígenos de superfície (CRC DotScan microarray). Sub-populações de células vinculada ao microarray pode ser perfilado por multiplexação de fluorescência usando anticorpos monoclonais marcados com corantes fluorescentes.
O prognóstico atual e classificação do CRC conta com encenação de sistemas que integram achados histopatológicos e clínicos. No entanto, na maioria dos casos CRC, disfunção das células é o resultado de numerosas mutações que modificam a expressão da proteína e pós-translacionais modificação 1.
Um número de antígenos de superfície celular, incluindo cluster de diferenciação (CD) de antígenos, foram identificados como prognósticos ou potenciais biomarcadores metastático em CRC. Estes antígenos fazer biomarcadores ideal como sua expressão muitas vezes muda com a progressão do tumor ou interações com outros tipos de células, como linfócitos tumor infiltrantes (TILs) e tumor associado macrófagos (TAMs).
O uso da imuno-histoquímica (IHQ) para o câncer de sub-classificação e prognóstico é bem estabelecida para alguns tipos de tumor 2,3. No entanto, não 'marcador' single mostrou significado prognóstico maior do que clínico-patológica de teste ou ganhou ampla aceitação para uso em relatórios de patologia de rotina de todos os casos CRC.
Uma abordagem mais recente para a estratificação prognóstica de fenótipos da doença depende de perfis de proteínas de superfície usando vários "marcadores". Enquanto perfil de expressão de tumores através de técnicas proteômicas como iTRAQ é uma poderosa ferramenta para a descoberta de biomarkers4, não é ideal para uso rotineiro nos laboratórios de diagnóstico e não pode distinguir diferentes tipos de células em uma população mista. Além disso, grandes quantidades de tecido tumoral são necessários para a caracterização de glicoproteínas da membrana plasmática purificada por estes métodos.
Neste vídeo nós descrevemos um método simples para criar perfis de superfície proteoma de células viáveis a partir de amostras desagregadas CRC usando um anticorpo DotScan microarray CRC. O microarray 122-anticorpo consiste em uma região de anticorpos 82-standard reconhecendo uma série de marcadores de linhagem específica de leucócitos, moléculas de adesão, receptores e marcadores de inflamação e resposta imune 5, bem como uma região satélite para a detecção de 40 marcadores potencialmente prognóstico para CRC . Células são capturadas apenas em anticorpos para os quais eles expressam o antígeno correspondente. A densidade de células por ponto, determinado pelo escaneamento óptico, reflete a proporção de células que expressam esse antígeno, o nível de expressão do antígeno e afinidade do anticorpo 6.
CRC de tecido ou mucosa intestinal normal, scans óptica refletem o imunofenótipo de populações mistas de células. Multiplexação de fluorescência pode então ser usada para perfil selecionado sub-populações de células de interesse capturado no array. Por exemplo, Alexa molécula de adesão 647-anti-células epiteliais (EpCAM; CD326), é um antígeno de diferenciação pan-epiteliais que foi usado para detectar células CRC e também células epiteliais da mucosa intestinal normal, enquanto Ficoeritrina-anti-CD3, foi usado para detectar infiltração de células T-7. O CRC DotScan microarray deve ser o protótipo de uma alternativa de diagnóstico para o sistema de estadiamento baseado anatomicamente CRC.
O fluxo de trabalho figura 1. Para a preparação de uma suspensão de células vivas a partir de uma amostra cirúrgica do CRC.
1. Desagregação amostra clínica
Todas as amostras foram coletadas do Príncipe Real Alfred Hospital (Camperdown, NSW, Austrália) e Hospital Repatriação Concord (Concord West, NSW, Austrália) com o consentimento informado nos termos do Protocolo n º X08-164.
2. Preparação de amostras para a captura de células
3. Anticorpo de captura de células microarray
4. Fluorescência de multiplexação
5. Resultados representativos:
Os resultados do microarray DotScan deve mostrar padrões consistentes de células de ligação entre matrizes duplicado. Forte alinhamento de pontos de ligação (CD44/CD29) permite uma grade para ser colocado sobre a área da matriz. A Figura 2 mostra um exemplo de captura de célula ideal e multiplexação. A Figura 3 mostra alguns problemas comuns encontrados durante a captura de células e as possíveis soluções.
Os resultados das células microarray ligação pode ser quantificado através da medição intensidades dot expressa numa escala de cinza que varia de 1 a 256. A Figura 4 mostra dados numéricos de 58 peças cirúrgicas CRC, corados com anticorpo Alexa EpCAM-647, como um heatmap com agrupamento hierárquico. Mesmo que o número de amostras é limitada, CRCs do mesmo estágio tendem a se agrupar em um mesmo grupo.
Figura 2. Padrão de ligação de celular do tumor do câncer colorretal clínicas (estadiamento clínico-patológico da Austrália, ACP estágio B1). (A) chave de anticorpos DotScan mostrando a localização de anticorpos para a metade esquerda do microarray duplicados (delineado). A seção superior contém o original 82 anticorpos do microarray DotScan leucemia. Um adicional de 40 anticorpos, correspondentes a antígenos de superfície específicos encontrados para ser sobre-regulada na literatura, foram adicionados como microarray 'satélite' a CRC. A seção inferior consiste de anticorpos controle isotipo (b) imagem óptico de células CRC ligação ao microarray. (C) imagem da fluorescência CD3 mostrando células-T. (D) EpCAM imagem de fluorescência mostrando células CRC.
Figura 3. Exemplos de maus resultados DotScan e possíveis soluções. (A) célula de baixa taxa de ligação; solução: certifique-se, pelo menos, 4x106 células viáveis sobre a matriz (b) Isotype célula de controle de ligação e ligação não específica; solução: adicionar inativado pelo calor humano AB soro a amostra antes da incubação de microarray para minimizar isotipo controle de ligação. Ocasionalmente, uma pequena quantidade de ligação não específica de células para a nitrocelulose ocorre com amostras de CRC e não afetar significativamente os resultados. (C) nitrocelulose secar durante a incubação; solução: garantir a amostra abrange a seção de nitrocelulose todo e microarray é incubada em uma superfície plana. (D) artefatos de fundo de alta; solução: garantir amicroarray é cuidadosamente lavados de incubação seguinte.
Figura 4. DotScan software de análise gerados gráficos de barras que representam as densidades de células de ligação em uma escala de cinza que varia de 1 a 256. Números no eixo referem-se aos antígenos CD. Outras abreviações são TCR, receptor de células T; κ, λ, as cadeias de imunoglobulina luz; sig, imunoglobulina de superfície; DCC, apagados em proteínas câncer colorretal; EGFR, receptor do fator de crescimento epidérmico; FAP, proteína de ativação de fibroblastos; HLA-A, B, C HLA-DR, DR antígenos leucocitários humanos e A, B, C, respectivamente; MICA, MHC classe I relacionadas à cadeia de proteína A; MMP-14, matriz metallopeptidase 14; PIGR, receptor de imunoglobulina poliméricos; TSP-1, trombospondina-1; Mabthera, humanizado anti-CD20. Clique aqui para ver a imagem ampliada .
Neste vídeo, demonstramos como o microarray de anticorpos DotScan pode ser usado em uma forma simples e semi-quantitativa para estudar perfis de antígeno de superfície para as populações de células do tecido CRC.
Obtenção de uma suspensão de células viáveis único a partir do tecido é fundamental para o sucesso do experimento, porque a energia dependente de processos (por exemplo, antígeno de nivelamento e / ou formação de pseudópodos) parecem ser necessárias para a li...
Não há conflitos de interesse declarados.
Agradecemos a equipe do Laboratório de Anatomia Patológica do Príncipe Real Alfred e Hospitais Repatriação Concord para a recolha de amostras frescas de CRC e na mucosa intestinal normal. O trabalho foi financiado por um New South Wales Instituto do Câncer Grant Programa translacional.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Nome do reagente ou equipamento | Companhia | Número de catálogo | Comentários |
---|---|---|---|
Solução de Hanks salina balanceada | Sigma-Aldrich | H6136-10X1L | Tamponado com Hepes 25 mM (Sigma # H3375) |
Airpure gabinete de segurança biológica classe II | Westinghouse | 1687-2340/612 | |
Lâminas cirúrgicas | Livingstone | 090609 | Pacote de 100 |
RPMI 1640 com 2 mM Hepes | Sigma-Aldrich | R4130-10X1L | |
Colagenase tipo 4 | Worthington | 4188 | |
Desoxirribonuclease 1 | Sigma-Aldrich | DN25-1G | |
Terumo Seringa (10 mL) | Terumo | SS L 10 | Caixa de 100 |
Filcon filtro (200 mm) | BD Biosciences | 340615 | |
Filcon filtro (50 mm) | Filcon filtro (50 mm) | Filcon filtro (50 mm) Filcon filtro (50 mm) 340603 | |
Soro fetal bovino | Gibco / Invitrogen | 10099-141 | |
Centrífuga 5810 R | Eppendorf | 7017 | |
Dimetilsulfóxido | Sigma-Aldrich | D2650 | |
Azul de tripano | Sigma-Aldrich | T8154 | |
Hemocymeter Technocolor Neubar | Hirschmann | não disponível | |
Microscópio de luz | Nikon | Nikon TMS | |
Tubos Cyrovial | Greiner bio-one | 121278 | |
Cryo contrainer congelamento | Nalgene | 5100-0001 | |
DotScan anticorpos microarray kit | Medsaic | não disponível | |
DotScan bandeja de lavar microarray | Medsaic | não disponível | |
KimWipes | Kimberly-Clark | 4103 | |
Formol 37% | Sigma-Aldrich | F1635-500ML | |
DotReaderTM | Medsaic | não disponível | |
Albumina de soro bovino | Sigma-Aldrich | A9418-10G | |
Inativado pelo calor soro AB 2% | Invitrogen | 34005100 | |
Ficoeritrina conjugada CD3 | Beckman Coulter | ET386 | |
AlexaFluor647 conjugada EpCAM | BioLegend | 324212 | |
Typhoon FLA 9000 | GE Healthcare | 28-9558-08 | 532 nm do laser, 580 BP30 emissão filtro para PE. 633 nm do laser e 670 BP30 emissão filtro para Alexa647 |
MultiExperiment Visualizador v4.4 | TM4 Microarray Software Suite | Open - software de código (Ref 11) |
The author's email has been corrected in the publication of Colorectal Cancer Cell Surface Protein Profiling Using an Antibody Microarray and Fluorescence Multiplexing. There was an error with the author, Jerry Zhou's, email. The author's email has been updated to:
j.zhou@uws.edu.au
from:
jzho7551@mail.usyd.edu.au
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