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Dans cet article

Résumé

Le protocole décrit une méthode d’intervention du Tuina dans un modèle d’arthrose du genou chez le lapin.

Résumé

L’arthrose du genou (KOA) se caractérise principalement par des modifications dégénératives du cartilage de l’articulation du genou et des tissus mous environnants. L’efficacité du Tuina dans le traitement du KOA a été confirmée, mais le mécanisme sous-jacent doit être étudié. Cette étude vise à établir un modèle de lapin KOA scientifiquement réalisable traité avec du Tuina afin de révéler les mécanismes sous-jacents. Pour cela, 18 lapins néo-zélandais mâles de 6 mois de qualité normale ont été divisés au hasard en groupes fictifs, modèles et Tuina, avec 6 lapins dans chaque groupe. Le modèle KOA a été établi en injectant une solution de papaïne à 4% dans la cavité articulaire du genou. Le groupe Tuina a été intervenu avec Tuina combiné avec la méthode de correction rotative de l’articulation du genou pendant 4 semaines. Seules la préhension et la fixation standard ont été effectuées dans les groupes fictifs et modèles. À la fin de l’intervention d’une semaine, l’amplitude de mouvement de l’articulation du genou (ROM) a été observée et une coloration à l’hématoxyline-éosine (HE) du cartilage a été effectuée. L’étude montre que Tuina pourrait inhiber l’apoptose des chondrocytes, réparer le tissu cartilagineux et restaurer la ROM de l’articulation du genou. En conclusion, cette étude démontre la faisabilité scientifique du traitement par Tuina pour les lapins modèles KOA, en soulignant son application potentielle dans l’étude du KOA et des affections similaires liées à l’articulation du genou.

Introduction

L’arthrose du genou (KOA) est une maladie dégénérative de l’articulation du genou, qui se manifeste principalement par des douleurs au genou, un gonflement, une déformation et une restriction des mouvements, avec un taux d’invalidité élevé et une prévalence plus élevée chez les femmes, avec 527,81 millions de patients atteints d’arthrose dans le monde en 2019 et sa prévalence mondiale représentant 60,6 % de la prévalence mondiale totale de l’arthrose1. Cliniquement, le traitement de la KOA est généralement divisé en thérapies non chirurgicales et chirurgicales. Les thérapies non chirurgicales comprennent la physiothérapie, la pharmacothérapie et la thérapie par injection de plasma riche en plaquettes 2,3. Le Tuina est une méthode de traitement courante, sûre, fiable et efficace en médecine chinoise. Cette étude utilise le Tuina combiné à la méthode de correction rotative de l’articulation du genou pour traiter le KOA. Les techniques de Tuina telles que la méthode de pétrissage et de pressage rotatoire peuvent équilibrer le tissu musculaire, réduire la douleur, ajuster les niveaux de facteur inflammatoire, améliorer le métabolisme tissulaire et inhiber la dégénérescence du cartilage articulaire 4,5. La méthode de correction rotative de l’articulation du genou permet d’ajuster l’alignement des os et des articulations des membres inférieurs, d’améliorer l’écart entre les articulations du genou, de rétablir la ligne de force normale et d’équilibrer la biomécanique des membres inférieurs 6,7,8,9. Les exercices de résistance peuvent améliorer la masse musculaire et la force et favoriser le renouvellement du tissu cartilagineux10,11. Une étude préliminaire a révélé que ce protocole Tuina est significativement plus efficace que les gélules orales de sulfate de glucosamine dans le traitement de la KOA, avec un début d’action plus rapide et une inhibition significative de la dégénérescence des chondrocytes et de la réparation du tissu cartilagineux endommagé12. Dans le traitement du KOA, par rapport au traitement par Tuina, les anti-inflammatoires non stéroïdiens ont des effets indésirables et une efficacité à long terme insatisfaisante, des risques et des coûts chirurgicaux relativement élevés, et nécessitent certaines indications pour le traitement chirurgical, avec des problèmes postopératoires et des complications périprothétiques13,14,15. Par rapport à la pharmacothérapie et à la chirurgie, le traitement par Tuina pour le KOA offre plusieurs avantages, notamment une réduction des effets secondaires, un risque plus faible, une sécurité accrue, une rentabilité et une efficacité plus durable. De plus, il peut soulager efficacement les douleurs articulaires du genou, l’enflure, l’éclatement et la restriction des mouvements 6,13,16,17.

Cependant, le mécanisme du Tuina pour le traitement du KOA doit être clarifié, ce qui limite l’amélioration et la perfection du protocole de traitement du KOA. Par conséquent, l’étude du mécanisme d’intervention du Tuina dans le KOA par l’expérimentation animale est une méthode efficace. Les lapins, comparés aux rats, ont un tempérament docile et des articulations du genou plus grosses. La structure anatomique et les indices biochimiques du cartilage sont similaires à ceux de l’homme, c’est donc un sujet approprié pour étudier le mécanisme de la maladie de l’articulation du genou par Tuina18. Le modèle KOA établi en injectant de la papaïne dans la cavité articulaire du genou de lapins présente les avantages d’un temps de modélisation court, d’un traumatisme réduit, d’un taux de réussite élevé, d’un taux de survie élevé et d’un mécanisme pathologique similaire à KOA19. Cette étude vise à établir un protocole expérimental animal scientifiquement réalisable pour l’intervention de Tuina dans le KOA et à étudier le mécanisme de Tuina.

Protocole

L’étude a été approuvée par le comité d’éthique de l’hôpital affilié de l’Université de médecine traditionnelle chinoise du Shandong (numéro d’approbation : 2020-29).

1. Animaux de laboratoire

  1. Élever 18 lapins de Nouvelle-Zélande mâles de 6 mois (2,75 ± 0,25 kg) dans des cages individuelles standard (cycle lumière/obscurité de 12 h, température 20-24 °C, humidité de l’air 40%-60%).

2. Méthode de regroupement

  1. Sélectionnez 6 des 18 lapins néo-zélandais comme groupe fictif en utilisant la méthode des nombres aléatoires et affectez les 12 lapins restants au groupe de modélisation.
  2. Une fois la modélisation réussie, divisez le groupe de modélisation des lapins en groupes modèle et Tuina selon la méthode des nombres aléatoires, avec 6 lapins dans chaque groupe.
  3. Effectuez l’intervention Tuina dans le groupe Tuina. Effectuez la même préhension et la même fixation dans le groupe simulé et modèle sans Tuina. Utiliser tous les deux jours pendant 4 semaines (Figure 1).

3. Mise en place du modèle KOA

  1. Donner une alimentation adaptative aux lapins dans les conditions normales de la semaine 1. L’accès ad libitum à l’eau et à la nourriture. Placez les lapins sur le côté droit dans les boîtes de fixation pour lapins pour les calmer pendant 15 min par jour. Fixez leurs têtes sur les plaques de fixation de la tête. Fixez les plaques de fixation et les vis pour que les lapins ne puissent pas bouger. Portez des gants de protection lorsque vous saisissez et fixez les lapins (figure 1).
  2. Les jours 1, 4 et 7 de la semaine 2, placez les 18 lapins sur le côté droit dans les boîtes de fixation des lapins (figure 1). Effectuez les opérations mentionnées ci-dessous.
  3. Injecter 3 % de pentobarbital sodique (1 ml/kg) dans la veine marginale de l’oreille du lapin. Rasez l’articulation gauche du genou du lapin avec un rasoir pour animaux, ce qui permet d’éviter les poils sur la peau exposée.
  4. Désinfectez l’articulation du genou gauche du lapin de l’intérieur vers l’extérieur à l’aide d’iodophor médical et d’alcool à 75 % (Figure 2A).
  5. Fléchissez l’articulation du genou gauche du lapin à 60°. Insérez une aiguille (22G, 0,7 mm x 30 mm) de Waixiyan. Injecter une solution de papaïne à 4 % (0,1 mL/kg, 0,275 mL en moyenne pour un animal de 2,5 kg) dans la cavité articulaire du genou du groupe modèle. Injecter une quantité égale de solution de chlorure de sodium à 0,9 % dans le groupe fictif. Cette dose d’injection est bien tolérée par l’animal sans causer de signes de douleur ou de détresse (Figure 2B).
    REMARQUE : Waixiyan (EX-LE5) est situé dans l’évidement latéral du ligament rotulien et Neixiyan (EX-LE4) est situé dans l’évidement médial du ligament rotulien20,21,22.
  6. Appuyez sur le trou d’épingle pendant 2 min pour éviter le déversement de solution.
  7. Placez vos mains au-dessus et au-dessous de l’articulation du genou gauche du lapin. Fléchissez doucement et passivement l’articulation du genou du lapin et étendez-vous 10 fois dans l’amplitude de mouvement physiologique (ROM) pour infiltrer la solution dans la cavité articulaire du genou uniformément15. Observez le lapin toutes les 8 h pendant toute la durée du modelage. Administrer de la buprénorphine SR (0,18 mg/kg) lorsque les lapins montrent des signes de dissimulation, de tremblement des membres, de respiration superficielle et rapide, ou même de morsure et de griffure.
  8. À la semaine 7, observez le genou gauche du lapin dans une position fléchie comme enflé, avec une augmentation du tonus musculaire autour du genou avec des nodules et des stries, une augmentation de la réponse d’irritation douloureuse locale, une diminution de la ROM du genou, une démarche boiteuse et un déplacement du centre de gravité vers le côté sain. C’est ce qui détermine le succès du modèle KOA (Figure 1, Figure 2C)23,24.

4. Manipulation du tuina

  1. Effectuez l’entraînement à l’aide de l’instrument de détermination des paramètres de la technique Tuina avant la manipulation de Tuina. Entraînez-vous 1 h par jour pendant 1 mois par le même professionnel.
    1. Effectuez la méthode de pétrissage rotatif et de pressage avec le pouce sur la plate-forme de simulation de manipulation Tuina avec une force de 5 N et une fréquence de 60 fois/min (Figure 3A,C).
    2. Analysez la force dans trois directions des axes X, Y et Z à l’aide du logiciel de traitement des paramètres de manipulation Tuina et vérifiez l’amplitude, la fréquence et le temps d’action de la force affichés à l’écran (Figure 3B, D).
    3. Évaluer les paramètres mécaniques de la manipulation Tuina et standardiser la manipulation Tuina à l’aide du logiciel pendant l’entraînement. Maintenir la méthode standardisée de pétrissage rotatif et de pressage avec le pouce avec une force de 5 N, une fréquence de 60 fois/min et un temps de fonctionnement continu de 10 min. Voir la forme d’onde quantitative normalisée de la manipulation dans la Figure 3B, D 25,26,27.
  2. Placez le lapin sur le côté droit dans la boîte de fixation du lapin. Caressez doucement le lapin pendant 10 secondes pour l’apaiser et le détendre21. Effectuez ensuite l’intervention Tuina.
  3. Effectuez la méthode de pétrissage rotatoire avec le pouce sur la raideur des muscles péri-genoux gauches du lapin, les nœuds tendineux et la rotule, avec une manipulation aller-retour de haut en bas à une force de 5 N et une fréquence de 60 fois/min pendant 5 min.
  4. Utilisez l’extrémité du pouce pour appuyer sur Yanglingquan (GB 34), Yinlingquan (SP 9), Waixiyan (EX-LE5), Neixiyan (EX-LE4), Heding (EX-LE2), Xuehai (SP 10), Liangqiu (ST 34) et Weizhong (BL 40)20,21,22, avec une force de 5 N et une fréquence de 60 fois/min, et opérer sur chaque point pendant 30 s.
  5. Effectuez la méthode de correction rotative sur l’articulation du genou du lapin et effectuez-la 3 fois séparément pour chaque animal du groupe.
    1. Fixez le fémur d’une main. Placez d’abord l’autre main derrière l’articulation du genou, puis fixez les condyles tibiaux latéraux et médiaux avec le pouce et l’annulaire, respectivement. Fixez la fosse poplitée avec l’index et le majeur. Appliquez une force de traction et de torsion.
    2. Fixez le fémur d’une main. Fixez les bords médial et latéral de la rotule avec le pouce et l’auriculaire de l’autre main. Fixez la base rotulienne avec l’index, le majeur et l’annulaire. Appliquez une force de torsion.
    3. Gardez la direction de la force de traction parallèle à l’axe long du tibia et la direction de la force de torsion en ligne avec la direction du Xiyan inférieur. Utilisez les doigts pour maintenir la peau en place afin d’éviter les frottements entre la peau et les doigts.

5. Mesure de la ROM de l’articulation du genou

REMARQUE : Avant la mesure, calmez le lapin. Le statisticien et l’opérateur de mesure sont différents l’un de l’autre.

  1. Mesurer la mobilité de l’articulation du genou gauche des lapins de chaque groupe au début de l’expérience et à la fin de chaque semaine.
  2. Positionnez le lapin sur le côté droit dans la boîte de fixation du lapin et fixez son fémur gauche d’une main.
  3. Alignez le centre du cercle de l’arthroscope médical avec le centre latéral de l’articulation gauche du genou du lapin. Étendez le bras de fixation de manière à ce qu’il soit parallèle à l’extension de la ligne reliant le centre du cercle au grand trochanter. Étendez le bras mobile de manière à ce qu’il soit parallèle à l’axe longitudinal du tibia.
  4. Placez l’autre main sur l’axe longitudinal du tibia, à environ 9 cm de l’articulation du genou. Appliquer manuellement un couple d’environ 750 à 850 g à une vitesse angulaire de 3°/s28.
  5. Effectuez cette opération jusqu’à ce que l’articulation du genou du lapin ne bouge plus. Noter le nombre de degrés affichés par le goniomètre lorsque l’articulation cesse de bouger ; il s’agit de la ROM de l’articulation du genou. Lors de la lecture, assurez-vous que la ligne de visée est perpendiculaire à la surface de la règle.
  6. Mesurez la ROM pour chaque genou 3x et prenez la valeur moyenne28.

6. Coloration à l’hématoxyline-éosine (HE)

  1. Prélèvement d’échantillons
    1. A 1 semaine de la fin de l’intervention (Figure 1), placez le lapin sur le côté droit dans la boîte de fixation du lapin (les lapins sont plus susceptibles de rester détendus lorsqu’ils sont couchés sur le côté droit). Injecter du pentobarbitone (100 mg/kg) dans la veine marginale de l’oreille du lapin pour une euthanasie sans cruauté29,30.
    2. Ouvrez rapidement la cavité du genou gauche à l’aide d’un scalpel, de ciseaux et d’une pince hémostatique pour retirer les tissus mous attachés autour du cartilage du fémur distal.
    3. Prélevez un échantillon d’os cartilagineux d’environ 1 cm x 1 cm du fémur distal à l’aide d’une pince à piquer et placez-le dans une solution saline pour le nettoyer.
  2. Fixation et décalcification
    1. Placez le cartilage dans une solution de paraformaldéhyde à 4% et fixez-le pendant 72 h.
    2. Rincer à l’eau courante pendant 12 h. Détartrer dans une solution de décalcification à l’acide éthylènediaminetétraacétique (EDTA) pendant 6 semaines. Changez la solution de décalcification EDTA tous les 3 jours. Déterminer le point final de la décalcification lorsque le tissu osseux devient mou et flexible, peut être facilement plié et percé en douceur avec une aiguille31.
  3. Déshydratation des sections encastrées
    1. Placez l’échantillon dans un déshydrateur automatique pour la déshydratation.
    2. Placez le tissu ciré et paré au fond d’un récipient carré avec de la cire de paraffine dissoute pendant 1 h. Placez-les dans un four de refroidissement jusqu’à ce qu’ils refroidissent et se solidifient en blocs durs. Coupez le bloc de tissu enrobé de paraffine dans une trancheuse à une épaisseur de 4 μm.
    3. Dépliez les sections dans la machine à eau de Javel, puis placez-les sur des lames adhésives, numérotez-les et séchez-les avec une machine à trancher et un four.
  4. Déparaffinage et hydratation
    1. Enfournez les tronçons à 65 °C pendant 60 min.
    2. Faites tremper les sections dans du xylène pendant 7 minutes, suivies de 2 autres cycles de trempage dans du xylène frais pendant 7 minutes chacun.
    3. Faites tremper la tranche dans de l’éthanol anhydre pendant 5 minutes, puis faites-la tremper pendant 2 minutes dans de l’éthanol à 95 %, de l’éthanol à 85 % et de l’éthanol à 75 %.
    4. Faire tremper les sections dans de l’eau distillée pendant 2 min.
  5. Coloration à l’hématoxyline : Colorer des coupes avec de l’hématoxyline pendant 20 s. Rincez les sections à l’eau courante. Faire tremper les sections dans le fractionnement à l’éthanol à l’acide chlorhydrique pendant 3 s. Rincer les sections à l’eau du robinet pendant 5 min.
  6. Recoloration à l’éosine : Colorer des coupes avec de l’éosine pendant 30 s. Rincez les sections à l’eau du robinet.
  7. Déshydratation pour la transparence de l’échantillon
    1. Placer les sections dans de l’éthanol à 95 % deux fois pendant 3 s chacune, puis les placer dans de l’éthanol anhydre pendant 3 s.
    2. Encore une fois, placez les tranches dans de l’éthanol anhydre pendant 1 min, suivies de 2 cycles de lavage au xylène pendant 1 min chacun.
  8. Scellage des tranches : Sortez les tranches, déposez un scellant de gomme neutre, couvrez d’une lamelle et laissez sécher les tranches dans une hotte jusqu’à ce qu’elles soient inodores.
  9. Photographier l’échantillon : Observer et photographier sous le champ de vision d’un microscope optique à 100x.
  10. Évaluation : Évaluez le tissu cartilagineux par le score de Mankin pour chaque groupe32.

7. Analyse des données

  1. Analyser statistiquement les données expérimentales à l’aide d’un logiciel d’analyse. Lorsque les données ont été soumises à une distribution normale, comparez deux groupes d’échantillons par test t et plusieurs groupes par ANOVA à un facteur.
  2. Exprimez les résultats sous forme de moyenne ±écart-type (ET). Représentez les résultats sous forme de graphiques statistiques à l’aide d’un logiciel commercial. Les différences étaient statistiquement significatives à p < 0,05.

Résultats

Le degré de restriction des mouvements du genou et des lésions du tissu cartilagineux reflète la gravité de la KOA. La ROM de l’articulation du genou reflète le degré de restriction du mouvement de l’articulation du genou. Plus la ROM de l’articulation du genou est petite, plus la limitation du mouvement de l’articulation du genou est grave. Au contraire, plus la ROM de l’articulation du genou est grande, plus le degré de mouvement du genou est normal. La coloration HE pour observer la morphologie et la ...

Discussion

La conception du protocole expérimental est particulièrement importante pour étudier le mécanisme du Tuina dans le traitement du KOA. La modélisation KOA a été réalisée sur des lapins par injection de papaïne à Waixiyan. Waixiyan est situé dans la crypte latérale du ligament rotulien, qui est facile à localiser, et l’espace articulaire entre le fémur et le tibia est grand ici pendant la flexion du genou, ce qui le rend facile à injecter dans la cavité articulaire du genou et empêche d’endommager les...

Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts potentiel.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le projet de science et de technologie de la médecine traditionnelle chinoise de la province du Shandong (2021Q080) et le projet d’héritage de l’école académique de médecine traditionnelle chinoise de Qilu [Lu-Wei-Letter (2022) 93].

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
0.9 % sodium chloride injectionSichuan Keren Pharmaceutical Co.Z22121903
-20°C refrigeratorHaierBD-328WL
4 % fixative solutionSolarbioP1110
4°C refrigeratorHaierSC-315DS
Anhydrous ethanolSinopharm
Automatic tissue dewatering machineDakowei (Shenzhen) Medical Equipment Co.HP30
Blast drying ovenShanghai Yiheng Scientific Instruments Co.DHG-9070A
CoverslipBiyuntianFCGF50
Electric thermostat water bathShanghai Yiheng Scientific Instruments Co.HWS-26
Embedding freezing tableChangzhou Paishijie Medical Equipment Co.BM450
Embedding machineChangzhou Paishijie Medical Equipment Co.BM450A
Ethylenediaminetetraacetic acid decalcification solutionServicebioG1105-500ML
Fluorescent inverted microscopeLeicaLeica DM IL LED
Hematoxylin-eosin staining kitCisco JetEE0012
Hydrochloric acidLaiyang Economic and Technological Development Zone Fine Chemical Plant
Medical joint goniometerKOSLO
Neutral gumCisco JetEE0013
Normal-grade male New Zealand rabbitJinan Xilingjiao Breeding and Breeding CenterSCXK (Lu) 2020 0004
Papain(3000 U/mg)BiossD10366
Pathological tissue bleaching and drying instrumentChangzhou Paishijie Medical Equipment Co.PH60
Pet electric clippersCodosCP-3180
Rabbit fixing boxany brand
Rotating SlicerLeica531CM-Y43
Tuina technique parameter determination instrumentShanghai DuKang Instrument Equipment Co. Ltd.ZTC-figure-materials-2994
VentilatorTALY ELECTRICC32
XyleneFuyu Reagent

Références

  1. Long, H. B., et al. Prevalence trends of site-specific osteoarthritis from 1990 to 2019: findings from the global burden of disease study 2019. Arthritis & Rheumatology. 74 (7), 1172-1183 (2022).
  2. Tschopp, M., et al. A randomized trial of intra-articular injection therapy for knee osteoarthritis. Investigative Radiology. 58 (5), 355-362 (2023).
  3. Buchanan, W. W., Kean, C. A., Kean, W. F., Rainsford, K. D. Osteoarthritis. Inflammopharmacology. , (2023).
  4. Wang, W. Y., et al. A randomized, parallel control and multicenter clinical trial of evidence-based traditional Chinese medicine massage treatment VS External Diclofenac Diethylamine Emulgel for the treatment of knee osteoarthritis. Trials. 23 (1), 555 (2022).
  5. Wang, M. N., et al. Mechanism of traditional Chinese medicine in treating knee osteoarthritis. Journal of Pain Research. 13, 1421-1429 (2020).
  6. Katz, J. N., Arant, K. R., Loeser, R. F. Diagnosis and treatment of hip and knee osteoarthritis: A review. The Journal of the American Medical Association. 325 (6), 568-578 (2021).
  7. Chang, A., et al. The relationship between toe-out angle during gait and progression of medial tibiofemoral osteoarthritis. Annals of the Rheumatic Diseases. 66, 1271-1275 (2007).
  8. Jenkyn, T. R., Hunt, M. A., Jones, I. C., Giffin, J. R., Birmingham, T. B. Toe-out gait in patients with knee osteoarthritis partially transforms external knee adduction moment into flexion moment during early stance phase of gait: a tri-planar kinetic mechanism. Journal of Biomechanics. 41 (2), 276-283 (2008).
  9. Brouwer, G. M., et al. Association between valgus and varus alignment and the development and progression of radiographic osteoarthritis of the knee. Arthritis & Rheumatism. 56 (4), 1204-1211 (2007).
  10. Liao, C. D., et al. Effects of protein supplementation combined with resistance exercise training on walking speed recovery in older adults with knee osteoarthritis and sarcopenia. Nutrients. 15 (7), 1552 (2023).
  11. Thudium, C. S., et al. Cartilage tissue turnover increases with high-compared to low-intensity resistance training in patients with knee OA. Arthritis Research & Therapy. 25 (1), 22 (2023).
  12. Zheng, L. J., et al. Shutiao Jingjin massage can stabilize intracellular environment of rabbit chondrocytes following knee osteoarthritis-induced cartilage injury. Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu. 27, (2023).
  13. Liu, K. Q., et al. Efficacy and safety of Tuina (Chinese therapeutic massage) for knee osteoarthritis: A randomized, controlled, and crossover design clinical trial. Frontiers in Medicine. 10, 997116 (2023).
  14. Wang, Z., et al. Systematic Review and Network Meta-analysis of Acupuncture Combined with Massage in Treating Knee Osteoarthritis. BioMed Research International. 2022, 4048550 (2022).
  15. Li, Y. Y., et al. Therapeutic effect of acupotomy at Sanheyang for cartilage collagen damage in moderate knee osteoarthritis: a rabbit model. Journal of Inflammation Research. 16, 2241-2254 (2023).
  16. Guo, G. X., et al. Cerebral mechanism of Tuina analgesia in management of knee osteoarthritis using multimodal MRI: study protocol for a randomised controlled trial. Trials. 23 (1), 694 (2022).
  17. Perlman, A., et al. Efficacy and safety of massage for osteoarthritis of the knee: a randomized clinical trial. Journal of General Internal Medicine. 34 (3), 379-386 (2019).
  18. Chen, B. J., et al. Aerobic exercise combined with glucosamine hydrochloride capsules inhibited the apoptosis of chondrocytes in rabbit knee osteoarthritis by affecting TRPV5 expression. Gene. 830, 146465 (2022).
  19. Rasheed, M. S., Ansari, S. F., Shahzadi, I. Formulation, characterization of glucosamine loaded transfersomes and in vivo evaluation using papain induced arthritis model. Scientific Reports. 12 (1), 19813 (2002).
  20. Li, Z. R. Experimental acupuncturology. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. 2003, 314-319 (2003).
  21. Hu, Y. L. Manual of practical animal acupuncture. Beijing: China Press of Agriculture. 2003, 286-298 (2014).
  22. Liu, J., et al. Effects of "knot-loosing" of acupotomy on motor function and morphological changes of knee joint in knee osteoarthritis rabbits. Zhen Ci Yan Jiu. 46 (2), 129-135 (2021).
  23. Li, Q., et al. The protective effects and mechanism of Ruyi Zhenbao Pill, a Tibetan medicinal compound, in a rat model of osteoarthritis. Journal of Ethnopharmacology. 308, 116255 (2023).
  24. Kwon, M., Nam, D., Kim, J. Pathological characteristics of monosodium iodoacetate-induced osteoarthritis in rats. Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 20 (3), 435-446 (2023).
  25. Wang, J. G., Tang, C. L. Experimental Tuina science. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. Chinese. , (2017).
  26. Fang, M., Song, B. L. Tuina science. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. , (2016).
  27. Jin, X. Y., Yu, Y. Y., Lin, Y. Y., Yang, J. P., Chen, Z. H. Tendon-regulating and bone-setting manipulation promotes the recovery of synovial inflammation in rabbits with knee osteoarthritis via the TLR4-MyD88-NF-κB signaling pathway. Annals of Translational Medicine. 11 (6), 245 (2023).
  28. Wang, M., Liu, C., Xiao, W. Intra-articular injection of hyaluronic acid for the reduction in joint adhesion formation in a rabbit model of knee injury. Knee Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy: Official Journal of the ESSKA. 22 (7), 1536-1540 (2014).
  29. Xu, C., et al. Bacterial cellulose membranes used as artificial substitutes for dural defection in rabbits. International Journal of Molecular Sciences. 15 (6), 10855-10867 (2014).
  30. Leary, S., et al. AVMA guidelines for the euthanasia of animals: 2020 edition. Schaumburg: American Veterinary Medical Association. 2020, (2020).
  31. Amirtham, S. M., Ozbey, O., Kachroo, U., Ramasamy, B., Vinod, E. Optimization of immunohistochemical detection of collagen type II in osteochondral sections by comparing decalcification and antigen retrieval agent combinations. Clinical Anatomy. 33 (3), 343-349 (2020).
  32. Niazvand, F., et al. Curcumin-loaded poly lactic-co-glycolic acid nanoparticles effects on mono-iodoacetate-induced osteoarthritis in rats. Veterinary Research Forum: An International Quarterly Journal. 8 (2), 155-161 (2017).
  33. Liu, A., et al. Intra-articular injection of umbilical cord mesenchymal stem cells loaded with graphene oxide granular lubrication ameliorates inflammatory responses and osteoporosis of the subchondral bone in rabbits of modified papain-induced osteoarthritis. Frontiers in Endocrinology. 12, 822294 (2022).
  34. Hall, M. M. The accuracy and efficacy of palpation versus image-guided peripheral injections in sports medicine. Current Sports Medicine Reports. 12 (5), 296-303 (2013).
  35. Xing, L., et al. Traditional Chinese medicine ointment combined with Tuina therapy in treatment of pain and swelling after total knee arthroplasty. World Journal of Orthopedics. 13 (10), 932-939 (2022).
  36. Xu, H., et al. The effectiveness of Tuina in relieving pain, negative emotions, and disability in knee osteoarthritis: a randomized controlled trial. Pain Medicine. 24 (3), 244-257 (2023).
  37. Ding, N., et al. Mast cells are important regulator of acupoint sensitization via the secretion of tryptase, 5-hydroxytryptamine, and histamine. The Public Library of Science One. 13 (3), e0194022 (2018).
  38. Cai, F. H., Li, F. L., Zhang, Y. C., Li, P. Q., Xiao, B. Research on electroacupuncture parameters for knee osteoarthritis based on data mining. European Journal of Medical Research. 27 (1), 162 (2022).
  39. Mei, Z. G., Cheng, C. G., Zheng, J. F. Observations on curative effect of high-frequency electric sparkle and point-injection therapy on knee osteoarthritis. Journal of Traditional Chinese Medicine. 31 (4), 311-315 (2011).
  40. Xiao, G., et al. Effect of manipulation on cartilage in rats with knee osteoarthritis based on the Rho-associated protein kinase/LIM kinase 1/Cofilin signaling pathways. Journal of Traditional Chinese Medicine. 42 (2), 194-199 (2022).
  41. Wu, M. X., et al. Clinical study on the treatment of knee osteoarthritis of Shen-Sui insufficiency syndrome type by electroacupuncture. Chinese Journal of Integrative Medicine. 16 (4), 291-297 (2010).
  42. Richards, R. E., Andersen, M. S., Harlaar, J., van den Noort, J. C. Relationship between knee joint contact forces and external knee joint moments in patients with medial knee osteoarthritis: effects of gait modifications. Osteoarthritis Cartilage. 26 (9), 1203-1214 (2018).
  43. Shull, P. B., et al. Toe-in gait reduces the first peak knee adduction moment in patients with medial compartment knee osteoarthritis. Journal of Biomechanics. 46 (1), 122-128 (2013).
  44. Adouni, M., Shirazi-Adl, A. Partitioning of knee joint internal forces in gait is dictated by the knee adduction angle and not by the knee adduction moment. Journal of Biomechanics. 47 (7), 1696-1703 (2014).
  45. Kutzner, I., Trepczynski, A., Heller, M. O., Bergmann, G. Knee adduction moment and medial contact force--facts about their correlation during gait. The Public Library of Science One. 8 (12), e81036 (2013).
  46. Camacho-Cardenosa, A., et al. Resistance circuit training combined with hypoxia stimulates bone system of older adults: a randomized trial. Experimental Gerontology. 169, 111983 (2022).
  47. Babur, M. N., Siddiqi, F. A., Tassadaq, N., Arshad Tareen, M. A., Osama, M. Effects of glucosamine and chondroitin sulfate supplementation in addition to resistance exercise training and manual therapy in patients with knee osteoarthritis: A randomized controlled trial. The Journal of the Pakistan Medical Association. 72 (7), 1272-1277 (2022).
  48. Wang, H. N., et al. Effect of low-load resistance training with different degrees of blood flow restriction in patients with knee osteoarthritis: study protocol for a randomized trial. Trials. 23 (1), 6 (2022).
  49. Cheon, Y. H., et al. Relationship between decreased lower extremity muscle mass and knee pain severity in both the general population and patients with knee osteoarthritis: Findings from the KNHANES V 1-2. The Public Library of Science One. 12 (3), e0173036 (2017).
  50. Murton, A. J., Greenhaff, P. L. Resistance exercise and the mechanisms of muscle mass regulation in humans: acute effects on muscle protein turnover and the gaps in our understanding of chronic resistance exercise training adaptation. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 45 (10), 2209-2214 (2013).

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