JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

В протоколе описан метод вмешательства Tuina на кроличьей модели остеоартроза коленного сустава.

Аннотация

Остеоартроз коленного сустава (КОА) в основном характеризуется дегенеративными изменениями хряща коленного сустава и окружающих мягких тканей. Эффективность препарата Туина в лечении КОА подтверждена, но основной механизм лечения требует изучения. Это исследование направлено на создание научно обоснованной модели кроликов КОА, обработанных Tuina, чтобы выявить основные механизмы. Для этого 18 6-месячных новозеландских кроликов-самцов были случайным образом разделены на бутафорскую, модельную и туинскую группы, по 6 кроликов в каждой группе. Модель КОА была создана путем введения 4% раствора папаина в полость коленного сустава. В группе Туйна в течение 4 недель проводилась операция Туйна в сочетании с методом ротационной коррекции коленного сустава. В бутафорских и модельных группах выполнялись только стандартные захваты и фиксации. В конце 1-недельного вмешательства наблюдался диапазон движений коленного сустава (ROM) и проводилось окрашивание хряща гематоксилин-эозином (HE). Исследование показывает, что Tuina может ингибировать апоптоз хондроцитов, восстанавливать хрящевую ткань и восстанавливать ROM коленного сустава. В заключение, это исследование демонстрирует научную осуществимость лечения Туина для модельных кроликов с КОА, подчеркивая его потенциальное применение в изучении КОА и подобных состояний, связанных с коленным суставом.

Введение

Остеоартрит коленного сустава (КОА) — это дегенеративное заболевание коленного сустава, которое в основном проявляется болью в колене, отеком, деформацией и ограничением движений, с высоким уровнем инвалидности и более высокой распространенностью у женщин: в 2019 году во всем мире насчитывалось 527,81 миллиона пациентов с остеоартритом, а его глобальная распространенность составляет 60,6% от общей глобальной распространенности ОА1. Клинически лечение КОА принято делить на нехирургические и хирургические методы лечения. К нехирургическим методам лечения относятся физиотерапия, фармакотерапия и инъекционная терапия обогащенной тромбоцитами плазмы 2,3. Туйна – распространенный, безопасный, надежный и эффективный метод лечения в китайской медицине. В этом исследовании используется Tuina в сочетании с методом ротационной коррекции коленного сустава для лечения КОА. Методы Туина, такие как ротационное разминание и метод надавливания, могут сбалансировать мышечную ткань, уменьшить боль, регулировать уровень воспалительного фактора, улучшить метаболизм тканей и ингибировать дегенерацию суставного хряща 4,5. Метод ротационной коррекции коленного сустава может отрегулировать выравнивание костей и суставов нижних конечностей, улучшить щель в коленном суставе, восстановить нормальную силовую линию и сбалансировать биомеханику нижних конечностей 6,7,8,9. Упражнения с отягощениями могут увеличить мышечную массу и силу, а также способствовать обновлению хрящевой ткани10,11. Предварительное исследование показало, что этот протокол Tuina значительно более эффективен, чем пероральные капсулы глюкозамина сульфата, при лечении КОА, с более быстрым началом действия и значительным ингибированием дегенерации хондроцитов и восстановлением поврежденной хрящевой ткани12. При лечении КОА, по сравнению с терапией Туйна, нестероидные противовоспалительные препараты имеют побочные эффекты и неудовлетворительную долгосрочную эффективность, относительно высокие хирургические риски и затраты, требуют определенных показаний к хирургическому лечению, с послеоперационными проблемами и перипротезными осложнениями13,14,15. По сравнению с медикаментозной терапией и хирургическим вмешательством, лечение КОА Tuina имеет ряд преимуществ, включая снижение побочных эффектов, снижение риска, повышенную безопасность, экономическую эффективность и более длительную эффективность. Кроме того, он может эффективно облегчить боль в коленном суставе, отек, щелканье и ограничение движений 6,13,16,17.

Однако механизм лечения КОА Туина нуждается в уточнении, что ограничивает совершенствование и совершенствование протокола лечения КОА. Поэтому изучение механизма вмешательства туина при КОА с помощью экспериментов на животных является эффективным методом. Кролики, по сравнению с крысами, обладают покладистым темпераментом и более крупными коленными суставами. Анатомическое строение и биохимические показатели хряща аналогичны таковым у человека, поэтому он является подходящим предметом для изучения механизма заболевания коленного сустава Tuina18. Модель КОА, созданная путем инъекции папаина в полость коленного сустава кроликов, имеет такие преимущества, как короткое время моделирования, снижение травматизма, высокая вероятность успеха, высокая выживаемость и патологический механизм, сходный с КОА19. Это исследование направлено на создание научно обоснованного экспериментального протокола на животных для вмешательства Туина при КОА и изучение механизма Туины.

протокол

Исследование было одобрено комитетом по этике Аффилированной больницы Шаньдунского университета традиционной китайской медицины (номер одобрения: 2020-29).

1. Подопытные животные

  1. Выращивание 18 6-месячных новозеландских кроликов (2,75 ± 0,25 кг) в стандартных одноместных клетках (цикл свет/темнота 12 часов, температура 20-24 °C, влажность воздуха 40%-60%).

2. Метод группировки

  1. Выберите 6 из 18 новозеландских кроликов в качестве фиктивной группы, используя метод случайных чисел, и назначьте оставшихся 12 кроликов в группу моделирования.
  2. После успешного моделирования разделите модельную группу кроликов на модельную и туйскую группы по методу случайных чисел, по 6 кроликов в каждой группе.
  3. Выполните интервенцию Туйна в группе Туйна. Выполните те же захваты и фиксации в бутафорской и модельной группе без Туйны. Оперируйте через день в течение 4 недель (рис. 1).

3. Создание модели КОА

  1. Проводят адаптивное кормление кроликов в стандартных условиях на 1 неделе. Свободный доступ к воде и пище. Положите кроликов на правый бок в коробки для фиксации кроликов, чтобы успокоить их на 15 минут в день. Зафиксируйте их головки на пластинах, фиксирующих голову. Закрепите крепежные пластины и винты, чтобы кролики не могли двигаться. Надевайте защитные перчатки при захвате и фиксации кроликов (рисунок 1).
  2. На 1-й, 4-й и 7-й дни 2-й недели поместите всех 18 кроликов на правый бок в коробки для фиксации кроликов (рисунок 1). Выполните нижеперечисленные операции.
  3. Ввести 3% пентобарбитал натрия (1 мл/кг) в краевую ушную вену кролика. Побрейте левый коленный сустав кролика бритвой животного происхождения, в результате чего на открытой коже не останется волос.
  4. Продезинфицируйте левый коленный сустав кролика изнутри наружу, используя медицинский йодофор и 75% спирт (рисунок 2А).
  5. Согните левый коленный сустав кролика под углом 60°. Вставьте иглу (22G, 0,7 мм x 30 мм) от Waixiyan. Вводят 4% раствор папаина (0,1 мл/кг, в среднем 0,275 мл для животного весом 2,5 кг) в полость коленного сустава моделируемой группы. Ввести равное количество 0,9% раствора натрия хлорида в фиктивную группу. Эта инъекционная доза хорошо переносится животным, не вызывая признаков боли или дистресса (Рисунок 2B).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Вайсиянь (EX-LE5) расположен в латеральной выемке надколенной связки, а Нейсиянь (EX-LE4) расположен в медиальной выемке надколенной связки20,21,22.
  6. Нажмите на отверстие в течение 2 минут, чтобы избежать пролития раствора.
  7. Расположите руки выше и ниже левого коленного сустава кролика. Мягко и пассивно согните коленный сустав кролика и раздвиньте его 10 раз в пределах физиологического диапазона движений (ROM), чтобы раствор равномерно проник в полость коленного сустава15. Наблюдайте за кроликом каждые 8 часов в течение всего периода лепки. Вводят бупренорфин SR (0,18 мг/кг), когда кролики проявляют признаки прятания, дрожи конечностей, поверхностного и учащенного дыхания или даже укусов и царапаний.
  8. На 7-й неделе наблюдайте за опухшим левым коленом кролика в согнутом положении, с повышенным мышечным тонусом вокруг колена с узелками и стриями, усиленной местной реакцией на болезненное раздражение, снижением ROM колена, хромой походкой и смещением центра тяжести в здоровую сторону. Это определяет успешность модели КОА (рис. 1, рис. 2С)23,24.

4. Манипуляции с туиной

  1. Перед манипуляцией с Туиной выполните тренировку с помощью прибора для определения параметров техники Туйна. Тренируйтесь по 1 часу в день в течение 1 месяца у одного и того же специалиста.
    1. Выполните ротационный метод замешивания и прессования большим пальцем на платформе моделирования манипуляций Tuina с усилием 5 Н и частотой 60 раз/мин (Рисунок 3A, C).
    2. Проанализируйте силу в трех направлениях по осям X, Y и Z с помощью программного обеспечения для обработки параметров манипуляций Tuina и проверьте величину, частоту и время действия силы, отображаемые на экране (рис. 3B, D).
    3. Оцените механические параметры манипуляций Tuina и стандартизируйте манипуляции Tuina с помощью программного обеспечения во время обучения. Поддерживайте стандартизированный ротационный метод замешивания и прессования большим пальцем с усилием 5 Н, частотой 60 раз/мин и непрерывным временем работы 10 мин. Стандартизированная количественная форма сигнала манипуляции приведена на рисунке 3B, D 25,26,27.
  2. Положите кролика на правый бок в коробку для фиксации кроликов. Осторожно погладьте кролика в течение 10 секунд, чтобы успокоить и расслабить кролика21. Затем выполните вмешательство Туины.
  3. Выполняйте метод ротационного разминания, положив большой палец на левую околоколенную мышцу кролика, сухожильные узлы и коленную чашечку, с манипуляциями вверх и вниз туда и обратно с силой 5 Н и частотой 60 раз/мин в течение 5 мин.
  4. Большим пальцем нажмите Янлинцюань (GB 34), Иньлинцюань (SP 9), Вайсиянь (EX-LE5), Нэйсиянь (EX-LE4), Хедин (EX-LE2), Сюэхай (SP 10), Лянцю (ST 34) и Вэйчжун (BL 40)20,21,22 с усилием 5 Н и частотой 60 раз/мин и воздействуйте на каждую точку в течение 30 с.
  5. Выполните ротационный метод коррекции коленного сустава кролика и выполняйте его 3 раза отдельно для каждого животного в группе.
    1. Зафиксируйте бедренную кость одной рукой. Сначала поместите другую руку за коленный сустав, затем зафиксируйте латеральный и медиальный мыщелки большеберцовой кости большим и безымянным пальцами соответственно. Зафиксируйте подколенную ямку указательным и средним пальцами. Приложите тяговое и скручивающее усилие.
    2. Зафиксируйте бедренную кость одной рукой. Зафиксируйте медиальный и латеральный края коленной чашечки большим пальцем и мизинцем другой руки. Зафиксируйте основание надколенника указательным, средним и безымянным пальцами. Приложите скручивающее усилие.
    3. Держите направление тяговой силы параллельно длинной оси большеберцовой кости, а направление скручивающей силы на одной линии с направлением нижнего Сиянь. Пальцами удерживайте кожу на месте, чтобы избежать трения между кожей и пальцами.

5. Измерение ROM коленного сустава

ПРИМЕЧАНИЕ: Перед измерением успокойте кролика. Статистик измерений и оператор отличаются друг от друга.

  1. Измеряйте подвижность левого коленного сустава кроликов каждой группы в начале эксперимента и в конце каждой недели.
  2. Положите кролика на правый бок в коробку для фиксации кролика и зафиксируйте его левую бедренную кость одной рукой.
  3. Совместите центр окружности медицинского артроскопа с латеральным центром левого коленного сустава кролика. Вытяните фиксирующий рычаг так, чтобы он был параллелен удлинителю линии, соединяющей центр круга с большим вертелом. Вытяните подвижную руку так, чтобы она была параллельна продольной оси большеберцовой кости.
  4. Другую руку положите на продольную ось большеберцовой кости, примерно в 9 см от коленного сустава. Вручную приложите крутящий момент примерно 750-850 g при угловой скорости 3°/с28.
  5. Выполняйте это упражнение до тех пор, пока коленный сустав кролика не перестанет двигаться. Запишите количество градусов, которое показывает гониометр, когда сустав перестает двигаться; это ПЗУ коленного сустава. При чтении убедитесь, что линия взгляда перпендикулярна поверхности линейки.
  6. Измерьте ПЗУ для каждого колена 3х и возьмите среднее значение28.

6. Окрашивание гематоксилин-эозином (ГЭ)

  1. Отбор проб
    1. Через 1 неделю после окончания вмешательства (Рисунок 1) поместите кролика на правый бок в коробку для фиксации кроликов (кролики с большей вероятностью останутся расслабленными, когда будут лежать на правом боку). Ввести пентобарбитон (100 мг/кг) в краевую вену уха кролика для гуманной эвтаназии29,30.
    2. Быстро откройте левую полость колена скальпелем, ножницами и гемостатическими щипцами, чтобы удалить мягкие ткани, прикрепленные вокруг хряща дистального отдела бедренной кости.
    3. Возьмите образец хряща и кости дистального отдела бедренной кости размером примерно 1 см х 1 см с помощью щипцов для прокусывания и поместите его в физиологический раствор для очистки.
  2. Фиксация и декальцинация
    1. Поместите хрящ в 4% раствор параформальдегида и зафиксируйте на 72 ч.
    2. Промыть в проточной воде в течение 12 ч. Декальцинировать в растворе для декальцинации этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА) в течение 6 недель. Меняйте раствор для декальцинации ЭДТА каждые 3 дня. Определяют конечную точку декальцинации, когда костная ткань становится мягкой и гибкой, легко сгибается и плавно прокалывается иглой31.
  3. Обезвоживание закладных секций
    1. Поместите образец в автоматический дегидратор для обезвоживания.
    2. Навощенную и обрезанную ткань поместите на дно квадратной емкости с растворенным парафином на 1 ч. Поместите их в охлаждающую духовку, пока они не остынут и не затвердеют в твердые блоки. Нарежьте залитый парафином блок ткани в слайсере до толщины 4 мкм.
    3. Разверните срезы в отбеливателе, затем поместите их на клейкие предметные стекла, пронумеруйте их и высушите с помощью машины для выпечки ломтиков и духовки.
  4. Депарафинизация и увлажнение
    1. Выпекать секции при температуре 65 °C в течение 60 минут.
    2. Замочите срезы в ксилоле на 7 минут, затем еще 2 цикла замачивания в свежем ксилоле на 7 минут каждый.
    3. Замочите ломтик в безводном этаноле на 5 минут, а затем замочите на 2 минуты каждый в 95% этаноле, 85% этаноле и 75% этаноле.
    4. Замочите срезы в дистиллированной воде на 2 мин.
  5. Окрашивание гематоксилином: Окрашивание срезов гематоксилином в течение 20 с. Промойте срезы в проточной воде. Замочить срезы в солянокислом этаноловом фракционировании в течение 3 с. Промыть участки в водопроводной воде в течение 5 минут.
  6. Повторное окрашивание эозином: Окрашивание участков эозином в течение 30 с. Промойте срезы водопроводной водой.
  7. Обезвоживание для прозрачности образца
    1. Поместите секции в 95%-ный этиловый спирт дважды по 3 с каждый, а затем поместите в безводный этанол на 3 с.
    2. Снова поместите ломтики в безводный этанол на 1 минуту, а затем 2 цикла промывки ксилолом в течение 1 минуты каждый.
  8. Запечатывание ломтиков: Выньте ломтики, капните нейтральный герметик для смолы, накройте покровным стеклом и оставьте ломтики сохнуть в вытяжном шкафу до исчезновения запаха.
  9. Фотографирование образца: Наблюдение и фотографирование под углом зрения светового микроскопа с разрешением 100x.
  10. Оценка: Оцените хрящевую ткань по шкале Манкина для каждой группы32.

7. Анализ данных

  1. Статистически проанализировать экспериментальные данные с помощью аналитического программного обеспечения. Когда данные были подвергнуты нормальному распределению, сравните две группы выборок с помощью t-критерия и несколько групп с помощью одностороннего ANOVA.
  2. Выражайте результаты в виде среднего значения ± стандартного отклонения (SD). Представление результатов в виде статистических графиков с помощью коммерческого программного обеспечения. Различия были статистически значимыми при р < 0,05.

Результаты

Степень ограничения подвижности коленного сустава и повреждения хрящевой ткани отражает тяжесть КОА. ROM коленного сустава отражает степень ограничения движений коленного сустава. Чем меньше ROM коленного сустава, тем серьезнее ограничение подвижности коленного сустава. Напротив, чем ?...

Обсуждение

Разработка экспериментального протокола особенно важна для изучения механизма применения туины при лечении КОА. Моделирование КОА проводили на кроликах путем инъекции папаина в Вайсиянь. Вайсянь расположен в латеральной крипте надколенной связки, которую легко обнаружить, а суставн...

Раскрытие информации

Авторы заявляют об отсутствии потенциального конфликта интересов.

Благодарности

Эта работа была поддержана Научно-техническим проектом традиционной китайской медицины провинции Шаньдун (2021Q080) и Проектом наследования Академической школы традиционной китайской медицины Цилу [Lu-Wei-Letter (2022) 93].

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
0.9 % sodium chloride injectionSichuan Keren Pharmaceutical Co.Z22121903
-20°C refrigeratorHaierBD-328WL
4 % fixative solutionSolarbioP1110
4°C refrigeratorHaierSC-315DS
Anhydrous ethanolSinopharm
Automatic tissue dewatering machineDakowei (Shenzhen) Medical Equipment Co.HP30
Blast drying ovenShanghai Yiheng Scientific Instruments Co.DHG-9070A
CoverslipBiyuntianFCGF50
Electric thermostat water bathShanghai Yiheng Scientific Instruments Co.HWS-26
Embedding freezing tableChangzhou Paishijie Medical Equipment Co.BM450
Embedding machineChangzhou Paishijie Medical Equipment Co.BM450A
Ethylenediaminetetraacetic acid decalcification solutionServicebioG1105-500ML
Fluorescent inverted microscopeLeicaLeica DM IL LED
Hematoxylin-eosin staining kitCisco JetEE0012
Hydrochloric acidLaiyang Economic and Technological Development Zone Fine Chemical Plant
Medical joint goniometerKOSLO
Neutral gumCisco JetEE0013
Normal-grade male New Zealand rabbitJinan Xilingjiao Breeding and Breeding CenterSCXK (Lu) 2020 0004
Papain(3000 U/mg)BiossD10366
Pathological tissue bleaching and drying instrumentChangzhou Paishijie Medical Equipment Co.PH60
Pet electric clippersCodosCP-3180
Rabbit fixing boxany brand
Rotating SlicerLeica531CM-Y43
Tuina technique parameter determination instrumentShanghai DuKang Instrument Equipment Co. Ltd.ZTC-figure-materials-2386
VentilatorTALY ELECTRICC32
XyleneFuyu Reagent

Ссылки

  1. Long, H. B., et al. Prevalence trends of site-specific osteoarthritis from 1990 to 2019: findings from the global burden of disease study 2019. Arthritis & Rheumatology. 74 (7), 1172-1183 (2022).
  2. Tschopp, M., et al. A randomized trial of intra-articular injection therapy for knee osteoarthritis. Investigative Radiology. 58 (5), 355-362 (2023).
  3. Buchanan, W. W., Kean, C. A., Kean, W. F., Rainsford, K. D. Osteoarthritis. Inflammopharmacology. , (2023).
  4. Wang, W. Y., et al. A randomized, parallel control and multicenter clinical trial of evidence-based traditional Chinese medicine massage treatment VS External Diclofenac Diethylamine Emulgel for the treatment of knee osteoarthritis. Trials. 23 (1), 555 (2022).
  5. Wang, M. N., et al. Mechanism of traditional Chinese medicine in treating knee osteoarthritis. Journal of Pain Research. 13, 1421-1429 (2020).
  6. Katz, J. N., Arant, K. R., Loeser, R. F. Diagnosis and treatment of hip and knee osteoarthritis: A review. The Journal of the American Medical Association. 325 (6), 568-578 (2021).
  7. Chang, A., et al. The relationship between toe-out angle during gait and progression of medial tibiofemoral osteoarthritis. Annals of the Rheumatic Diseases. 66, 1271-1275 (2007).
  8. Jenkyn, T. R., Hunt, M. A., Jones, I. C., Giffin, J. R., Birmingham, T. B. Toe-out gait in patients with knee osteoarthritis partially transforms external knee adduction moment into flexion moment during early stance phase of gait: a tri-planar kinetic mechanism. Journal of Biomechanics. 41 (2), 276-283 (2008).
  9. Brouwer, G. M., et al. Association between valgus and varus alignment and the development and progression of radiographic osteoarthritis of the knee. Arthritis & Rheumatism. 56 (4), 1204-1211 (2007).
  10. Liao, C. D., et al. Effects of protein supplementation combined with resistance exercise training on walking speed recovery in older adults with knee osteoarthritis and sarcopenia. Nutrients. 15 (7), 1552 (2023).
  11. Thudium, C. S., et al. Cartilage tissue turnover increases with high-compared to low-intensity resistance training in patients with knee OA. Arthritis Research & Therapy. 25 (1), 22 (2023).
  12. Zheng, L. J., et al. Shutiao Jingjin massage can stabilize intracellular environment of rabbit chondrocytes following knee osteoarthritis-induced cartilage injury. Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu. 27, (2023).
  13. Liu, K. Q., et al. Efficacy and safety of Tuina (Chinese therapeutic massage) for knee osteoarthritis: A randomized, controlled, and crossover design clinical trial. Frontiers in Medicine. 10, 997116 (2023).
  14. Wang, Z., et al. Systematic Review and Network Meta-analysis of Acupuncture Combined with Massage in Treating Knee Osteoarthritis. BioMed Research International. 2022, 4048550 (2022).
  15. Li, Y. Y., et al. Therapeutic effect of acupotomy at Sanheyang for cartilage collagen damage in moderate knee osteoarthritis: a rabbit model. Journal of Inflammation Research. 16, 2241-2254 (2023).
  16. Guo, G. X., et al. Cerebral mechanism of Tuina analgesia in management of knee osteoarthritis using multimodal MRI: study protocol for a randomised controlled trial. Trials. 23 (1), 694 (2022).
  17. Perlman, A., et al. Efficacy and safety of massage for osteoarthritis of the knee: a randomized clinical trial. Journal of General Internal Medicine. 34 (3), 379-386 (2019).
  18. Chen, B. J., et al. Aerobic exercise combined with glucosamine hydrochloride capsules inhibited the apoptosis of chondrocytes in rabbit knee osteoarthritis by affecting TRPV5 expression. Gene. 830, 146465 (2022).
  19. Rasheed, M. S., Ansari, S. F., Shahzadi, I. Formulation, characterization of glucosamine loaded transfersomes and in vivo evaluation using papain induced arthritis model. Scientific Reports. 12 (1), 19813 (2002).
  20. Li, Z. R. Experimental acupuncturology. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. 2003, 314-319 (2003).
  21. Hu, Y. L. Manual of practical animal acupuncture. Beijing: China Press of Agriculture. 2003, 286-298 (2014).
  22. Liu, J., et al. Effects of "knot-loosing" of acupotomy on motor function and morphological changes of knee joint in knee osteoarthritis rabbits. Zhen Ci Yan Jiu. 46 (2), 129-135 (2021).
  23. Li, Q., et al. The protective effects and mechanism of Ruyi Zhenbao Pill, a Tibetan medicinal compound, in a rat model of osteoarthritis. Journal of Ethnopharmacology. 308, 116255 (2023).
  24. Kwon, M., Nam, D., Kim, J. Pathological characteristics of monosodium iodoacetate-induced osteoarthritis in rats. Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 20 (3), 435-446 (2023).
  25. Wang, J. G., Tang, C. L. Experimental Tuina science. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. Chinese. , (2017).
  26. Fang, M., Song, B. L. Tuina science. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. , (2016).
  27. Jin, X. Y., Yu, Y. Y., Lin, Y. Y., Yang, J. P., Chen, Z. H. Tendon-regulating and bone-setting manipulation promotes the recovery of synovial inflammation in rabbits with knee osteoarthritis via the TLR4-MyD88-NF-κB signaling pathway. Annals of Translational Medicine. 11 (6), 245 (2023).
  28. Wang, M., Liu, C., Xiao, W. Intra-articular injection of hyaluronic acid for the reduction in joint adhesion formation in a rabbit model of knee injury. Knee Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy: Official Journal of the ESSKA. 22 (7), 1536-1540 (2014).
  29. Xu, C., et al. Bacterial cellulose membranes used as artificial substitutes for dural defection in rabbits. International Journal of Molecular Sciences. 15 (6), 10855-10867 (2014).
  30. Leary, S., et al. AVMA guidelines for the euthanasia of animals: 2020 edition. Schaumburg: American Veterinary Medical Association. 2020, (2020).
  31. Amirtham, S. M., Ozbey, O., Kachroo, U., Ramasamy, B., Vinod, E. Optimization of immunohistochemical detection of collagen type II in osteochondral sections by comparing decalcification and antigen retrieval agent combinations. Clinical Anatomy. 33 (3), 343-349 (2020).
  32. Niazvand, F., et al. Curcumin-loaded poly lactic-co-glycolic acid nanoparticles effects on mono-iodoacetate-induced osteoarthritis in rats. Veterinary Research Forum: An International Quarterly Journal. 8 (2), 155-161 (2017).
  33. Liu, A., et al. Intra-articular injection of umbilical cord mesenchymal stem cells loaded with graphene oxide granular lubrication ameliorates inflammatory responses and osteoporosis of the subchondral bone in rabbits of modified papain-induced osteoarthritis. Frontiers in Endocrinology. 12, 822294 (2022).
  34. Hall, M. M. The accuracy and efficacy of palpation versus image-guided peripheral injections in sports medicine. Current Sports Medicine Reports. 12 (5), 296-303 (2013).
  35. Xing, L., et al. Traditional Chinese medicine ointment combined with Tuina therapy in treatment of pain and swelling after total knee arthroplasty. World Journal of Orthopedics. 13 (10), 932-939 (2022).
  36. Xu, H., et al. The effectiveness of Tuina in relieving pain, negative emotions, and disability in knee osteoarthritis: a randomized controlled trial. Pain Medicine. 24 (3), 244-257 (2023).
  37. Ding, N., et al. Mast cells are important regulator of acupoint sensitization via the secretion of tryptase, 5-hydroxytryptamine, and histamine. The Public Library of Science One. 13 (3), e0194022 (2018).
  38. Cai, F. H., Li, F. L., Zhang, Y. C., Li, P. Q., Xiao, B. Research on electroacupuncture parameters for knee osteoarthritis based on data mining. European Journal of Medical Research. 27 (1), 162 (2022).
  39. Mei, Z. G., Cheng, C. G., Zheng, J. F. Observations on curative effect of high-frequency electric sparkle and point-injection therapy on knee osteoarthritis. Journal of Traditional Chinese Medicine. 31 (4), 311-315 (2011).
  40. Xiao, G., et al. Effect of manipulation on cartilage in rats with knee osteoarthritis based on the Rho-associated protein kinase/LIM kinase 1/Cofilin signaling pathways. Journal of Traditional Chinese Medicine. 42 (2), 194-199 (2022).
  41. Wu, M. X., et al. Clinical study on the treatment of knee osteoarthritis of Shen-Sui insufficiency syndrome type by electroacupuncture. Chinese Journal of Integrative Medicine. 16 (4), 291-297 (2010).
  42. Richards, R. E., Andersen, M. S., Harlaar, J., van den Noort, J. C. Relationship between knee joint contact forces and external knee joint moments in patients with medial knee osteoarthritis: effects of gait modifications. Osteoarthritis Cartilage. 26 (9), 1203-1214 (2018).
  43. Shull, P. B., et al. Toe-in gait reduces the first peak knee adduction moment in patients with medial compartment knee osteoarthritis. Journal of Biomechanics. 46 (1), 122-128 (2013).
  44. Adouni, M., Shirazi-Adl, A. Partitioning of knee joint internal forces in gait is dictated by the knee adduction angle and not by the knee adduction moment. Journal of Biomechanics. 47 (7), 1696-1703 (2014).
  45. Kutzner, I., Trepczynski, A., Heller, M. O., Bergmann, G. Knee adduction moment and medial contact force--facts about their correlation during gait. The Public Library of Science One. 8 (12), e81036 (2013).
  46. Camacho-Cardenosa, A., et al. Resistance circuit training combined with hypoxia stimulates bone system of older adults: a randomized trial. Experimental Gerontology. 169, 111983 (2022).
  47. Babur, M. N., Siddiqi, F. A., Tassadaq, N., Arshad Tareen, M. A., Osama, M. Effects of glucosamine and chondroitin sulfate supplementation in addition to resistance exercise training and manual therapy in patients with knee osteoarthritis: A randomized controlled trial. The Journal of the Pakistan Medical Association. 72 (7), 1272-1277 (2022).
  48. Wang, H. N., et al. Effect of low-load resistance training with different degrees of blood flow restriction in patients with knee osteoarthritis: study protocol for a randomized trial. Trials. 23 (1), 6 (2022).
  49. Cheon, Y. H., et al. Relationship between decreased lower extremity muscle mass and knee pain severity in both the general population and patients with knee osteoarthritis: Findings from the KNHANES V 1-2. The Public Library of Science One. 12 (3), e0173036 (2017).
  50. Murton, A. J., Greenhaff, P. L. Resistance exercise and the mechanisms of muscle mass regulation in humans: acute effects on muscle protein turnover and the gaps in our understanding of chronic resistance exercise training adaptation. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 45 (10), 2209-2214 (2013).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

TuinaKOATuinaKOATuinaROMROM

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены