JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Три критических шагов этого протокола i) разработки правильный состав и последовательность целлюлозы гидрогеля чернил, ii) 3D печать лесов в различные поры структур с хорошей форме верности и размеры и iii) демонстрация механические свойства в органом имитируемых условиях для регенерации хряща.

Аннотация

Эта работа демонстрирует использование трехмерных (3D) печати для производства пористых кубических леса с использованием чернил гидрогеля нанокомпозитных целлюлозы, с контролируемой поровой структуры и механических свойств. Нанокристаллов целлюлозы (зато, 69.62 wt %) чернила на основе гидрогеля с матрицей (альгинат натрия и желатин) была разработана и 3D напечатаны на подмости с единой и градиентные поровой структуры (110-1100 мкм). Подмости показан модуль сжатия в пределах 0,20-0,45 МПа при испытании в моделируется в естественных условиях условий (в дистиллированной воде при 37 ° C). Размер поры и сжатия модуль 3D подмостей, совпадают с требованиями, необходимые для приложений регенерации хряща. Эта работа показывает, что однородность чернил может управляться концентрация прекурсоров и пористость может управляться процесс 3D печати и оба этих фактора в свою очередь определяет механические свойства 3D печати пористые Гидрогель эшафот. Таким образом, этот процесс метод может использоваться для изготовления структурно и композиционно заказной леса согласно конкретным потребностям пациентов.

Введение

Целлюлозы – это полисахарид, состоящий из линейной цепи β единиц связанного D-глюкоза (1-4). Это наиболее распространенных природных полимеров на земле и добывается из целого ряда источников, включая морских животных (например, оболочники), растений (например, дерево, хлопок, солома) и бактериального происхождения, например водорослей (например, Валония), грибов и даже амебы (простейшие )1,2. Нановолокна целлюлозы (ГОК) и нанокристаллов (CNC) целлюлозы с по крайней мере одно измерение на наноуровне получаются путем механической обработки и кислотного гидролиза из целлюлозы. Они не только обладают свойствами целлюлозы, как потенциал для химической модификации, низкой токсичности, биосовместимость, биологически и возобновляемых, но он также имеет наноразмерных характеристик как высокой удельной площади поверхности, высокие механические свойства , реологических и оптические свойства. Эти привлекательные свойства сделали CNFs и зато подходит для биомедицинских приложений, главным образом в виде трехмерной (3D) гидрогеля помостами3. Эти строительные леса требуют индивидуальные размеры с контролируемой пористую структуру и взаимосвязанных пористость. Наша группа и другие сообщили 3D пористых целлюлозы нанокомпозитов, подготовленные путем литья, electrospinning и паром для лиофильной сушки4,5,6,,78. Однако, контроль на пористую структуру и изготовление сложной геометрии не достигается за счет этих традиционных методов.

3D печать — это метод аддитивного производства, в котором 3D объекты создаются слой за слоем через управляемый компьютером осаждения чернила9. Преимущества 3D печати через традиционные техники включает в себя свободу дизайна, контролируемые макро и микро размеров, изготовление сложных архитектур, настройки и воспроизводимость.  Кроме того 3D печать CNFs и зато также предлагает сдвига индуцированной рядов наночастиц, предпочитали направленность, градиент пористости и может быть легко расширен для 3D подложке10,11,12, 13 , 14 , 15. Недавно, динамика зато был выравнивания во время 3D печать сообщила16,17. Достижения в области подложке должны включить 3D печатных тканей и органов, несмотря на участие вызов как выбор и концентрация живых клеток и факторов роста, состав чернил перевозчика, печать давления и диаметры сопла18 ,19,20.

Пористость и прочность хряща регенеративные подмостей являются важными свойствами, которые диктует его эффективности и производительности. Размер пор играет важную роль для адгезии, дифференциации и пролиферации клеток, а также для обмена питательных веществ и метаболические отходы21. Однако существует нет определенной поры, который можно рассматривать как идеальное значение, некоторые исследования показали выше отпорности с меньше поры, в то время как другие показали лучше регенерации хряща с большие поры. Macropores (< 500 мкм) облегчить минерализации тканей, снабжения питательными веществами и удаления отходов, а микропоры (150-250 мкм) облегчает клеток привязанность и лучше механических свойств22,23. Имплантированные леса должны иметь достаточную механическую целостность от времени обработки, имплантации и до завершения ее желаемой цели. Совокупный Модуль сжатия для естественных суставного хряща, как сообщается, находится в диапазоне 0,1-2 МПа в зависимости от возраста, пола и проверяемом месте4,24,25,26,27 ,,2829.

В нашей предыдущей работы113D печать был использован для изготовления пористые bioscaffolds двойной высокоструктурированные взаимопроникающих полимерных сети (IPN) из гидрогеля чернил, содержащего усиленные зато в матрице альгината натрия и желатина. 3D печать путь был оптимизирован для достижения 3D подмости с единой и градиентные поровой структуры (80-2125 мкм) где нанокристаллов предпочтительно ориентироваться в направление печати (степень ориентации между 61-76%). Здесь, мы представляем продолжение этой работы и демонстрирует, что влияние пористости на механические свойства 3D печати гидрогеля леса в органом имитируемых условиях. Зато, используемый здесь, ранее сообщили нам быть cytocompatible и нетоксичен (т.е. рост клеток после 15 дней инкубации было подтверждено30). Кроме того леса подготовлен через Плаурайта же зато, альгинат натрия и желатин показали высокую пористость, высокое поглощение фосфатный буфер и cytocompatibility сторону мезенхимальных стволовых клеток5. Цель этой работы заключается в демонстрации обработки чернила гидрогеля, 3D печать пористых строительных лесов и сжатия. Схемы обработки маршрут показан на рисунке 1.

протокол

1. Подготовка прекурсоров

  1. Подготовка целлюлозы нанокристаллов подвеска
    Примечание: Изоляция целлюлоза нанокристаллов осуществляется согласно процедуре, сообщил Мэтью,30и др.
    1. Разбавить 17 wt % суспензия целлюлозы нанокристаллов 2 wt %, добавляя дистиллированную воду сделать общий объем 2 л смеси, тщательно с использованием ультра sonication и использования небольших партий (250-300 мл) для эффективного смешивания.
    2. Пройти sonified подвеска через гомогенизатор 10 раз при давлении 500-600 бар. На данный момент получается густой прозрачный гель 2 wt % целлюлозы нанокристаллов.
    3. Концентрат 2 wt % целлюлозы, которые нанокристаллов гель 11 wt % через centrifugations на 24.500 x g для 1,5 ч. Decant воды между каждые 30 мин.
      Примечание: Эксперимент может быть приостановлена здесь.
  2. Подготовка матрицы фаз
    1. Подготовьте однородный раствор 6 wt % натрия альгината (SA) в дистиллированной воде при 60 ° C при непрерывном помешивании.
    2. Подготовьте однородный раствор 12 wt % желатина (гель) в дистиллированной воде при 60 ° C при непрерывном помешивании.
      Примечание: Подготовить объемом 20 мл для матрицы решений и хранить в холодильнике.
  3. Подготовка сшиватели
    1. Приготовляют раствор хлорида 3 wt % кальция в дистиллированной воде при комнатной температуре при непрерывном помешивании.
    2. Приготовляют раствор 3 wt % глютаральдегид в дистиллированной воде при комнатной температуре при непрерывном помешивании.
      Примечание: Подготовить объемом 50 мл для сшивки решений и хранить при комнатной температуре. Обратитесь к Таблице материалы для поставщиков информации. Эксперимент может быть приостановлена здесь.

2. Подготовка гидрогеля чернил

  1. Подготовить 40 мл гидрогеля чернил в контейнер из полистирола, смешивая 11 wt % CNC, 6 wt % SA и 12 wt % гель для получения влажной (wt %) Композиция с ЧПУ/SA/гель/вода: 6.87/1.50/1.50/90.12.
  2. Нагрейте смесь до 40 ° C и перемешайте с помощью шпателя до получения гладкой пасты.
  3. Передача смеси в 60 мл шприц. Передайте смесь через серию сопла с различными диаметрами в другой 60 мл шприц, с помощью механического зажима. Повторите процесс, пока не получены плавно экструдированных нитей гидрогеля чернил. Начните с сопла с большим диаметром 800 мкм, следуют 600 мкм и 400 мкм.
  4. Аккуратно центрифуги (4000 x g) шприц заполнены чернилами Гидрогель для удаления воздуха в ловушке.
    Примечание: Эксперимент может быть приостановлена здесь.

3. Измерение реологических свойств Гидрогель

NTE: Выполнить реологических свойств с помощью Гладкая геометрия конуса о пластины, CP25-2-SN7617, диаметр 25 мм, 2 ° Номинальный угол и высота разрыв 0.05 мм при 25 ° C.

  1. Включите Реометр, воздушный компрессор и блок управления температуры. Инициализируйте программного обеспечения.
  2. Маунт измерительный инструмент в Реометр и задать нулевой зазор.
  3. Примерно 1 мл гидрогеля чернил на платформу Реометр выдавливания.
  4. Измерения вязкости в зависимости от скорости сдвига. Выберите диапазон коэффициента сдвига от 0,001 до 1000.
  5. После того, как делается измерение, очистить Реометр платформы и измерительный инструмент. Выдавить 1 мл чернил свежие гидрогеля снова на платформе Реометр.
  6. Измерить хранения модулей (G′) и потери модули (G″) как функцию касательное напряжение с частотой 1 Гц. выберите касательное напряжение диапазон от 10-3 до 107.
  7. После завершения тестов, скопируйте данные в текстовый файл и печать реологические кривые в логарифмическом масштабе.

4. файл подготовка для 3D печати

Примечание: Cura 2.4.0 программное обеспечение используется для проектирования 3D подмостей (320 мм), наличие трех типов поры. 1-uniform поры 0,6 мм, 2-форма поры 1,0 мм и 3-градиент поры диапазона 0,5-1 мм.

  1. Скачать файл стереолитографии (stl) сплошной куб из thingsinverse.com и откройте файл в Кура.
  2. Нажмите кнопку Загрузить модель и переместить его в X/Y/Z: 0/0/0 мм. Нажмите кнопку масштаб, снимите флажок для единообразного масштабирования и задать размеры по X/Y/Z: 20/20/20 мм. Нажмите повернуть и вращать куб, 45 °, в плоскости XY.
  3. В боковой панели, в сопло и материалвыберите 0,4 мм и вставьте профиль. Выберите полный Discov3ry в качестве принтера.
  4. В боковой панели выберите Custom для Настройка печати. В разделе качество введите 0,2 мм для всех подраздела. В разделе Shell введите 0 мм для всех подраздела. В разделе материал введите температура 26 ° C, 1 мм диаметр и 100% поток. В разделе скорость введите 30 мм/сек Скорость печати и 120 мм/с, а Скорость передвижения. В разделе поддержки снимите флажок Включить поддержку. В разделе Построение пластина сцепления выберите юбка, введите 3 мм, как Юбка расстояние и 150 мм как юбка/Брим минимальная длина.
  5. Для леса с единой поры введите 0,6 или 1 мм Расстояние линии заполнения и выберите Шаблон заполнения сетки.
  6. Для градиента пористость подмостей объединения и группировки инструмент используется. Щелкните правой кнопкой мыши загружаемой модели, выберите Несколько моделей, введите 2 и нажмите OK. Каждая модель как X/Y/Z: 20/20/7 мм. место модели друг на друга. Введите Расстояние линии заполнения как 0,3, 0,5 и 0,7 мм для нижней, средней и верхней модели, соответственно. Выберите все три модели (Ctrl + A), щелкните правой кнопкой мыши и выберите Группы модели.
  7. Сохранение модели на карте уверен Digital (SD). Кура автоматически сохранить файл как gcode, которое читается с принтером.

5. 3D печати пористых строительных лесов

  1. Вставьте держатель сопла подводящего патрубка и 400 мкм сопла к нему подключиться. Уровень пластину построения получить правильное расстояние между пластины сборки и сопла.
  2. Загрузить центрифугировали шприца в патрон и подключите его к другой стороне подводящего патрубка.
  3. Вставьте SD-карту в принтер, выберите очистить быстро и начать очистку гидрогеля чернил, до тех пор, пока он начинает выталкивать из сопла. Продолжить очистку для 2-3 минут до получения однородного потока.
  4. С SD-карты выберите сохраненные файлы для единой и градиентные пористость подмостей и начать печать. Держите глаза на скорость экструзии. При необходимости, настройте скорость и потока скорость соответственно. Для меньшего размера пор используйте быстрее скорость в сочетании с низким расходом (50 мм/с и 70%).
    Примечание: Не прикасайтесь 3D печатной подмостей.

6. сшивки 3D печати подмости

  1. После завершения 3D печать, осторожно добавьте капель 3 wt % CaCl2 леска до тех пор, пока она становится полностью мокрой. Подождите 5 мин.
  2. Очень внимательно передать леска из принтера в 50 мл контейнер с 3 wt % CaCl2. Оставьте его на ночь.
  3. Тщательно промыть дистиллированной водой и передать в 50 мл контейнер с 3 wt % глютаральдегид эшафот. Оставьте его на ночь.
  4. Тщательно мыть и хранить 3D печатной леску в дистиллированной воде.

7. сжатие тестирование

Примечание: Выполните сжатие тесты с 100 Датчик нагрузки N в воде при температуре 37 ° C.

  1. Заполните контейнер оборудован погружной сжатия плиту с 2 Л воды и запуск системы отопления до 37 ° C.
  2. Инициализация Bluehill универсального программного обеспечения и настроить метод тестирования. Выберите геометрию прямоугольного образца и выберите возможность ввести размеры перед тестированием каждого образца.  Установка скорости деформации до 2 мм/мин и в конце результат как 80% сжимающие напряжения вместе с 90 N силы.
  3. В разделе измерения выберите силы, перемещения, напряжений и сжимающие напряжения. Выберите параметр, чтобы экспортировать данные в виде текстовых файлов для построения будущего.
  4. Установить нулевую точку расширения с помощью элементов управления пробежку снизить крейцкопфа пластину как можно ближе к Монтажная плита.
  5. Оценивать и учитывать размеры образцы для их испытания.
  6. Когда температура воды достигает до 37 ° C, поместите образец на опорной плите.  Закрепите образца, перемещая крейцкопфа пластины, так что она начинает касаться образца.
  7. Переместить водяной бане вверх, таким образом, чтобы пластины с образца между ними погружены в воду.
  8. Введите имя образца и размеры. Запустите тест.
  9. После завершения теста, сначала переместить водяной ванны вниз и затем поднимите пластину крейцкопфа.
  10. Удаление образца и его части, если таковые имеются, очистите обе пластины и загрузки нового образца.
  11. После того, как все образцы тестируются, экспорт необработанных данных. Заговор против сжимающие напряжения кривых напряжений и определить модуль сжатия касательной при значениях напряжения 1-5% и 25-30%.
    Примечание: Место градиента Куба таким образом, что большие отверстия сталкиваются Канцтовары Монтажная плита.
    Сначала закрепите леску между ручки и затем запустить/остановить измерение.

Результаты

Зато на основе нанокомпозитных гидрогеля чернил показывает сильный неньютоновских ножниц прореживания поведение(рисунок 2). Очевидной вязкость 1.55 × 10-5 Pa.s на скорости сдвига низкой (0.001 s-1) падает на пять порядков значение 22.60 Pa.s на скорости сдвига 50 s<...

Обсуждение

3D печать требует подходящей реологических свойств чернил гидрогеля. Высокая вязкость краски потребует экстремальные давления для его экструзии при низкой вязкости краски не будет поддерживать свою форму после экструзии. Вязкости краски, гидрогеля может управляться через концентрац?...

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Это исследование финансируется Alice Валленберга фонда (Валленберга древесины научный центр), Шведский исследовательский совет, VR (Bioheal, DNR 2016-05709 и DNR 2017-04254) и кнут.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
60 mL syringeStructur3D Printing
Alginic acid sodium saltSigma-Aldrich9005-38-3
Anhydrous calcium chlorideSigma-Aldrich10043-52-4
Clamps, three pronged, TalonVWR241-0404102 mm, Dual adjustment clamp, large, clamp extension 127 mm
Cura 2.4.0UltimakerFree slicing software
Discov3ry CompleteStructur3D PrintingUltimaker 2+ 3D printer integrated with Discov3ry paste extruder
Gelatin from bovine skinSigma-Aldrich9000-70-8
Glutaraldehyde solution 50 wt. % in H2OSigma-Aldrich111-30-8
homogenizerSPXAPV-2000
Instron 5960InstronInstron 5960, Biopuls Bath, 100 N load cell, 37 °C,
Physica MCR 301 rheometerAnton PaarCP25-2-SN7617, gap height 0.05 mm, 25 °C
Sorvall Lynx 6000 centrifugeAB Ninolabs/n 41881692F12-rotor (6x500 ml)
stainless steel nozzleStructur3D Printing800, 600 and 400 µm
thingsinverseMakerBot's sharing and downloading 3D printable things in form of stl files
ultra sonicationQsonica, LLCQ500
Unbarked wood chipsNorway spruce(Picea abies)dry matter content of 50–55%

Ссылки

  1. Moon, R. J., Martini, A., Nairn, J., Simonsen, J., Youngblood, J. Cellulose nanomaterials review: structure, properties and nanocomposites. Chemical Society Reviews. 40 (7), 3941-3994 (2011).
  2. Dufresne, A. Nanocellulose: a new ageless bionanomaterial. Materials Today. 16 (6), 220-227 (2013).
  3. Chinga-Carrasco, G. Potential and limitations of nanocelluloses as components in biocomposite inks for three-dimensional bioprinting and for biomedical devices. Biomacromolecules. 19 (3), 701-711 (2018).
  4. Naseri, N., Poirier, J., Girandon, L., Fröhlich, M., Oksman, K., Mathew, A. P. 3-Dimensional porous nanocomposite scaffolds based on cellulose nanofibers for cartilage tissue engineering: tailoring of porosity and mechanical performance. Royal Society of Chemistry Advances. 6 (8), 5999-6007 (2016).
  5. Naseri, N., Deepa, B., Mathew, A. P., Oksman, K., Girandon, L. Nanocellulose-Based Interpenetrating Polymer Network (IPN) Hydrogels for Cartilage Applications. Biomacromolecules. 17 (11), 3714-3723 (2016).
  6. Naseri, N., Mathew, A. P., Girandon, L., Fröhlich, M., Oksman, K. Porous electrospun nanocomposite mats based on chitosan-cellulose nanocrystals for wound dressing: effect of surface characteristics of nanocrystals. Cellulose. 22 (1), 521-534 (2015).
  7. Xing, Q., Zhao, F., Chen, S., McNamara, J., DeCoster, M. A., Lvov, Y. M. Porous biocompatible three-dimensional scaffolds of cellulose microfiber/gelatin composites for cell culture. Acta Biomaterialia. 6 (6), 2132-2139 (2010).
  8. Nandgaonkar, A., Krause, W., Lucia, L. Fabrication of cellulosic composite scaffolds for cartilage tissue engineering. Nanocomposites for musculoskeletal tissue regeneration. , 187-212 (2016).
  9. Gross, B. C., Erkal, J. L., Lockwood, S. Y., Chen, C., Spence, D. M. Evaluation of 3D printing and its potential impact on biotechnology and the chemical sciences. Analytical Chemistry. 86 (7), 3240-3253 (2014).
  10. Markstedt, K., Mantas, A., Tournier, I., Martínez Ávila, H., Hägg, D., Gatenholm, P. 3D bioprinting human chondrocytes with nanocellulose-alginate bioink for cartilage tissue engineering applications. Biomacromolecules. 16 (5), 1489-1496 (2015).
  11. Sultan, S., Mathew, A. P. 3D printed scaffolds with gradient porosity based on a cellulose nanocrystal hydrogel. Nanoscale. 10, 4421-4431 (2018).
  12. Sultan, S., Siqueira, G., Zimmermann, T., Mathew, A. P. 3D printing of nano-cellulosic biomaterials for medical applications. Current Opinion in Biomedical Engineering. 2, 29-34 (2017).
  13. Sultan, S., Abdelhamid, H. N., Zou, X., Mathew, A. P. CelloMOF: Nanocellulose Enabled 3D Printing of Metal-Organic Frameworks. Advanced Functional Materials. , 1805372-1805384 (2018).
  14. Siqueira, G., et al. Cellulose Nanocrystal Inks for 3D Printing of Textured Cellular Architectures. Advanced Functional Materials. 27 (12), 1604619-1604629 (2017).
  15. Wang, J., et al. All-in-One Cellulose Nanocrystals for 3D Printing of Nanocomposite Hydrogels. Angewandte Chemie International Edition. 57 (9), 2353-2356 (2018).
  16. Hausmann, M. K., et al. Dynamics of Cellulose Nanocrystal Alignment during 3D Printing. ACS Nano. 12 (7), 6926-6937 (2018).
  17. Liu, Y., et al. Nanoscale assembly of cellulose nanocrystals during drying and redispersion. ACS Macro Letters. 7 (2), 172-177 (2018).
  18. Murphy, S. V., Atala, A. 3D bioprinting of tissues and organs. Nature Biotechnology. 32 (8), 773-785 (2014).
  19. Pati, F., et al. Printing three-dimensional tissue analogues with decellularized extracellular matrix bioink. Nature communications. 5, 3935 (2014).
  20. Xia, Z., Jin, S., Ye, K. Tissue and organ 3D bioprinting. SLAS TECHNOLOGY: Translating Life Sciences Innovation. 23 (4), 301-314 (2018).
  21. Zhang, Q., Lu, H., Kawazoe, N., Chen, G. Pore size effect of collagen scaffolds on cartilage regeneration. Acta Biomaterialia. 10 (5), 2005-2013 (2014).
  22. Loh, Q. L., Choong, C. Three-dimensional scaffolds for tissue engineering applications: role of porosity and pore size. Tissue Engineering, Part B: Reviews. 19 (6), 485-502 (2013).
  23. Bružauskaitė, I., Bironaitė, D., Bagdonas, E., Bernotienė, E. Scaffolds and cells for tissue regeneration: different scaffold pore sizes-different cell effects. Cytotechnology. 68 (3), 355-369 (2016).
  24. Zhang, L., Hu, J., Athanasiou, K. A. The role of tissue engineering in articular cartilage repair and regeneration. Critical Reviews™ in Biomedical Engineering. 37 (1-2), (2009).
  25. Athanasiou, K., Rosenwasser, M., Buckwalter, J., Malinin, T., Mow, V. Interspecies comparisons of in situ intrinsic mechanical properties of distal femoral cartilage. Journal of Orthopaedic Research. 9 (3), 330-340 (1991).
  26. Schinagl, R. M., Gurskis, D., Chen, A. C., Sah, R. L. Depth-dependent confined compression modulus of full-thickness bovine articular cartilage. Journal of Orthopaedic Research. 15 (4), 499-506 (1997).
  27. Athanasiou, K., Niederauer, G., Schenck, R. Biomechanical topography of human ankle cartilage. Annals Biomedical Engineering. 23 (5), 697-704 (1995).
  28. Athanasiou, K. A., Liu, G. T., Lavery, L. A., Lanctot, D. R., Schenck, R. C. Biomechanical topography of human articular cartilage in the first metatarsophalangeal joint. Clinical Orthopaedics and Related Research. 348, 269-281 (1998).
  29. Guilak, F., Jones, W. R., Ting-Beall, H. P., Lee, G. M. The deformation behavior and mechanical properties of chondrocytes in articular cartilage. Osteoarthritis and Cartilage. 7 (1), 59-70 (1999).
  30. Mathew, A. P., Oksman, K., Karim, Z., Liu, P., Khan, S. A., Naseri, N. Process scale up and characterization of wood cellulose nanocrystals hydrolysed using bioethanol pilot plant. Industrial Crops and Products. 58, 212-219 (2014).
  31. Compton, B. G., Lewis, J. A. 3D-printing of lightweight cellular composites. Advanced Materials. 26 (34), 5930-5935 (2014).
  32. Sarem, M., Moztarzadeh, F., Mozafari, M. How can genipin assist gelatin/carbohydrate chitosan scaffolds to act as replacements of load-bearing soft tissues. Carbohydrate Polymers. 93 (2), 635-643 (2013).
  33. Chia, H. N., Hull, M. Compressive moduli of the human medial meniscus in the axial and radial directions at equilibrium and at a physiological strain rate. Journal of orthopaedic research. 26 (7), 951-956 (2008).
  34. Zhang, K., Fan, Y., Dunne, N., Li, X. Effect of microporosity on scaffolds for bone tissue engineering. Regenerative biomaterials. 5 (2), 115-124 (2018).
  35. Lin, N., Dufresne, A. Nanocellulose in biomedicine: Current status and future prospect. European Polymer Journal. 59, 302-325 (2014).
  36. Domingues, R. M., Gomes, M. E., Reis, R. L. The potential of cellulose nanocrystals in tissue engineering strategies. Biomacromolecules. 15 (7), 2327-2346 (2014).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

1463D

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены