Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.
Мы описываем простую процедуру однокопийной хромосомной комплементации гена насоса оттока с использованием системы экспрессии на основе mini-Tn7 в сконструированный штамм Acinetobacter baumannii с дефицитом эффлюкса. Этот точный генетический инструмент позволяет контролировать экспрессию генов, что является ключом к характеристике насосов оттока у патогенов с множественной лекарственной устойчивостью.
Acinetobacter baumannii признан опасным грамотрицательным патогеном из-за его широкой устойчивости к антибиотикам. Крайне важно понять механизмы, лежащие в основе этой резистентности, чтобы разработать новые и эффективные терапевтические варианты. К сожалению, наша способность исследовать эти механизмы у A. baumannii ограничена нехваткой подходящих инструментов для генетических манипуляций. В данной работе мы описываем методы использования хромосомной системы на основе мини-Tn7 для достижения однокопийной экспрессии гена у штамма A. baumannii , у которого отсутствуют функциональные механизмы оттока типа RND. Однокопийная вставка и индуцированная экспрессия насоса эффлюкса весьма выгодны, так как присутствие оперонов оттока RND на плазмидах с высоким числом копий часто плохо переносится бактериальными клетками. Кроме того, включение рекомбинантных векторов экспрессии мини-Tn7 в хромосому суррогатного хозяина A. baumannii с повышенной чувствительностью к эффлюксу помогает обойти помехи от других насосов оттока. Эта система полезна не только для исследования неохарактеризованных насосов бактериального оттока, но и для оценки эффективности потенциальных ингибиторов, нацеленных на эти насосы.
Acinetobacter baumannii является наиболее приоритетным патогеном Всемирной организации здравоохранения из-за его устойчивости ко всем классам антибиотиков1. Это условно-патогенный микроорганизм, поражающий в основном госпитализированных, травмированных или людей с ослабленным иммунитетом. A. baumannii в значительной степени уклоняется от антибиотиков с помощью насосов, наиболее актуальными из которых является семейство экспортеров резистентно-узелкового деления (RND)2. Понимание того, как эти насосы работают механически, позволит разработать целевые терапевтические варианты.
1. Подготовка эксперимента
Процедура хромосомного введения занимает всего 2 часа в течение 3 дней, чтобы увидеть результат - колонии, растущие на селективной агаровой пластине (рис. 1A-C). Ожидаемое число колоний на трансформационной пластине зависит от деформации: можно увидеть 20-3.......
Несмотря на то, что эта процедура хромосомной вставки индуцируемой системы экспрессии генов с одной копией у A. baumannii технически проста и не трудоемка, необходимо подчеркнуть несколько важных этапов. Во-первых, подготовка компетентных клеток должна производиться на льду, насколько.......
Авторам нечего раскрывать.
Эта работа была поддержана грантом Discovery Grant от Совета по естественным наукам и инженерии Канады для AK. Схемы, используемые на рисунках, созданы с помощью BioRender.com.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.2 mL PCR tube | VWR | 20170-012 | For colony boil preparations and PCR reactions |
1.5 mL microfuge tubes | Sarstedt | 72-690-301 | General use |
13-mL culture tubes, Pyrex | Fisher | 14-957K | Liquid culture vessels |
6x DNA loading buffer | Froggabio | LD010 | Agarose gel electrophoresis sample loading dye |
Acetic acid, glacial | Fisher | 351271-212 | Agarose gel running buffer component |
Agar | Bioshop | AGR003 | Solid growth media |
Agarose | BioBasic | D0012 | Electrophoretic separation of PCR reaction products; used at a concentration of 0.8–2% |
Agarose gel electrophoresis unit | Fisher | 29-237-54 | Agarose gel electrophoresis; separation of PCR reaction products |
Carbenicillin | Fisher | 50841231 | Selective media |
Culture tube closures | Fisher | 13-684-138 | Stainless steel closure for 13-mL culture tubes |
Deoxynucleotide triphosphate (dNTP) set | Biobasic | DD0058 | PCR reaction component; supplied as 100 mM each dATP, dCTP, dGTP, dTTP; mixed and diluted for 10 mM each dNTP |
Dry bath/block heater | Fisher | 88860023 | Isotemp digital dry bath for boil preparations |
Electroporation cuvettes | VWR | 89047-208 | 2 mm electroporation cuvettes with round cap |
Electroporator | Cole Parmer | 940000009 | 110 VAC, 60 Hz electroporator |
Ethidium bromide | Fisher | BP102-1 | Visualization of PCR reaction products and DNA marker in agarose gel |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | VWR | CA-EM4050 | Agarose gel running buffer component |
Gentamicin | Biobasic | GB0217 | For the preparation of selective media |
Glycerol | Fisher | G33 | Preparation of bacterial stocks for long-term storage in an ultra-low freezer |
Incubator (shaking) | New Brunswick Scientific | M1352-0000 | Excella E24 Incubator Shaker for liquid culture growth |
Incubator (static) | Fisher | 11-690-550D | Isotemp Incubator Oven Model 550D for solid (LB agar) culture growth |
Inoculation loop | Sarstedt | 86.1562.050 | Streaking colonies onto agar plates |
Inoculation spreader | Sarstedt | 86.1569.005 | Spreading of culture onto agar plates |
Lysogeny broth (LB) broth, Lennox | Fisher | BP1427 | Liquid growth media (20 g/L: 5 g/L sodium chloride, 10 g/L tryptone, 5 g/L yeast extract) |
Microfuge | Fisher | 75002431 | Sorvall Legend Micro 17 for centrifugation of samples |
Mini-centrifuge | Fisher | S67601B | Centrifugation of 0.2 mL PCR tubes |
Petri dishes | SPL Life Sciences | 10090 | For solid growth media (agar plates): 90 x 15 mm |
Pipettes | Mandel | Various | Gilson single channel pipettes (P10, P20, P200, P1000) |
Power supply | Biorad | 1645050 | PowerPac Basic power supply for electrophoresis |
Primers | IDT | NA | PCR reaction component; specific to gene of interest; prepared at 100 μM as directed on the product specification sheet |
Sucrose | BioBasic | SB0498 | For the preparation of counterselective media for removal of the pFLP2ab plasmid from transformed A. baumannii |
Taq DNA polymerase | FroggaBio | T-500 | PCR reaction component; polymerase supplied with a 10x buffer |
Thermal cycler | Biorad | 1861096 | Model T100 for PCR |
Toothpicks | Fisher | S24559 | For patching colonies onto agar plates |
Trizma base | Sigma | T1503 | Agarose gel running buffer component |
Ultrapure water | Millipore Sigma | ZLXLSD51040 | MilliQ water purification system: ultra pure water for media and solution preparation, and cell washing |
Wide range DNA marker | Biobasic | M103R-2 | Size determination of PCR products on an agarose gel |
Wooden inoculating sticks | Fisher | 29-801-02 | Inoculating cultures with colonies from agar plates |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеСмотреть дополнительные статьи
This article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены