JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Эта статья представляет простой и экономического протокола для простой изоляция и очищение мезенхимальных стволовых клеток из Новой Зеландии белый кролик синовиальной жидкости.

Аннотация

Мезенхимальных стволовых клеток (МСК) являются источником основной ячейки для терапии на основе ячеек. MSCs от суставная полость синовиальной жидкости могут потенциально использоваться для хряща тканевой инженерии. MSCs с синовиальной жидкости (SF-MSCs) рассматривались в качестве перспективных кандидатов для регенерации суставного, и их потенциальных терапевтических выгод сделало их важной исследовательской темы в последнее время. SF-MSCs от колена полости Новой Зеландии белый кролик могут использоваться как оптимизированный трансляционная модель для оценки человека регенеративной медицины. С помощью на основе CD90 магнитные активированных клеток Сортировка (ПДК) технологии этот протокол успешно получает кролик SF-MSCs (rbSF-MSCs) от этой модели кролика и далее в полной мере демонстрирует MSC фенотип этих клеток, вызывая их различать в остеобласты, адипоциты и хондроцитов. Таким образом этот подход может быть применен в биологии исследования клеток и тканевой инженерии с использованием простой оборудования и процедур.

Введение

MSCs были предложены как ценный источник для регенеративной медицины, особенно для поражения хряща. MSCs, включая хондроцитов, остеобласты, адипоциты, скелетные миоциты и висцеральных стромальные клетки, широко расширить области для трансплантации стволовых клеток из-за их высокой расширение скорость и несколькими линии дифференциации потенциальных1. МСК могут быть изолированы от скелетных мышц, синовиальной оболочки, костного мозга и жировой ткани2,3,4. Выводы также выясняется наличие MSCs в синовиальной жидкости, и предыдущие исследования выявили синовиальной жидкости производные MSCs (SF-MSCs) как перспективных кандидатов для регенерации суставного5,6.

Однако исследования и доклинические экспериментов на образцах подвергаются многие этические вопросы. Вместо этого кролики были и продолжают оставаться наиболее часто используемых видов животных, чтобы продемонстрировать, что трансплантация МСК можно отремонтировать повреждение хряща. В последние годы все большее число ученых изучили кролик мезенхимальных стволовых клеток (rbMSCs) как в пробирке и в естественных условиях, как эти клетки являются похож на человека MSCs в их клеточной биологии и тканей физиологии. Аналогично rbMSCs способны придерживаться пластиковых поверхностей, отображение шпинделя фибробластов морфологии как человека MSCs. Кроме того кролик мезенхимальных образцы являются простыми и легко получить7. Кроме того наиболее важные вопросы, что rbMSCs Экспресс поверхностных маркеров, например, CD44, CD90 и CD105, и что сохраняется мульти линии дифференциация потенциал, который согласуется критерии для идентификации населения MSC определяется международным обществом клеточной терапии8,9. В частности синовиальной жидкости chondroprogenitors способны не гипертрофическая chondrogenesis когда индуцированных TGF-β1, таким образом делая их источники подходящую ячейку для фенотипически суставного хряща регенерации10,11, 12.

Однако изоляции SF-MSCs значительно отличается от других тканей, в том числе пуповины, жировой ткани, периферической крови и костного мозга. В настоящее время наиболее распространенных подходов для очистки и сортировки SF-МСК являются проточной цитометрии и иммуномагнитная шарик-сортировка на основе, хотя метод цитометрия потоков требует конкретной среды и весьма дорогостоящих инструментов13.

Эта статья представляет процедура для простой и минимально инвазивной коллекции образцов синовиальной жидкости из Новой Зеландии белого кролика. Во время процедуры rbSF-MSCs, стабильно расширенной в пробирке и затем изолированы с CD90 положительное магнитное процедуры, основанные на шарик. Наконец протокол показывает, как получить MSCs с высокой чистоты и жизнеспособности из заготовленных клеток источников.

В этом протоколе изолированные rbSF-MSCs характеризуются, основанные на их морфологии, выражение определенных маркеров, и плюрипотентности для стволовых клеток. Потока на основе цитометрии Иммунофенотипирование показывает значительное положительное проявление CD44 и CD105, тогда как выражение CD45 и CD34 является отрицательным. Наконец в пробирке assay для rbSF-MSCs демонстрирует остеогенные, адипогенном и хондрогенном дифференциации этих клеток.

протокол

Все эксперименты на животных были проведены в соответствии с руководящими принципами регионального комитета по этике, и все животные процедуры были одобрены институциональный уход животных и использование Комитета Шэньчжэнь второй народных больницы, Shenzhen University.

1. изолировать и культура rbSF-MSCs

  1. Подготовка к процедуре животных
    1. Подготовить скелетоподобное Зрелые женщины Новой Зеландии белого кролика для коллекции rbSF-MSCs. выполнить клиническое обследование кроликов за один день до анестезии и arthrocentesis процедуры.
      Примечание: физическое обследование должно включать (2,0-2,5 кг), пол (женщины) и температуры тела, частоты дыхания и пульса. Параметр интервалы для клинически здоровых кроликов, 30-50 мин Частота дыхания, 220-280 мин для частоты сердечных сокращений и 38-39 ° C для температуры тела.
    2. Быстро животных для 6 h перед наркозом.
  2. Препараты и процедуры для животных анестезии
    1. Сдерживать кролика с клеткой (см. Таблицу материалы) и затем вставляют 3% Пентобарбитал натрия в Вену маргинальных уха в дозе 1 мл/кг для общей анестезии.
    2. Место кролика в удобном спинной лежачем положении.
    3. Контроль частоты дыхания, пульс и температура тела кролика во время анестезии.
    4. Используйте офтальмологической мазь на его глазах для предотвращения сухости во время анестезии.
    5. Оценка глубины анестезии, после Guedel в классификации14.
  3. Подготовка для изоляции MSCs и выращивания
    1. Выращивать rbSF-MSCs, подготовить 500 мл коммерческих питательной среды (см. Таблицу материалы) дополнены 10% коммерческих дополнение (см. Таблицу материалы), 10% плода бычьим сывороточным (ФБС) и 1% пенициллина и стрептомицина.
    2. Инкубируйте питательной среды при 37 ° C на водяной бане.
    3. Подготовка 500 мл фосфатный буфер (PBS) для изоляции клеток и клеток стирки.
    4. Подготовка 100 мл изотонический солевой раствор для процедуры arthrocentesis полость коленного сустава.
  4. Коллекция суставной синовиальной жидкости от колена кролика
    1. Выберите область около 5 x 5 см в размере вокруг коленного сустава и бритье волос кролика из этой области, с использованием безопасности электробритвы.
    2. Поочередно, лечить сайт процедура 3 x с повидон йод раствор и 75% этанола. Затем примените стерильные шторы после области тщательно просушить.
    3. Придать 1-2 мл изотонический солевой раствор, используя стерильные шприцы шприц (2 мл), в полости сустава колена из боковых суставной пространства, переместить колено 3-4 x, а затем высосать все синовиальной жидкости при комнатной температуре.
    4. Фильтр fluid синовиальной через 40 мкм нейлон клеток сито для удаления любого мусора в течение 4 ч.
  5. Культура rbSF-МСК
    1. Соберите отфильтрованные fluid в 50 мл пробирок и центрифуги при 1500 об/мин за 10 мин при комнатной температуре.
    2. Отбросить надосадке после центрифугирования, помыть лепешка с PBS, Ресуспензируйте лепешка с полной питательной среды и затем тарелка среднего блюдах 100 мм.
    3. Инкубируйте блюда при 37 ° C в атмосфере увлажненные, содержащих 5% CO2.
    4. После 48 ч пополните блюда со свежими средний удалить любой non сторонник клетки. Замените средство дважды в неделю в течение 2 недель, как проход 0 (P0).
      Примечание: Там должно быть около 1 х 104 адэрентных клеток. Жизнеспособных клеток/мл в SF, / мл1452около 2 x 10.
    5. После 14 дней после первоначального покрытия многие колоний следует сформировали в культуре блюда. Выберите колоний больше 2 мм в диаметре. Марк, где выбранные колонии расположены путем отслеживания их окружности на дне блюдо.
    6. Отказаться от колоний < 2 мм шириной, с использованием клеток скребки. Дайджест отдельных колоний с около 5 мкл трипсин 0.25%, с помощью клонирования цилиндр и передать новое блюдо колониях как проход 1 (P1).
  6. Послеоперационный уход за животными
    1. Следуйте стандартным институциональных оперативные процедуры для послеоперационного мониторинга и восстановления от анестезии.
    2. Контролировать жизненно важные признаки кролик каждые 10 мин, до тех пор, пока он пришел в сознание. Наконец передача сознательных животных в клетке. Не возвращать кролика, которая подверглась хирургии в компании других животных до тех пор, пока он полностью выздоровел.
    3. После операции, лечить сайт с 0.1% повидон йод, 2 x в день в течение 3 дней.

2. CD90-позитивные магнитные активирован ячейку Сортировка (ПДК) rbSF-MSCs и основной культуры

  1. Подготовка образца
    1. Когда клетки достигает около 80% confluency, аспирационная носитель, а затем добавить 1-2 мл 0,25% трипсина-ЭДТА в каждое блюдо.
    2. Инкубируйте блюда для 2-3 мин позволить мобильный отряд.
    3. После того, как отдельные клетки, добавьте равное количество питательной среды для инактивации трипсина.
    4. Передайте суспензию клеток через стрейнер клетки 40 мкм, сбора фильтрата в 15 мл трубку и затем спина вниз клетки на 600 g × 10 мин при комнатной температуре.
    5. Ресуспензируйте Пелле клеток в MACS работает буфер (PBS, рН 7,2, бычий сывороточный альбумин 0,5% и 2 мм ЭДТА) и затем подсчитать ячейки.
  2. Магнитные метки
    Примечание: Сортировать rbSF-MSCs с магнитной активации клеток, сортировка комплект, содержащий столбцы, стенд и сепараторы (см. Таблицу материалы).
    1. Определите номер ячейки, используя Горяева.
    2. Центрифуга суспензию клеток на 300 g × 10 мин при 4 ° C. Полностью удалить супернатант.
    3. 80 мкл буфера ресуспендирования за 107 всего клеток.
    4. Для 107 всего клеток добавьте 20 мкл микрошарики, конъюгированных с моноклональными антителами CD90 анти кролика.
    5. Смешайте магнитные бусы и ячейки равномерно в трубах, а затем инкубировать их в 4 ° C на 15 мин в темноте.
    6. Добавить 1 мл буфера на 107 клеток в трубку и затем центрифуги на 300 g × 10 мин при 4 ° C для мытья клетки. Отбросить надосадке после центрифугирования.
    7. Ресуспензируйте гранулы в 500 мкл буфера на 107 клеток.
  3. Магнитная сепарация
    1. Место столбец с крыльями столбца на фронт в магнитное поле магнитного сепаратора.
    2. Промойте столбце магнитный сепаратор (МС) с 500 мкл буфера за 107 клеток.
    3. Перевести подвеска одну ячейку в столбце. Пусть негативные клетки проходят через магнитное поле, чтобы отменить эти немеченого клетки.
    4. Промойте колонку 1-2 x с 500 мкл буфера за 107 клеток и отбросить потока через.
    5. Перевести столбец в пластиковых пробирок (15 мл).
    6. Добавить 1 мл буфера за 107 ячеек в столбце и немедленно вставьте поршень в столбце для промывки магнитно помеченных клеток.
    7. Повторите выше процедуру с второй столбец MS для повышения чистоты CD90+ клетки, которые могут обогатить eluted дроби.
    8. Центрифуга суспензию клеток на 300 g × 10 мин, аспирационная супернатант и Ресуспензируйте с питательной среды.
  4. Культура CD90+ rbSF-MSCs
    1. Прививать клетки в 100 мм блюда после сортировки магнитные активированных клеток.
    2. Инкубируйте блюда при 37 ° C в инкубаторе увлажненные ячейки с 5% CO2.
    3. Когда достигается 80-90% слияния основной культуры, около 7-10 дней, дайджест адэрентных клеток с 0,25% трипсина-ЭДТА и прохождения их в разведении 1:2 сделать проход 2 (P2).
    4. Используйте тот же метод для передачи клетки проход 3 (P3), которые могут быть использованы для анализов в пробирке .
      Примечание: После очистки и суб-культуры, получены около 1 x 10-7 rbSF-MSCs.

3. Определение rbSF-МСК

  1. Поверхности маркер подтверждения rbSF-МСК подачей cytometry
    1. Когда MSCs 80-90% притока на P3, вымыть клетки с PBS и относиться к ним с 1 мл 0,25% трипсина-ЭДТА. Затем Инкубируйте MSCs при 37 ° C на 2-3 мин до тех пор, пока отдельные клетки.
    2. Урожай ячейки, используя 10 мл PBS, передавать их в коническую пробирку (15 мл) и центрифуги их на 300 g × 5 мин при комнатной температуре.
    3. Выбросите supernatants. Ресуспензируйте Пелле клеток в 500 мкл PBS и перенести его в 1,5 мл трубку.
    4. Инкубировать 1: 100 разрежения конъюгированных FITC и PE-конъюгированных антител (изотипа, FITC-CD34/PE-CD45, FITC-CD105/PE-CD44) за 1 ч в темноте при 4 ° C.
    5. Центрифуга эту смесь на 300 g × 5 мин при комнатной температуре и вымыть клетки дважды с PBS центрифугированием на 300 g × 5 минут каждый раз. Выбросите supernatants.
    6. Ресуспензируйте клетки в 500 мкл PBS, передача суспензию клеток в раунд снизу трубку (5 мл) и проанализировать его с помощью проточный цитометр.
      Примечание: Получение данных на цитометр, с двумя каналами флуоресцирования: 533/30 и 585/40. Каждый изотип флуоресцирование использование isotype управления для регулировки напряжения соответствующий лазерный и значение минимальной силы света, необходимого для получения флуоресценции гистограмму, которая показывает левого и правого краев пика. Соберите как минимум 10 000 событий для статистического анализа.
  2. Multidifferentiation rbSF-МСК
    Примечание: Использование P3 rbSF-MSCs для multidifferentiation анализов в пробирке .
    1. Остеогенные дифференциация
      1. Подготовка среднего Остеогенные индукции: DMEM basic (1 x) содержащий 50 мм L-Аскорбиновая кислота-2-фосфат, 10 мм α-метронидазол, и 100 Нм дексаметазона.
      2. Семя клетки на 103 клеток/см2 в пластине 6-ну тканевые культуры и культуры их в среде Остеогенные индукции.
      3. Изменение среднего индукции каждые 3 дня за 3 недели.
      4. Исправить клетки с 4% формальдегида для 30 мин при комнатной температуре, после завершения дифференциация, запятнать клетки с 1% ализарин красный для 5 минут, а затем вымыть их 3 x с PBS15.
    2. Адипогенном дифференциация
      1. Подготовка среднего адипогенном индукции: DMEM basic (1 x), состоящий из 100 мм индометацина, 10 мг/мл содержит рекомбинантного инсулина человека, дексаметазона 1 мм и 0,5 мм 3-изобутил-1-метилксантина.
      2. Лечить P3 rbSF-MSCs на 3 недели в адипогенном среде индукции.
      3. После 3 недель пятно вакуолей нейтральных липидов, используя O Красного масла для подтверждения адипогенном дифференциации. Исправьте клетки в 4% раствор формальдегида для 30 мин при комнатной температуре и затем промойте их 3 x с PBS16.
    3. Хондрогенном дифференциация
      1. Подготовка среднего индукции хондрогенном: DMEM basic (1 x), состоящая из 10 нг/мл TGFβ1, 1% ее дополнения, 0,35 мм L-пролина, 100 Нм дексаметазона, 50 мм, L-Аскорбиновая кислота-2-фосфат и 1 мм пируват натрия.
      2. Используйте Пелле культивирования для индукции хондрогенном. Центрифуга 5 × 105 P3 rbSF-MSCs на 1500 об/мин за 10 мин в полипропиленовых труб (15 мл) сформировать лепешки.
      3. Культура гранулы за 3 недели с хондрогенном индукции среднего.
      4. Измените носитель каждые 3 дня за 3 недели.
      5. После 3 недель индукции, вставлять ячейки гранулы с парафином, раздел ломтиками 4 мм и выведение их с помощью 0,1% толуидиновый синий для 30 мин при комнатной температуре17.
  3. Общая добыча РНК и анализ количественных реального времени полимеразной цепной реакции (qRT-PCR)
    1. Изолировать всего РНК клеток после индукции дифференцировки 3 недели, с использованием коммерческих РНК добыча комплект (см. Таблицу материалы).
      1. Удалите средство культуры в культуры блюдо и затем добавьте 1 mL реагента изоляции.
      2. Лизируйте клетки путем неоднократных дозирование до тех пор, пока решение однородной. Проинкубируйте его при комнатной температуре в течение 3 мин.
      3. Перенесите lysate клетки в пробки microcentrifuge 1,5 мл.
      4. 100 мкл хлороформ, встряхните его на руку 15 x и инкубировать смесь при комнатной температуре в течение 3 мин.
      5. Центрифуга для трубки на 12000 g × 15 мин при 4 ° C. Перенесите supernatants в новые пробки microcentrifuge 1,5 мл.
      6. Добавьте 500 мкл изопропанола и осадка РНК для 10 мин при комнатной температуре.
      7. Центрифуга на 12 000 × g для 10 minat 4 ° C. Пелле РНК должны быть видны в нижней части трубки.
      8. Удалить супернатант и затем добавить 500 мкл 75% этанола. Кратко вращайте трубу за несколько секунд, чтобы помыть лепешка РНК. Центрифуга на 7500 g × 5 мин при 4 ° C.
      9. Удаление остаточных этанола.
      10. Растворяют гранулы РНК в 10 мкл DEPC воды и поместите трубки на льду.
    2. Реверс транскрибировать всего РНК в cDNA с ДНК-синтез комплекта (см. Таблицу материалы).
      Примечание: Выполните следующие процедуры на льду.
      1. Подготовьте смесь мастер обратной транскрипции.
      2. Добавьте 25 мкл лечение DNase РНК в каждую пробирку с 1 мкг РНК.
      3. Инкубировать смесь при следующих температурах с использованием ПЦР тепловая велосипедист: 26 ° C в течение 10 мин (чтобы случайно hexamers для отжига), 42 ° C по 45 мин (обратная транскрипция) и 75 ° C в течение 10 мин (для инактивации обратная транскриптаза).
      4. Сразу же анализировать результирующие cDNA, Количественная ПЦР в реальном времени, или хранить его при-20 ° C.
    3. Выполните анализ выражения гена с системой Количественная ПЦР в реальном времени.
      1. Используйте Мастер микс qRT-PCR (см. Таблицу материалы) для выполнения ПЦР. Праймеры PCR для GAPDH, Runx2, общ и PPARγ, перечислены в таблице 1.
      2. Вычислите с помощью методаΔΔCT 2−экспрессии генов.
      3. Проводить статистический анализ с использованием стандартного статистического программного обеспечения. Используйте независимые t тест для сравнения средств группы.

Результаты

Изоляция, очистки и культура rbSF-МСК:
Этот протокол использует MACS для изоляции rbSF-MSCs, основанный на выражение MSC поверхности маркера CD90. Диаграмма потока процесса rbSF-MSCs изоляции, очищения и характеристика и протокол культуры в vitro показано на р?...

Обсуждение

Существование MSCs в синовиальной жидкости обеспечивает альтернативу для терапии на основе ячеек. Предыдущие исследования показали, что травмы сайты содержат большее количество мезенхимальных стволовых клеток в их синовиальной жидкости, которая может быть положительно коррелирует с ?...

Раскрытие информации

Авторы заявляют, что они не имеют никаких финансовых интересов.

Благодарности

Это исследование финансово поддержали следующие гранты: естественные науки фонд Китая (№ 81572198; № 81772394); Фонд для строительства высокого уровня медицинской дисциплины Шэньчжэнь университета (№ 2016031638); Фонд медицинских исследований провинции Гуандун, Китай (No. A2016314); Шэньчжэнь науки и технологических проектов (No. JCYJ20170306092215436; LOL JCYJ20170412150609690; LOL JCYJ20170413161800287; LOL SGLH20161209105517753; LOL JCYJ20160301111338144).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Reagents
MesenGroStemRDMGro-500 1703Warm in 37 °C water bath before use
MesenGro SupplementStemRDMGro-500 M1512Component of MSCs culture medium
DMEM basicGibco Inc.C11995500BTMSCs differentiation medium
Isotonic saline solutionLitai, China5217080305Cavity arthrocentesis procedure reagent
Phosphate-Buffered Saline (PBS)HyClone Inc.SH30256.01BPBS, free of Ca2+/Mg2+
Fetal Bovine Serum (FBS)Gibco Inc.10099-141Component of MSCs culture medium
Povidone iodine solutionGuangdong, China150605Sterilization agent
75% ethanolLircon, china170917Sterilization agent
0.25% Trypsin/EDTAGibco Inc.25200-056Cell dissociation reagent
1% Penicillin-StreptomycinGibco Inc.15140-122Component of MSCs medium
MACS Running BufferMiltenyiBiotec5160112089Containing phosphate-buffered saline (PBS), 0.5% bovine serum albumin(BSA), and 2 mMEDTA
CD90 antibody conjugated MicroBeadsMiltenyiBiotec5160801456For magnetic activated cell sorting
Sodium pyruvateSigma-AldrichP2256Component of MSCs chondrogenic differentiation
DexamethasoneSigma-AldrichD1756Component of MSCs osteogenic differentiation
ITSBD3543521%, Component of MSCs chondrogenic differentiation
L-prolineSigma-AldrichP56070.35 mM, Component of MSCs chondrogenic differentiation
L-ascorbic acid-2-phosphateSigma-AldrichA896050 mM, Component of MSCs chondrogenic differentiation
3-isobutyl-1-methylxanthineSigma-AldrichI58790.5 mM, Component of adipogenic differentiation
IndomethacinSigma-AldrichI7378100 mM, Component of adipogenic differentiation
TGFβ1Peprotech100-2110 ng/mL, Component of MSCs chondrogenic differentiation
α-glycerophsphateSigma-AldrichG6751Component of MSCs osteogenic differentiation
CD34 Polyclonal Antibody, FITC ConjugatedBiossbs-0646R-FITCHematopoietic stem cells marker
Mouse antirabbit CD44Bio-RadMCA806GAThy-1 membrane glycoprotein (MSCs marker)
CD45 (Monoclonal Antibody)Bio-RadMCA808GAHematopoietic stem cells marker
CD105 antibodyGenetexGTX11415MSCs marker
Isopropyl alcoholSigma-AldrichI9030Precipitates RNA extraction organic phases
TrichloromethaneWenge, China61553Extract total RNA
TrizolInvitrogen15596-018Isolate total RNA
SYBR green master mixTakara Bio, JapanRR420APCR test
cDNA synthesis kitTakara Bio, JapanRR047AReverse-transcribed to complementary DNA
Alizarin RedSigma-AldrichA5533Staining of calcium compounds
Toluidine BlueSigma-Aldrich89640Staining of cartilaginous tissue
Oil Red O solutionSigma-AldrichO1391LLipid vacuole staining
Equipment
MiniMACS SeparatorMiltenyiBiotec130-042-102For magnetic activated cell sorting
MultiStandMiltenyiBiotec130-042-303For magnetic activated cell sorting
MS ColumnsMiltenyiBiotec130-042-201For magnetic activated cell sorting
Cell StrainerFALCON Inc.35234040 μm nylon
HemocytometerISOLAB Inc.075.03.001Cell counting
Falcon 100 mm dishCorning353003Cell culture dish
Microcentrifuge tubeAxygenMCT-150-CRNA Extraction and PCR
Centrifuge TubesSigma-Aldrich91050Gamma-sterilized
High-speed centrifugeEppendorf5804RCentrifuge cells
Carbon dioxide cell incubatorThermo scientific3111Cell culture
Real-Time PCR InstrumentLife TechQuantStudioReal-Time quantitative polymerase chain reaction
Flow cytometerBD Biosciences342975Cell analyzer
PipettorEppendorfO25456FTransfer the liquid
Cloning cylinderSigma-AldrichC3983-50EAIsolate and pick individual cell colonies
Sterile hypodermic syringeDouble-Dove, China131010Arthrocentesis procedure
Rabbit cageZhike, ChinaZC-TGDRestrain the rabbit

Ссылки

  1. Oreffo, R. O., Cooper, C., Mason, C., Clements, M. Mesenchymal stem cells: lineage, plasticity, and skeletal therapeutic potential. Stem Cell Reviews. 1 (2), 169-178 (2005).
  2. Asakura, A., Rudnicki, M. A., Komaki, M. Muscle satellite cells are multipotential stem cells that exhibit myogenic, osteogenic, and adipogenic differentiation. Differentiation. 68 (4-5), 245-253 (2001).
  3. De, B. C., Dell'Accio, F., Tylzanowski, P., Luyten, F. P. Multipotent mesenchymal stem cells from adult human synovial membrane. Arthritis Rheumatology. 44 (8), 1928-1942 (2001).
  4. Zuk, P. A., et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. Molecular Biology of the Cell. 13 (12), 4279-4295 (2002).
  5. McGonagle, D., Jones, E., English, A., Emery, P. Enumeration and phenotypic characterization of synovial fluid multipotential mesenchymal progenitor cells in inflammatory and degenerative arthritis. Arthritis & Rheumatism. 50 (3), 817-827 (2004).
  6. Jia, Z., et al. Isolation and characterisation of human mesenchymal stem cells derived from synovial fluid by magnetic activated cell sorting (MACS). Cell Biology International. , (2017).
  7. Bashir, M., et al. Isolation, culture and characterization of New Zealand white rabbit mesenchymal stem cells derived from bone marrow. Asian Journal of Animal & Veterinary Advances. 10 (8), 13-30 (2015).
  8. Song, X., et al. Differentiation potential of rabbit CD90-positive cells sorted from adipose-derived stem cells in vitro. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Animal. 53 (1), 1-6 (2016).
  9. Lee, T. C., et al. Comparison of surface markers between human and rabbit mesenchymal stem cells. PLOS One. 9 (11), e111390 (2014).
  10. Stewart, M. C., Chen, Y., Bianchessi, M., Pondenis, H. Phenotypic characterization of equine synovial fluid-derived chondroprogenitor cells. Stem Cell Biology and Research. 3 (1), (2016).
  11. Prado, A. A. F., et al. Characterization of mesenchymal stem cells derived from the equine synovial fluid and membrane. BioMed Central Veterinary Research. 11 (1), 281 (2015).
  12. Yoshimura, H., et al. Comparison of rat mesenchymal stem cells derived from bone marrow, synovium, periosteum, adipose tissue, and muscle. Cell and Tissue Research. 327 (3), 449-462 (2007).
  13. Wu, C. C., et al. Intra-articular injection of platelet-rich fibrin releasates in combination with bone marrow-derived mesenchymal stem cells in the treatment of articular cartilage defects: an in vivo study in rabbits. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials. 105 (6), 1536-1543 (2017).
  14. John, T., Lerche, P. . Anesthesia and Analgesia for Veterinary Technicians. , (2011).
  15. Koyama, N., et al. Pluripotency of mesenchymal cells derived from synovial fluid in patients with temporomandibular joint disorder. Life Sciences. 89 (19-20), 741-747 (2011).
  16. Kim, Y. S., et al. Isolation and characterization of human mesenchymal stem cells derived from synovial fluid in patients with osteochondral lesion of the talus. American Journal of Sports Medicine. 43 (2), 399-406 (2015).
  17. Vereb, Z., et al. Immunological properties of synovial fluid-derived mesenchymal stem cell-like cells in rheumatoid arthritis. Annals of the Rheumatic Diseases. 74 (Suppl 1), A64-A65 (2015).
  18. Matsukura, Y., Muneta, T., Tsuji, K., Koga, H., Sekija, I. Mesenchymal stem cells in synovial fluid increase after meniscus injury. Clinical Orthopaedics & Related Research. 472 (5), 1357-1364 (2014).
  19. Morito, T., et al. Synovial fluid-derived mesenchymal stem cells increase after intra-articular ligament injury in humans. Rheumatology. 47 (8), 1137-1143 (2008).
  20. Hegewald, A. A., et al. Hyaluronic acid and autologous synovial fluid induce chondrogenic differentiation of equine mesenchymal stem cells: a preliminary study. Tissue & Cell. 36 (6), 431-438 (2004).
  21. Jones, E. A., et al. Synovial fluid mesenchymal stem cells in health and early osteoarthritis: detection and functional evaluation at the single cell level. Arthritis & Rheumatism. 58 (6), 1731-1740 (2008).
  22. Makker, K., Agarwal, A., Sharma, R. K. Magnetic activated cell sorting (MACS): utility in assisted reproduction. Indian Journal of Experimental Biology. 46 (7), 491-497 (2008).
  23. Schmitz, B., et al. Magnetic activated cell sorting (MACS) — a new immunomagnetic method for megakaryocytic cell isolation: comparison of different separation techniques. European Journal of Haematology. 52 (5), 267-275 (1994).
  24. Reinhardt, M., Bader, A., Giri, S. Devices for stem cell isolation and delivery: current need for drug discovery and cell therapy. Expert Review of Medical Devices. 12 (3), 353-364 (2015).
  25. Gronthos, S., Zannettino, A. C. W., Prockop, D. J., Bunnell, B. A., Phinney, D. G. A method to isolate and purify human bone marrow stromal stem cells. Mesenchymal Stem Cells. , 45-57 (2008).
  26. Krawetz, R. J., et al. Synovial fluid progenitors expressing CD90+ from normal but not osteoarthritic joints undergo chondrogenic differentiation without micro-mass culture. PLOS One. 7 (8), e43616 (2012).
  27. Ogata, Y., et al. Purified human synovium mesenchymal stem cells as a good resource for cartilage regeneration. PLOS One. 10 (6), e0129096 (2015).
  28. Dominici, M., et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells: the International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 8 (4), 315-317 (2006).
  29. Gauci, S. J., et al. Modulating chondrocyte hypertrophy in growth plate and osteoarthritic cartilage. Journal of Musculoskeletal & Neuronal Interact. 8 (4), 308 (2008).
  30. Cooke, M. E., et al. Structured three-dimensional co-culture of mesenchymal stem cells with chondrocytes promotes chondrogenic differentiation without hypertrophy. Osteoarthritis and Cartilage. 19 (10), 1210-1218 (2011).
  31. Fischer, J., Dickhut, A., Rickert, M., Richter, W. Human articular chondrocytes secrete parathyroid hormone-related protein and inhibit hypertrophy of mesenchymal stem cells in coculture during chondrogenesis. Arthritis and Rheumatism. 62 (9), 2696-2706 (2010).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

138uidCD90

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены