Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu makale, önceki modelleme yöntemlerinin avantajlarını birleştirerek, kalsiyum klorür ve elastaz kullanarak bir fare abdominal aort anevrizması modeli oluşturmak için bir protokol sunmaktadır. Bu model, abdominal aort anevrizmalarının altında yatan patofizyolojik mekanizmaları araştırmak için kullanılabilir.

Özet

Abdominal aort anevrizması (AAA) yüksek mortalite oranları ile seyreden, hayatı tehdit eden bir hastalıktır. Arteriyel çapta en az% 50'lik bir artış ile abdominal aortun kalıcı genişlemesi ile karakterizedir. Patofizyolojik değişiklikleri taklit etmek ve AAA'nın altında yatan mekanizmaları incelemek için AAA'nın çeşitli hayvan modelleri tanıtılmıştır. Bu modeller arasında, kalsiyum klorür (CaCl2) - ve elastaz ile indüklenen AAA modelleri farelerde yaygın olarak kullanılmaktadır. Ancak, bu yöntemlerin belirli sınırlamaları vardır. Geleneksel intraluminal domuz pankreas elastazı (KKD) perfüzyonu, yüksek teknik zorluk ve yüksek rüptür oranı ile ilişkilendirilirken, KKD'nin periadventiyal uygulaması tutarsız sonuçlar verir. Ek olarak, CaCl2 ile indüklenen AAA modeli, aterotromboz ve anevrizma rüptürü gibi insan AAA özelliklerinden yoksundur. Bu nedenle, CaCl2 ve PPE'nin birlikte uygulanması, AAA hayvan modellerinde başarı oranlarını artırmak ve daha büyük çap artışlarını indüklemek için bir yaklaşım olarak önerilmiştir. Bu makale, abdominal aortun infrarenal segmentinde PPE ve CaCl2'nin periaortik infiltrasyonu yoluyla bir fare AAA modeli oluşturmak için kapsamlı bir protokol sunmaktadır. Bu protokolü takip ederek, teknik basitlik ve tekrarlanabilirlik ile yaklaşık %90'lık bir AAA oluşum oranı elde edebiliriz. Daha ileri ultrason ve histolojik deneyler, bu modelin insan AAA'sında gözlenen morfolojik ve patolojik değişiklikleri etkili bir şekilde kopyaladığını doğrulamaktadır.

Giriş

Abdominal aort anevrizması (AAA), abdominal aortta çap artışının %50'den fazla olması veya maksimum aort çapının 3 cm'yi aşması olarak tanımlanır. Bu durum, anevrizma rüptürü 1,2,3 üzerine yaklaşık% 90 ölüm oranı ile yaşam için önemli bir tehdit oluşturmaktadır. Şu anda, açık cerrahi onarım ve endovasküler aort onarımı (EVAR) AAA hastaları için mevcut tek girişimdir 4,5,6. Bununla birlikte, cerrahi endikasyonu olmayan hastalarda anevrizma oluşumunu engellemede veya abdominal aortun büyüme hızını yavaşlatmada medikal tedavilerin etkinliğini destekleyecek yeterli kanıt yoktur7. Bununla birlikte, ani anevrizma rüptürü ve potansiyel kardiyovasküler ve nörolojik olay riskini mümkün olduğunca azaltmak için maksimum anevrizma çapının sürekli gözetimi, kan basıncı kontrolü, antiplatelet tedavi ve statinler dahil olmak üzere spesifik olmayan tedaviler kullanılır. Buna rağmen, antiplatelet ilaçların ve statinlerin anevrizma rüptürünü önlemedeki rolü tartışmalıdır ve daha ileri çalışmalar gerektirmektedir 5,7,8,9,10.

AAA'nın patogenezini araştırmak için stabil bir AAA hayvan modeli hayati önem taşır ve böyle bir model oluşturmak için çok sayıda yöntem tanıtılmıştır 11,12,13. Şu anda, kalsiyum klorür (CaCl2), elastaz, anjiyotensin II (Ang II), ksenogreftler ve transgenik modeller, kemirgen AAA modellerininoluşturulmasında kullanılmaktadır 11,12,13. Bunlar arasında, Ang II farelerde en yaygın olarak kullanılırken, CaCl2 ve elastaz da farelerde ve sıçanlarda yaygın olarak kullanılmaktadır 11,12,13,14. Ang II ile indüklenen AAA modeli, basit ve tekrarlanabilir olan ve laparotomi ihtiyacını ortadan kaldıran insan AAA patolojisine çok benzeyen aterosklerozu indükleyebilen tek hayvan modelidir 11,12,13. Bununla birlikte, CaCl2 veya elastaz tarafından indüklenen modellerin aksine, Ang II tarafından indüklenen anevrizmaların yeri belirsizdir ve inen aort veya suprarenal abdominal aortta sıklıkla gözlenir ve rüptür riski artar 11,12,13,14. Gen eksikliği olan farelerde Ang II ile indüklenen AAA modelinin anevrizma insidans oranı %100 kadar yüksek olabilirken, C57BL/6 farelerin sadece %39'unda anevrizma gelişmiştir ve gen eksikliği olan farelerin elde edilmesinin zaman ve ekonomik maliyeti yüksektir13,15.

İlk olarak Gertz ve ark. tarafından tanıtılan CaCl2, karotis arterde anevrizma oluşumunu indüklemek için kullanıldı ve daha sonra Chiou ve ark. farelerde bir AAA modeli oluşturmak için16,17. Bununla birlikte, elastik lif parçalanmasına, damar iltihabına ve hücre dışı matris bozulmasına neden olma yeteneğine rağmen, CaCl2, aterostromboz, intraluminal trombüs (ILT) ve anevrizma rüptürü12,18 dahil olmak üzere çeşitli insan AAA özelliklerinden yoksundur. Ek olarak, periaortik CaCl2 uygulamasının oluşum hızı ve çap artış yüzdesikararsız kalmaktadır 13,19. AAA'yı indüklemek için ilk intraluminal domuz pankreatik elastaz (PPE) perfüzyon modeli Anidjar ve ark. 1990 yılında, ardından Bhamidipati ve ark.'nın bir murin modelinde periadventitial KKD infiltrasyonu hakkındaki raporu20,21. Günümüzde, elastaz kaynaklı AAA hayvan modellerinin çoğu, fizibilitesi ve minimal invaziv doğası nedeniyle Bhamidipati'nin protokolünü kullanmaktadır. Bununla birlikte, AAA'nın insidans oranının ve maksimum çapının değişebileceğini ve genellikle intraaortik KKD perfüzyonundan daha düşük olduğunu not etmek önemlidir. Ayrıca periaortik elastaz uygulaması ile indüklenen anevrizmalar kendiliğinden iyileşme eğilimi gösterir 11,12,20,21,22,23.

Bu sınırlamaları ele almak için, Tanaka ve ark. sıçanlarda bir AAA modeli oluşturmak için intraluminal KKD perfüzyonu ve CaCl2 infiltrasyonunu içeren bir kombinasyon yaklaşımı önerdi ve bu da tatmin edici sonuçlar verdi24. Ek olarak, Zhu ve ark. KKD + CaCl2 modelinin hem tek KKD grubuna hem de KKD + BAPN grubu25'e kıyasla daha yüksek sağkalım oranları ve artmış anevrizma oluşum oranları gibi avantajlar sunduğunu göstermiştir. Bu birleşik yaklaşım aynı zamanda iyi bir stabilite ve tekrarlanabilirlik sergiler. Ayrıca, Bi ve ark. periaortik CaCl2 ve elastaz inkübasyonu kombinasyonu yoluyla başarılı bir tavşan AAA modeli oluşturmuştur. Ortalama genişleme oranı 5. günde %65,3 ± %8,9 iken, bu oran 15. günde %86,5 ± %28,7'ye yükseldi ve 30. 26. günde %203,6 ± %39,1'e önemli ölçüdeyükseldi. Bununla birlikte, şu anda periaortik CaCl2 ve elastaz uygulamasını birleştirerek kemirgenlerde AAA indüksiyonunu bildiren mevcut bir literatür yoktur.

Bu makale, periadventitial CaCl2 ve elastaz infiltrasyonunun birlikte kullanımı yoluyla bir murin AAA modeli oluşturmak için standart bir protokol sunmaktadır. Sonraki bölümler ayrıntılı cerrahi prosedürler sağlar ve murin AAA modelinin temsili sonuçlarını sunar.

Protokol

Hayvan deneyi protokolü, Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı için Ulusal Sağlık Enstitüsü Rehberi (NIH Pub No. 86/23, 1985) ile uyumludur ve Sichuan Üniversitesi, Batı Çin Hastanesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylanmıştır (Onay Numarası 202311300012). Bu çalışma için sekiz ila on haftalık C57 / B6J erkek fareler kullanıldı. Kullanılan reaktiflerin ve ekipmanın ayrıntıları Malzeme Tablosunda listelenmiştir.

1. Ameliyat öncesi hazırlık

  1. Hayvanları alın ve standart koşullar altında (sıcaklık 24 °C, nem %40-%50, 12 saatlik aydınlık-karanlık döngüsü) temiz suyla normal bir yemle besleyin.
  2. Pamuklu bir pedi 40 mm x 4 mm'lik şeritler halinde kesin ve makas, forseps ve diğer cerrahi ekipmanlarla birlikte sterilize edin.
  3. Hayvanı anestezi makinesinin indüksiyon odasına yerleştirin ve anesteziyi hızlı bir şekilde indüklemek için% 3 -% 3.5 izofluran kullanın (kurumsal olarak onaylanmış protokolleri izleyerek). Ek olarak, önleyici analjezi ilacı olarak butorphanol (1 mg / kg, kas içi enjeksiyon) reçete edin.
    1. Artık ağrı stimülasyonuna yanıt vermediğinde fareyi odadan çıkarın, ardından farenin üzerine bir maske yerleştirin ve% 1 -% 1.5 izofluran ile anestezi derinliğini koruyun. Her 5-10 dakikada bir solunum hızını ve derinliğini izleyin.
  4. Fareyi ısıtma yastığının üzerine sırtüstü pozisyonda yerleştirin, uzuvları hareketsiz hale getirmek için yapışkan bant kullanın ve kuruluğu önlemek için göz merhemi sürün.
  5. Karın bölgesindeki tüyleri tamamen çıkarmak için elektrikli tıraş makinesi veya tüy dökücü losyon kullanın, ardından bu alanı povidon-iyot ve etanole batırılmış pamuklu çubuklarla en az üç kez dairesel hareketlerle dezenfekte edin.

2. Cerrahi prosedür

  1. Fareyi bir stereomikroskop altına yerleştirin. Karnın orta hattı boyunca yaklaşık 2-2,5 cm'lik uzunlamasına bir kesi yapmak için makas kullanın.
  2. Periton boşluğuna linea alba (transabdominal yaklaşım) yoluyla girin, periton boşluğunu ortaya çıkarmak için bir ekartör yerleştirin ve normal salinle ıslatılmış gazlı bez kullanarak bağırsakları ve kolonu karnın sağ yarısına yerleştirin.
  3. Forseps ve pamuklu çubuklar kullanarak intrarenal abdominal aort ve inferior vena kavaya (IVC) bitişik bağ ve yağ dokusunun künt ayrımını gerçekleştirin. Abdominal aortu nazikçe inceleyin ve daha önce belirtildiği gibi abdominal aort ile üstteki psoas majör arasındaki boşluğu ortaya çıkarın25.
    1. Sterilize edilmiş pamuklu ped şeritlerini bu boşluğa yerleştirin ve lomber artere veya damara zarar vermemeye son derece dikkat edin. Abdominal aortu IVC'den izole etmek gerekli değildir.
  4. Pamuğu 0.9 M CaCl2 ile ıslatın ve 15 dakika boyunca abdominal aortun adventitiasına yerleştirin. Sızma işlemi sırasında karın boşluğunu örtmek için sterilize edilmiş gazlı bez kullanın.
  5. CaCl2 ile ıslatılmış pamuğu nazikçe çıkarın ve sızan segmenti %0.9 tuzlu su çözeltisi ile yıkayın.
  6. Elastazı ddH2O ile 2 mg / mL'ye (8 U / mL) seyreltin. Abdominal aortun infrarenal segmentine 50 μL seyreltilmiş elastaz uygulamak için bir insülin şırıngası kullanın ve abdominal aort ve IVC'yi kaplayacak şekilde pamuklu ped şeritlerini sarın. Sızma işlemi sırasında karın boşluğunu örtmek için sterilize edilmiş gazlı bez kullanın. Sham grubunda, CaCl 2 ve PPE'yi değiştirmek için%0.9 normal salin kullanın.
  7. 15 dakika sonra gazlı bez ve pamuklu ped şeritlerini dikkatlice çıkarın. Bağırsakları ve kolonu orijinal konumlarına geri getirin, tedavi edilen aortu mezenter ile örtün ve yapışmayı önlemek için bağırsakları nemlendirin.
  8. 6-0 emilmeyen polipropilen sütür kullanarak kas tabakasını ve cildi ayrı ayrı kapatın. Cerrahi alanı povidon-iyot ve etanol ile dezenfekte edin.
  9. Fareyi bir ısıtma yastığının üzerine yerleştirin ve bilinci yerine gelene kadar solunum durumunu izleyin. Çalışma süresini ve deney hayvanlarının sayısını kaydedin. Veteriner tavsiyesine göre ameliyattan sonra en az 3 gün boyunca ameliyat sonrası analjezi olarak carprofen (deri altından 5 mg / kg) reçete edin.

3. Ultrason muayenesi

  1. Ameliyattan 21 gün sonra, AAA insidans oranını değerlendirmek için bir ultrason muayenesi yapın.
  2. Fareyi uyuşturun (kurumsal olarak onaylanmış protokolleri izleyerek) ve daha önce tarif edildiği gibi karın kıllarını çıkarın.
  3. Fareyi kemirgen ultrason makinesinin ısıtma yastığına yerleştirin. Karın bölgesine ultrasonik kuplant uygulayın ve anevrizmanın maksimum çapını ve abdominal aortun normal segmentinin çapını ölçün.
    1. Kızılötesi abdominal aortun artmış yüzdesini hesaplayın. Başarılı AAA oluşumu için kriter, AAA'nın maksimum çapının, intrarenal abdominal aortun normal segmentinin çapına kıyasla% 50 veya daha fazla artmış olmasıdır.
  4. Muayeneden sonra kalan ultrasonik kuplantı silmek için bir peçete kullanın ve fareyi tamamen iyileşene kadar ısıtma yastığının üzerine yerleştirin.

4. Abdominal aort çıkarılması ve patolojik deneyler

  1. Ultrason muayenesini takip eden gün fareyi aşırı dozda izofluran ile feda edin (kurumsal olarak onaylanmış protokolleri izleyerek).
  2. Torasik ve abdominal boşlukları açın ve önceki literatürde açıklanan prosedürü izleyerek akciğerler ve karaciğer beyazlaşana kadar sol ventrikülden 1x PBS ile perfüzyon yapın27.
  3. Böbrek altı aortunun dış çapını ölçmek için dijital bir kumpas kullanın. Karın altı aortu stereomikroskop altında hasat edin ve damarı 24-48 saat boyunca% 4 paraformaldehit içinde saklayın.
  4. Abdominal aortu çevreleyen bağ ve yağ dokusunu çıkarın. Bölümleri hazırlamak için aortu parafine gömün, bölümleri daha önce tarif edildiği gibi 3-5 μm'lik dilimler halinde kesin 18,28.
  5. Üreticinin talimatlarına göre ilgili boyama kitlerini kullanarak deparafinleştirilmiş dilimler üzerinde hematoksilen ve eozin (H & E), Masson trikrom ve Elastic-Van Gieson (EVG) boyama yapın.
    1. H&E boyama ile damar yapısını ve iltihabı analiz edin, Masson'un trikrom boyaması ile hücre dışı matriks (ECM) bozulmasını ve kollajen liflerini gözlemleyin ve EVG boyaması ile elastik lifleri inceleyin.

Sonuçlar

Bu çalışmada, toplam 24 fare dahil edildi ve rastgele atandı: sırasıyla Sham grubunda 12 ve PPE + CaCl2 grubunda 12. Tüm veriler, aksi belirtilmedikçe ortalama ± standart sapmalar olarak sunulur. Ortalama ameliyat süresi 55.67 dk ± 4.08 dk idi. İntraoperatif ölüm veya anevrizma rüptürü olmadı ve ameliyattan sonraki 21 gün içinde hayatta kalma oranı %100 idi. Abdominal aort diseksiyonuna bağlı ciddi intestinal yapışıklıklar veya komplikasyonlar gözle...

Tartışmalar

AAA'nın moleküler mekanizmaları üzerine yapılan araştırmalar, kararlı bir hayvan modeli gerektirir. Sonuç olarak, 1960'larda Economou ve arkadaşları tarafından ilk geliştirilmesinden bu yana çok sayıda AAA hayvan modeli kurulmuştur29. Bu modeller arasında CaCl2, maliyet etkinliği, teknik basitliği ve güvenilir tekrarlanabilirliği nedeniyle kemirgenlerde sıklıkla kullanılmaktadır. Bununla birlikte, perivasküler CaCl2 ...

Açıklamalar

Yazarlar, araştırmanın potansiyel bir çıkar çatışması olarak yorumlanabilecek herhangi bir ticari veya finansal ilişkinin yokluğunda yapıldığını beyan ederler.

Teşekkürler

Bu çalışma, Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakıfları (No. 82300542, 81770471), Sichuan Bilim ve Teknoloji Programı (No. 2022YFS0359, 2019JDRC0104) ve Sichuan Üniversitesi Batı Çin Hastanesi Doktor Sonrası Araştırma Projesi (No. 2023HXBH108) tarafından desteklenmiştir. Finansman kuruluşları, çalışmanın tasarımında, verilerin toplanmasında, analizinde ve yorumlanmasında ve makalenin yazılmasında hiçbir rol oynamamıştır.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Anesthesia MachineRWDR550
ButorphanolJiangsu Hengrui Pharmaceutical Co., Ltd220608BP1ml: 1mg
C57BL/6JGpt Male MiceGemPharmatechN000013
Calcium ChlorideSigma AldrichC4901100 g
CarprofenMCEHY-B1227100 mg
Chow DietDossy Experimental Animals Co.Ltd
Digital CaliperGreenerIP54
EthanolJinhe Pharmaceutical Co.Ltd53968275%/500 mL
EVG Staining KitSolarbioG1597
GraphPad PrismGraphpadVer 9.0.0
H&E Staining KitServicebioG1076
Insulin SyringeBD2143420
IsofluraneRWDR510-22-4100 mL
Masson Staining KitServicebioG1006
Normal SalineServicebioG4702500 mL
ParaformaldehydeBiosharpBL539A4%/500 mL
PBS, 1xServicebioG4202500 mL
Porcine Pancreatic ElastaseSigma AldrichE1250100 mg
Povidine IodineYongan Pharmaceutical Co.Ltd5%/100 mg
Prolene Polypropylene SutureEthicon LLC8709H
Rodent Ultrasound SystemFujifilmVevo 3100LT
Stereo MicroscopeOlympusSZ61
Ultrasonic CouplantKepplerKL-250250 g

Referanslar

  1. Chaikof, E. L., et al. The Society for Vascular Surgery practices guidelines on the care of patients with an abdominal aortic aneurysm. J Vasc Surg. 67 (1), 2-77 (2018).
  2. Johnston, K. W., et al. Suggested standards for reporting on arterial aneurysms. Subcommittee on reporting standards for arterial aneurysms, ad hoc committee on reporting standards, society for vascular surgery and north American chapter, international society for cardiovascular surgery. J Vasc Surg. 13 (3), 452-458 (1991).
  3. Bown, M. J., Sutton, A. J., Bell, P. R. F., Sayers, R. D. A meta-analysis of 50 years of ruptured abdominal aortic aneurysm repair. Br J Surg. 89 (6), 714-730 (2002).
  4. Erbel, R., et al. Esc guidelines on the diagnosis and treatment of aortic diseases: Document covering acute and chronic aortic diseases of the thoracic and abdominal aorta of the adult. The task force for the diagnosis and treatment of aortic diseases of the European Society of Cardiology (ESC). Eur Heart J. 35 (41), 2873-2926 (2014).
  5. Wanhainen, A., et al. Editor's choice - European Society for Vascular Surgery (ESVS) 2019 clinical practice guidelines on the management of abdominal aorto-iliac artery aneurysms. Eur J Vasc Endovasc Surg. 57 (1), 8-93 (2019).
  6. Veith, F. J., Ohki, T., Lipsitz, E. C., Suggs, W. D., Cynamon, J. Treatment of ruptured abdominal aneurysms with stent grafts: A new gold standard. Semin Vasc Surg. 16 (2), 171-175 (2003).
  7. Golledge, J., Thanigaimani, S., Powell, J. T., Tsao, P. S. Pathogenesis and management of abdominal aortic aneurysm. Eur Heart J. 44 (29), 2682-2697 (2023).
  8. Wanhainen, A., et al. Editor's choice -- European Society for Vascular Surgery (ESVS) 2024 clinical practice guidelines on the management of abdominal aorto-iliac artery aneurysms. Eur J Vasc Endovasc Surg. 67 (2), 192-331 (2024).
  9. Golledge, J., et al. Lack of an effective drug therapy for abdominal aortic aneurysm. J Intern Med. 288 (1), 6-22 (2020).
  10. Li, R., Liu, Y., Jiang, J. Research advances in drug therapy for abdominal aortic aneurysms over the past five years: An updated narrative review. Int J Cardiol. 372, 93-100 (2023).
  11. Lysgaard Poulsen, J., Stubbe, J., Lindholt, J. S. Animal models used to explore abdominal aortic aneurysms: A systematic review. Eur J Vasc Endovasc Surg. 52 (4), 487-499 (2016).
  12. Sénémaud, J., et al. Translational relevance and recent advances of animal models of abdominal aortic aneurysm. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 37 (3), 401-410 (2017).
  13. Patelis, N., et al. Animal models in the research of abdominal aortic aneurysm development. Physiol Res. 66 (6), 899-915 (2017).
  14. Golledge, J., Krishna, S. M., Wang, Y. Mouse models for abdominal aortic aneurysm. Br J Pharmacol. 179 (5), 792-810 (2022).
  15. Deng, G. G., et al. Urokinase-type plasminogen activator plays a critical role in angiotensin II-induced abdominal aortic aneurysm. Circ Res. 92 (5), 510-517 (2003).
  16. Gertz, S. D., Kurgan, A., Eisenberg, D. Aneurysm of the rabbit common carotid artery induced by periarterial application of calcium chloride in vivo. J Clin Invest. 81 (3), 649-656 (1988).
  17. Chiou, A. C., Chiu, B., Pearce, W. H. Murine aortic aneurysm produced by periarterial application of calcium chloride. J Surg Res. 99 (2), 371-376 (2001).
  18. Zhang, S., Cai, Z., Zhang, X., Ma, T., Kong, W. A calcium phosphate-induced mouse abdominal aortic aneurysm model. J Vis Exp. (189), e64173 (2022).
  19. Isenburg, J. C., Simionescu, D. T., Starcher, B. C., Vyavahare, N. R. Elastin stabilization for treatment of abdominal aortic aneurysms. Circulation. 115 (13), 1729-1737 (2007).
  20. Anidjar, S., et al. Elastase-induced experimental aneurysms in rats. Circulation. 82 (3), 973-981 (1990).
  21. Bhamidipati, C. M., et al. Development of a novel murine model of aortic aneurysms using peri-adventitial elastase. Surgery. 152 (2), 238-246 (2012).
  22. Xue, C., Zhao, G., Zhao, Y., Chen, Y. E., Zhang, J. Mouse abdominal aortic aneurysm model induced by perivascular application of elastase. J Vis Exp. (180), e63608 (2022).
  23. Origuchi, N., et al. Aneurysm induced by periarterial application of elastase heals spontaneously. Int Angiol. 17 (2), 113-119 (1998).
  24. Tanaka, A., Hasegawa, T., Zhi, C., Okita, Y., Okada, K. A novel rat model of abdominal aortic aneurysm using a combination of intraluminal elastase infusion and extraluminal calcium chloride exposure. J Vasc Surg. 50 (6), 1423-1432 (2009).
  25. Zhu, J. X., et al. Establishment of a new abdominal aortic aneurysm model in rats by a retroperitoneal approach. Front Cardiovasc Med. 9, 808732 (2022).
  26. Bi, Y., et al. Development of a novel rabbit model of abdominal aortic aneurysm via a combination of periaortic calcium chloride and elastase incubation. PLoS One. 8 (7), e68476 (2013).
  27. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. (65), e3564 (2012).
  28. Ishida, Y., et al. Prevention of CaCl2-induced aortic inflammation and subsequent aneurysm formation by the CCL3-CCR5 axis. Nat Commun. 11 (1), 5994 (2020).
  29. Economou, S. G., Taylor, C. B., Beattie, E. J., Davis, C. B. Persistent experimental aortic aneurysms in dogs. Surgery. 47, 21-28 (1960).
  30. Freestone, T., Turner, R. J., Higman, D. J., Lever, M. J., Powell, J. T. Influence of hypercholesterolemia and adventitial inflammation on the development of aortic aneurysm in rabbits. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 17 (1), 10-17 (1997).
  31. Carsten, C. G., et al. Elastase is not sufficient to induce experimental abdominal aortic aneurysms. J Vasc Surg. 33 (6), 1255-1262 (2001).
  32. Yue, J., Yin, L., Shen, J., Liu, Z. A modified murine abdominal aortic aneurysm rupture model using elastase perfusion and angiotensin II infusion. Ann Vasc Surg. 67, 474-481 (2020).
  33. Ailawadi, G., et al. Gender differences in experimental aortic aneurysm formation. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 24 (11), 2116-2122 (2004).
  34. Furubayashi, K., et al. The significance of chymase in the progression of abdominal aortic aneurysms in dogs. Hypertens Res. 30 (4), 349-357 (2007).
  35. Bi, Y., et al. Performance of a modified rabbit model of abdominal aortic aneurysm induced by topical application of porcine elastase: 5-month follow-up study. Eur J Vasc Endovasc Surg. 45 (2), 145-152 (2013).
  36. Wu, X. F., Zhang, J., Paskauskas, S., Xin, S. J., Duan, Z. Q. The role of estrogen in the formation of experimental abdominal aortic aneurysm. Am J Surg. 197 (1), 49-54 (2009).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Abdominal Aort AnevrizmasAAA ModeliKalsiyum Klor rElastaz nfiltrasyonuPatofizyolojik De i ikliklerHayvan ModelleriTeknik BasitlikAterostrombozAnevrizma R pt rPeriaortik nfiltrasyonUltrason DeneyleriHistolojik DeneylerMorfolojik De i ikliklerPatolojik De i iklikler

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır