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우리는 mini-Tn7 기반 발현 시스템을 사용하여 Acinetobacter baumannii의 조작된 유출 결핍 균주에 유출 펌프 유전자의 단일 복제 염색체 보완을 위한 손쉬운 절차를 설명합니다. 이 정밀한 유전 도구는 유전자 발현을 제어할 수 있으며, 이는 다제내성 병원체에서 유출 펌프의 특성 분석에 핵심입니다.
아시네토박터 바우마니(Acinetobacter baumannii )는 항생제에 대한 광범위한 내성으로 인해 까다로운 그람 음성 병원체로 인식되고 있습니다. 새롭고 효과적인 치료 옵션을 설계하기 위해 이러한 내성 이면의 메커니즘을 이해하는 것이 중요합니다. 불행히도, A. baumannii 에서 이러한 메커니즘을 조사할 수 있는 우리의 능력은 적절한 유전자 조작 도구의 부족으로 인해 방해를 받고 있습니다. 여기서, 우리는 기능적 RND 유형 유출 메커니즘이 결여된 A. baumannii 균주에서 단일 복제 유전자 발현을 달성하기 위해 염색체 mini-Tn7 기반 시스템을 활용하는 방법을 설명합니다. single-copy insertion 및 inducible efflux pump 발현은 매우 유리한데, 이는 high-copy number plasmid에서 RND efflux operon의 존재가 종종 박테리아 세포에 의해 잘 견디지 못하기 때문입니다. 또한, 재조합 mini-Tn7 발현 벡터를 향상된 유출 민감도를 가진 대리 A. baumannii 숙주의 염색체에 통합하면 다른 유출 펌프의 간섭을 우회하는 데 도움이 됩니다. 이 시스템은 특성화되지 않은 박테리아 유출 펌프를 조사할 뿐만 아니라 이러한 펌프를 표적으로 하는 잠재적 억제제의 효과를 평가하는 데에도 유용합니다.
아시네토박터 바우마니(Acinetobacter baumannii )는 모든 종류의 항생제에 대한 내성으로 인해 세계보건기구(WHO)의 최우선 순위 병원체입니다1. 주로 입원, 부상 또는 면역력이 저하된 사람들에게 영향을 미치는 기회 병원체입니다. A. baumannii 는 유출 펌프 를 통해 항생제를 주로 회피하며, 가장 관련성이 높은 것은 RND(Resistance-Nodulation-Division) 수출업체제품군입니다 2. 이러한 유출 펌프가 기계적으로 어떻게 작동하는지 이해하면 표적 치료 옵션을 개발할 수 있습니다.
세포 과정을 구체적으로 구별할 수 있는 한 가지 일반적인 방법은 유전자 조작을 통해서입니다. 그러나 A. baumannii 유전자 연구에 사용할 수 있는 도구는 제한적이며, 실험 설계를 더욱 혼란스럽게 하기 위해 임상 분리물은 종종 유전자 조작에서 선택에 일상적으로 사용되는 항생제에 내성이 있습니다3. 특히 유출 펌프를 연구할 때 직면하는 두 번째 장애물은 종종 알려지지 않은 요인에 의해 엄격하게 규제되어 단일 펌프로 기능을 정확하게....
1. 실험 준비
염색체 삽입 절차는 선택적 한천 플레이트에서 자라는 결과 콜로니를 확인하는 데 3일 동안 총 2시간밖에 걸리지 않습니다(그림 1A-C). 형질전환 플레이트에서 예상되는 콜로니의 수는 균주에 따라 달라진다: attTn7 부위에 Tn7을 삽입하는 것이 특이적이고 효율적이기 때문에 20-30개 또는 수백 개의 콜로니를 볼 수 있다9. 형질전?.......
A. baumannii에서 유도 가능한 단일 복제 유전자 발현 시스템의 염색체 삽입을 위한 이 절차는 기술적으로 간단하고 노동 집약적이지 않지만 강조해야 할 몇 가지 중요한 단계가 있습니다. 첫째, 유능한 세포의 준비는 배지를 얼음처럼 차가운 물로 교체하는 동안 세포가 약해지기 때문에 가능한 한 얼음 위에서 수행되어야 합니다. 이상적으로는 원심분리 단계가 4°C에서 수행되지만 실온에서 ?.......
저자는 공개할 것이 없습니다.
이 연구는 캐나다 자연과학 및 공학 위원회(Natural Science and Engineering Council of Canada)가 AK에 제공한 디스커버리 그랜트(Discovery Grant)의 지원을 받았습니다. 그림에 사용된 회로도는 BioRender.com 로 작성됩니다.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.2 mL PCR tube | VWR | 20170-012 | For colony boil preparations and PCR reactions |
1.5 mL microfuge tubes | Sarstedt | 72-690-301 | General use |
13-mL culture tubes, Pyrex | Fisher | 14-957K | Liquid culture vessels |
6x DNA loading buffer | Froggabio | LD010 | Agarose gel electrophoresis sample loading dye |
Acetic acid, glacial | Fisher | 351271-212 | Agarose gel running buffer component |
Agar | Bioshop | AGR003 | Solid growth media |
Agarose | BioBasic | D0012 | Electrophoretic separation of PCR reaction products; used at a concentration of 0.8–2% |
Agarose gel electrophoresis unit | Fisher | 29-237-54 | Agarose gel electrophoresis; separation of PCR reaction products |
Carbenicillin | Fisher | 50841231 | Selective media |
Culture tube closures | Fisher | 13-684-138 | Stainless steel closure for 13-mL culture tubes |
Deoxynucleotide triphosphate (dNTP) set | Biobasic | DD0058 | PCR reaction component; supplied as 100 mM each dATP, dCTP, dGTP, dTTP; mixed and diluted for 10 mM each dNTP |
Dry bath/block heater | Fisher | 88860023 | Isotemp digital dry bath for boil preparations |
Electroporation cuvettes | VWR | 89047-208 | 2 mm electroporation cuvettes with round cap |
Electroporator | Cole Parmer | 940000009 | 110 VAC, 60 Hz electroporator |
Ethidium bromide | Fisher | BP102-1 | Visualization of PCR reaction products and DNA marker in agarose gel |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | VWR | CA-EM4050 | Agarose gel running buffer component |
Gentamicin | Biobasic | GB0217 | For the preparation of selective media |
Glycerol | Fisher | G33 | Preparation of bacterial stocks for long-term storage in an ultra-low freezer |
Incubator (shaking) | New Brunswick Scientific | M1352-0000 | Excella E24 Incubator Shaker for liquid culture growth |
Incubator (static) | Fisher | 11-690-550D | Isotemp Incubator Oven Model 550D for solid (LB agar) culture growth |
Inoculation loop | Sarstedt | 86.1562.050 | Streaking colonies onto agar plates |
Inoculation spreader | Sarstedt | 86.1569.005 | Spreading of culture onto agar plates |
Lysogeny broth (LB) broth, Lennox | Fisher | BP1427 | Liquid growth media (20 g/L: 5 g/L sodium chloride, 10 g/L tryptone, 5 g/L yeast extract) |
Microfuge | Fisher | 75002431 | Sorvall Legend Micro 17 for centrifugation of samples |
Mini-centrifuge | Fisher | S67601B | Centrifugation of 0.2 mL PCR tubes |
Petri dishes | SPL Life Sciences | 10090 | For solid growth media (agar plates): 90 x 15 mm |
Pipettes | Mandel | Various | Gilson single channel pipettes (P10, P20, P200, P1000) |
Power supply | Biorad | 1645050 | PowerPac Basic power supply for electrophoresis |
Primers | IDT | NA | PCR reaction component; specific to gene of interest; prepared at 100 μM as directed on the product specification sheet |
Sucrose | BioBasic | SB0498 | For the preparation of counterselective media for removal of the pFLP2ab plasmid from transformed A. baumannii |
Taq DNA polymerase | FroggaBio | T-500 | PCR reaction component; polymerase supplied with a 10x buffer |
Thermal cycler | Biorad | 1861096 | Model T100 for PCR |
Toothpicks | Fisher | S24559 | For patching colonies onto agar plates |
Trizma base | Sigma | T1503 | Agarose gel running buffer component |
Ultrapure water | Millipore Sigma | ZLXLSD51040 | MilliQ water purification system: ultra pure water for media and solution preparation, and cell washing |
Wide range DNA marker | Biobasic | M103R-2 | Size determination of PCR products on an agarose gel |
Wooden inoculating sticks | Fisher | 29-801-02 | Inoculating cultures with colonies from agar plates |
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