Igal Gery and David Hicks for anti-SAG antibodies. Ram Fridlich for reading the manuscript.

NOT: yordam Üniversite Pierre ve Marie Curie (/ 2009/048 CE5) den etik komitesi Darwin tarafından onaylanmış Jelatin Çözüm, Aletler, Vibratome, Kültür Medya ve Kültür Plate 1. Hazırlık <ol><li> En az bir gün önce deney bir% 20 jelatin çözeltisi hazırlayın. <ol><li> Kapağın altında, CO2 bağımsız ortamı ihtiva eden 500 ml&#39;lik bir şişe (CO2 i) için gentamisin [10 mg / ml], 500 ul ilave edin. </li><li> Ayrı bir kabta 15 dakika boyunca sürekli karıştırma ile bir ısıtma bloğu üzerinde 95 ° C &#39;de ve ısı (aşama 1.1.1), CO2-I 20 ilave edin. Çözelti daha sonra kullanılmak üzere hazır olduğuna işaret ederek, sarı bir renk almasına neden dikkate alınmalıdır. </li><li> San renkli bir çözelti elde etmek, 45 dakika boyunca 95 ° C &#39;de daha fazla bir karıştırma ve ısıtma ile yukarıda hazırlanan çözelti (aşama 1.1.2) 4 jelatin g ve yavaş yavaş zayıf tartılır. Jelatin çözüm altına soğumasını bekleyinYaklaşık 5 dakika kaput. </li><li> Hava baloncuklarının oluşumunu olmayan bir 35 mm çaplı kültür tabakalarına jelatin solüsyonu 4 ml dökün. 30 dakika boyunca 21 ° C &#39;de çanak tutun. Plastik film ile yemekleri Kapak ve baş aşağı çevirin yemekleri. İsteğe bağlı olarak, kullanım öncesi, 2 ay için 4 ° C&#39;de yemekler saklayın. </li></ol></li><li> % 4 jelatin çözeltisi hazırlayın. <ol><li> Kapağın altında bir ısıtma bloğu üzerinde 42 ° C&#39;de CO2 -i steril plastik bir kap içinde orta ve ısı 25 ilave edin. Isıtma bloğu orta çıkarın ve yavaş yavaş sıcak orta ve heyecan için jelatin 1 g ekleyin. Hızla ısıtma bloğu (42 ° C) kabı dönmek ve sürecinde sıcak tutmak. </li></ol></li><li> Ayarlama makyaj vibratome cihazı: <ol><li> 4 ° C&#39;de saklandı% 20 jelatin çözeltisi içeren yemekler çıkarın. Bir neşter ile jelatin kesin. Jelatin dilim çevirin ve s bir damla kullanarak vibratome siyah destek disk üzerinde sopauper tutkal. </li><li> Ikiye bir jilet kırın ve vibratome tutan yuvaya yarısı yerleştirin. Vibratome aparat üzerine siyah destek diski takın. Sağ tarafına siyah topuzu açın. Vibratome başkanı tutarak yuvasını Fix. Jelatin blok kapsayacak vibratome tankında CO2 -i ortamın yeterli miktarda ekleyin. </li><li> Vibratome açın ve jelatin bloğun üç 100 mikron dilim kesti. Daha fazla kullanım için jelatin blok tutun. </li></ol></li><li> Kültür ortamında 40 ml hazırlayın: <ol><li> Başlık ile fetal dana serumu (FCS) ve% 10 Dulbecco tadil edilmiş Eagle ortamı (DMEM) hazırlayın. 1 mg / mL poli-D-Lisin ile fosfat tampon tuzlu su (PBS), pH 7.4 hazırlanır. </li><li> 96 oyuklu bir plaka içerisinde, kaplamak için kuyu alt Poly-D-Lizin 2 ug / cm 2 ekleyin. CO2 kuluçka% 5 içinde 37 ° C &#39;de 45 dakika boyunca plaka inkübe edin. İnkübasyondan sonra, PBS kaldırmak ve 200 ul yerine/ Kullanmadan önce% 5 CO 2 inkübatör 37 ° C&#39;de tekrar iyi DMEM ve yer. </li></ol></li></ol> Tüm Retina 2. Diseksiyon <ol><li> Fareyi enükleasyonu: <ol><li> Avrupa direktifi 2010/63 uyarınca fare Kurban: servikal dislokasyon ile. Kavisli-makas ile baş kesin ve dezenfektan ile dezenfekte göz sonra 100 mm çaplı Petri kabı yerleştirin. </li><li> Çok dikkatli bir kavisli tutuş kullanarak kesit ile optik sinir müstakil sonra göz çıkarın. Daha sonra 21 ° C&#39;de steril CO2 -i ortam içeren 35 mm Petri kabındaki her iki gözü yerleştirin. </li></ol></li><li> Retina Çıkarma: <ol><li> Göz küresi içine makas tanıtmak edebilmek için 18 G iğne yardımıyla göz ekstremitenin düzeyinde bir delik açın. Deliğin içinde düz makas tanıtmak ve dikkatle siliyer cismin çıkarılması için göz dünyanın her çevre üzerinde iris altında sklera kesti. </li><li&gt; Kornea ve lens çıkarın ve sklera ile retina bitişik olan gözün arka odasına tutun. İki ince kulpları ile, retina zarar vermeden arka odasının içinde bulunan vitrözü çıkarın. Retinanın düzleşme izin için dört radyal kesimler (retina / sklera) gerçekleştirin. </li><li> Oküler dünya toparlanma ve bir &quot;turuncu&quot; olarak soyun. Sklera ve retina pigment epiteli (RPE) retinayı ayırın. Hala optik sinirin düzeyi çok dikkatli ince kavisli-makas tutturulmuş retina ayırın. </li><li> İki ince saplar ile retinanın merkezine doğru çevreden kalan vitrözü ayırın. Tüm vitreus tamamen retina düzleşme izin kaldırılır emin olun. </li><li> Plastik bir pipet ekstremite kesin ve plastik bir pipet ile CO2 i ortam içeren 35 mm çapında Petri tabağına retina aktarın. </li></ol></li></ol> Düz Mounte 3. SızdırmazlıkJelatin Blok üzerine d Retina <ol><li> Düz monte retinanın sızdırmazlık izin vermek vibratome tankı (jelatin blok ücretsiz) gelen CO 2 -i orta 30 ml - 20 çıkarın. </li><li> Plastik pipet kullanarak bir cam slayt retina aktarın ve 2 -i orta jelatin dilim aşağı bakacak fotoreseptör ile jelatin dilim aktarmadan önce CO bir damla ekleyin. </li><li> Yavaşça diğer tarafta sıcak jelatin atılması aynı zamanda, retina ve jelatin bloğu arasındaki bloğun bir tarafı üzerinde ısıtılmış% 4 jelatin enjekte tarafından jelatin bloğuna retina takın. </li><li> Bir pastör pipet ile aspire 4% jelatin. Toplam sızdırmazlık sağlamak için 10 dakika boyunca bekleyin. Blok ve tamamen bıçak sokmak için CO 2 -i orta ekleyin. </li></ol> 4. Retina Kesit NOT: Bu adım, başka retinal hücreler olmaksızın fotoreseptör hücrelerin bir tabakasının elde edilmesi için kritik öneme sahiptir (Şekil 1,). <ol><li> Jelatin blokta üst başlayarak, retina ulaşmak için 100 mikron seri bölümleri kesmek. Iç tabakasının 120 mikron bölümleri - Sonra 100 kesti. Uygulamaya bağlı olarak, bu tabaka göz ardı edilebilir veya sıvı azot içinde saklanır. Vibratome hızı iç tabakası veya fotoreseptör katmanların kesit sırasında (1 veya 2) çok yavaş olduğundan emin olun. </li><li> Iç ve dış retina arasındaki ara yüze karşılık gelen retina ara madde 15 um bölümler yapın. Bir mikroskop altında bu bölümü gözlemleyin. kan damarlarının olmaması dış retina ulaşıldığını gösterir. </li><li> Jelatin, dış retina 200 um (fotoreseptör) Kesme ve CO2 -i ortam 3 ml ile dolu bir 35 mm çaplı çanak aktarın. Tüm retina tüm fotoreseptör tabakası bölümleri elde edilinceye kadar buz üzerinde tutun. </li></ol> 5. dissociating fotoreseptör hücreleri <ol><li> (Çanak alınlar) fotoreseptör katman (lar) ihtiva eden ve 10 dakika boyunca 37 ° C&#39;de bir inkübatör içinde (onları) koyun. </li><li> Forseps yavaşça jelatinden fotoreseptör tabaka ayrılır ve Ringer solüsyonu, 3 ml ile dolu yeni bir tabağına aktarın. Her fotoreseptör tabakası hazırlanması için bu adımı (5.2) tekrarlayın. </li><li> 5 ml&#39;lik bir polipropilen steril tüp içinde ve% 5 CO2 inkübatör içinde 37 ° C&#39;de 30 dakika inkübe (60 uM β-mersaptoetanol, 5.5 mM L-sistein 1,1 mM EDTA) aktivatör solüsyon, 25 ul papain 2 adet inkübe . papain aktivasyonu 37 ° C elde edilir. Bu kuluçka sırasında, (çok küçük) 2 mm2 parçalar halinde fotoreseptör tabakası kesilmiş ve 5 ml&#39;lik bir tüp içine bu parçaları aktarın. </li><li> Yerçekimi sedimantasyon, ardından çözelti Ringer çözeltisi, 1.5 ml ile iki kez retina durulayın. Numune ile tüp kalan Ringer çözeltisini çıkarın. </li><li> Aktive papain ve karışımı içeren tüp Ringer solüsyonu 475 ul ekleyin. Retinayı içeren tüp Bu çözüm ekleyin. </li><li> CO2 kuluçka% 5 içinde, 37 ° C&#39;de 20 dakika boyunca retina ile tüp inkübe edin. DMEM,% 10 FCS, 1 ml ilave etmek suretiyle reaksiyonu durdurun. Ölüm hücrelerinden sindirilmiş DNA deoksiribonükleaz 25 U I (DNAz I) ekleyin. Dikkatli bir şekilde 1 mL pipet kullanılarak bir hücre süspansiyonu homojen hale getirilir. Oda sıcaklığında 6 dakika boyunca 50 xg&#39;de dönerler. </li><li> Serum izlerini silmek ve hücre-pelet (özel reagents_equipment tablosuna bakınız) takviyeleri ile DMEM ortamı ekleyin ve dikkatlice 1 ml pipet ile hücre süspansiyonu tekrar süspansiyon süpernatant atın. Oda sıcaklığında 6 dakika boyunca 50 xg&#39;de dönerler. Bu adımı (5.7) kez daha tekrarlayın. </li></ol> 6 Kültürleme fotoreseptör hücreleri <ol><li> PN8 bir fare fotoreseptör bu tekniği kullanarak yaklaşık 1-1500000 hücreleri içerir. 1 de fotoreseptör hücreleri Tohumx 10 5 hücre / kültür ortamı ve kültür% 5 CO2 inkübatör içinde 37 ° C&#39;de 5 gün boyunca hücrelerin bir kültür plakasına cm2. 5. günde, immünokimyanın ve antikor tedarikçileri tarafından sağlanan batı lekeleme çalışma aşağıdaki yöntemlerden devam edin. Not: Adım kültür durdurmak ve ön testler referans 21&#39;de açıklanmaktadır. </li></ol>

<ol>
	<li>Kolb, H., Nelson, R., Fernandez, E., Jones, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Organization+of+the+Retina+and+Visual+System.">The Organization of the Retina and Visual System.</a> Webvision. , (2014).</li><li>Perez De Sevilla Muller, L., Shelley, J., Weiler, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Displaced+amacrine+cells+of+the+mouse+retina.">Displaced amacrine cells of the mouse retina.</a> J Comp Neurol. 505 (2), 177-189 (2007).</li><li>Mohand-Said, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Photoreceptor+transplants+increase+host+cone+survival+in+the+retinal+degeneration+(rd)+mouse.">Photoreceptor transplants increase host cone survival in the retinal degeneration (rd) mouse.</a> Ophthalmic Res. 29 (5), 290-297 (1997).</li><li>. RetNet, the Retinal Information Network Available from: <a target="_blank" href="https://sph.uth.edu/retnet">https://sph.uth.edu/retnet</a> (2014)</li><li>Mohand-Said, S., Hicks, D., Dreyfus, H., Sahel, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selective+transplantation+of+rods+delays+cone+loss+in+a+retinitis+pigmentosa+model.">Selective transplantation of rods delays cone loss in a retinitis pigmentosa model.</a> Arch Ophthalmol. 118 (6), 807-811 (2000).</li><li>MacLaren, R. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinal+repair+by+transplantation+of+photoreceptor+precursors.">Retinal repair by transplantation of photoreceptor precursors.</a> Nature. 444 (7116), 203-207 (2006).</li><li>Yang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transplantation+of+photoreceptor+and+total+neural+retina+preserves+cone+function+in+P23H+rhodopsin+transgenic+rat.">Transplantation of photoreceptor and total neural retina preserves cone function in P23H rhodopsin transgenic rat.</a> PLoS One. 5 (10), (2010).</li><li>Mohand-Said, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Normal+retina+releases+a+diffusible+factor+stimulating+cone+survival+in+the+retinal+degeneration+mouse.">Normal retina releases a diffusible factor stimulating cone survival in the retinal degeneration mouse.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 95 (14), 8357-8362 (1998).</li><li>Fintz, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Partial+characterization+of+retina-derived+cone+neuroprotection+in+two+culture+models+of+photoreceptor+degeneration.">Partial characterization of retina-derived cone neuroprotection in two culture models of photoreceptor degeneration.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 44 (2), 818-825 (2003).</li><li>Cronin, T., Leveillard, T., Sahel, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinal+degenerations:+from+cell+signaling+to+cell+therapy;+pre-clinical+and+clinical+issues.">Retinal degenerations: from cell signaling to cell therapy; pre-clinical and clinical issues.</a> Curr Gene Ther. 7 (2), 121-129 (2007).</li><li>Wright, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+searchlight+through+the+fog.">A searchlight through the fog.</a> Nat Genet. 17 (2), 132-134 (1997).</li><li>Leveillard, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+and+characterization+of+rod-derived+cone+viability+factor.">Identification and characterization of rod-derived cone viability factor.</a> Nat Genet. 36 (7), 755-759 (2004).</li><li>Lillig, C. H., Holmgren, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thioredoxin+and+related+molecules--from+biology+to+health+and+disease.">Thioredoxin and related molecules--from biology to health and disease.</a> Antioxid Redox Signal. 9 (1), 25-47 (2007).</li><li>Fridlich, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+thioredoxin-like+protein+rod-derived+cone+viability+factor+(RdCVFL)+interacts+with+TAU+and+inhibits+its+phosphorylation+in+the+retina.">The thioredoxin-like protein rod-derived cone viability factor (RdCVFL) interacts with TAU and inhibits its phosphorylation in the retina.</a> Mol Cell Proteomics. 8 (6), 1206-1218 (2009).</li><li>Yang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+cone+rescue+by+RdCVF+protein+in+a+dominant+model+of+retinitis+pigmentosa.">Functional cone rescue by RdCVF protein in a dominant model of retinitis pigmentosa.</a> Mol Ther. 17 (5), 787-795 (2009).</li><li>Bennett, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strategies+for+delivery+of+rod-derived+cone+viability+factor.">Strategies for delivery of rod-derived cone viability factor.</a> Retina. 25 (8 Suppl), S47 (2005).</li><li>Komaromy, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transient+photoreceptor+deconstruction+by+CNTF+enhances+rAAV-mediated+cone+functional+rescue+in+late+stage+CNGB3-achromatopsia.">Transient photoreceptor deconstruction by CNTF enhances rAAV-mediated cone functional rescue in late stage CNGB3-achromatopsia.</a> Mol Ther. 21 (6), 1131-1141 (2013).</li><li>Birch, D. G., Weleber, R. G., Duncan, J. L., Jaffe, G. J., Tao, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Randomized+trial+of+ciliary+neurotrophic+factor+delivered+by+encapsulated+cell+intraocular+implants+for+retinitis+pigmentosa.">Randomized trial of ciliary neurotrophic factor delivered by encapsulated cell intraocular implants for retinitis pigmentosa.</a> Am J Ophthalmol. 156 (2), 283-292 (2013).</li><li>Cronin, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+disruption+of+the+rod-derived+cone+viability+gene+leads+to+photoreceptor+dysfunction+and+susceptibility+to+oxidative+stress.">The disruption of the rod-derived cone viability gene leads to photoreceptor dysfunction and susceptibility to oxidative stress.</a> Cell Death Differ. 17 (7), 1199-1210 (2010).</li><li>Leveillard, T., Sahel, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rod-derived+cone+viability+factor+for+treating+blinding+diseases:+from+clinic+to+redox+signaling.">Rod-derived cone viability factor for treating blinding diseases: from clinic to redox signaling.</a> Sci Transl Med. 2 (26), 26ps16 (2010).</li><li>Fontaine, V., Hicks, D., Dreyfus, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+ganglioside+composition+of+photoreceptors+during+postnatal+maturation+of+the+rat+retina.">Changes in ganglioside composition of photoreceptors during postnatal maturation of the rat retina.</a> Glycobiology. 8 (2), 183-190 (1998).</li><li>Fontaine, V., Kinkl, N., Sahel, J., Dreyfus, H., Hicks, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Survival+of+purified+rat+photoreceptors+in+vitro+is+stimulated+directly+by+fibroblast+growth+factor-2.">Survival of purified rat photoreceptors in vitro is stimulated directly by fibroblast growth factor-2.</a> J Neurosci. 18 (23), 9662-9672 (1998).</li><li>Reichman, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+homeobox+gene+CHX10/VSX2+regulates+RdCVF+promoter+activity+in+the+inner+retina.">The homeobox gene CHX10/VSX2 regulates RdCVF promoter activity in the inner retina.</a> Hum Mol Genet. 19 (2), 250-261 (2010).</li><li>Sandu, C., Hicks, D., Felder-Schmittbuhl, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rat+photoreceptor+circadian+oscillator+strongly+relies+on+lighting+conditions.">Rat photoreceptor circadian oscillator strongly relies on lighting conditions.</a> Eur J Neurosci. 34 (3), 507-516 (2011).</li><li>Dorrell, M. I., Aguilar, E., Weber, C., Friedlander, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+gene+expression+analysis+of+the+developing+postnatal+mouse+retina.">Global gene expression analysis of the developing postnatal mouse retina.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 45 (3), 1009-1019 (2004).</li><li>Brooks, M. J., Rajasimha, H. K., Roger, J. E., Swaroop, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Next-generation+sequencing+facilitates+quantitative+analysis+of+wild-type+and+Nrl(-/-)+retinal+transcriptomes.">Next-generation sequencing facilitates quantitative analysis of wild-type and Nrl(-/-) retinal transcriptomes.</a> Mol Vis. 17, 3034-3054 (2011).</li><li>Delyfer, M. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcriptomic+analysis+of+human+retinal+surgical+specimens+using+jouRNAI.">Transcriptomic analysis of human retinal surgical specimens using jouRNAI.</a> J Vis Exp. (78), (2013).</li><li>Ying, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+CAT+reporter+construct+containing+277bp+GNAT2+promoter+and+214bp+IRBP+enhancer+is+specifically+expressed+by+cone+photoreceptor+cells+in+transgenic+mice.">A CAT reporter construct containing 277bp GNAT2 promoter and 214bp IRBP enhancer is specifically expressed by cone photoreceptor cells in transgenic mice.</a> Curr Eye Res. 17 (8), 777-782 (1998).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Retina biyoloji bir model organdır. Retinanın incelenmesi biyoloji 6 büyük keşiflere yol açtı. İlk tümör baskılayıcı gen RB1 kökeni yer almaktadır. Bu sevenless Oğlu ile etkileşim yoluyla reseptör tirozin kinaz ve MAP kinazlar arasındaki moleküler bağlantıyı ortaya koymaktadır. Bu Pax6, organ morfogenezisi ilk ana kontrol genin bulunmasından yer aldı. Bu, yaşa bağlı makula dejenerasyonu (YBMD) ile Kompleman faktör H (CFH&#39;lik) genetik dernek merkezinde genom dernek ekranında (GWAS) tarafından tanımlanan ilk hastalık yatkınlık geni olduğunu. Son olarak, Leber konjenital amaurosis için ilk başarılı gen tedavisi neden, herhangi bir insan ilk düzeltici gen terapisi deneme hastalığı kalıtsal. bu organ yapısı çoğu omurgalı türünde muhafaza edilir. In vivo manipülasyon için onun erişilebilirlik yüzde bu parçası üzerinde fonksiyonel genomik soruşturmalar erken teşvik etmiştirSinir sistemini ral. Biz vibratome kesit ile retinanın iç tabakasından fotoreseptör tabakasını ayırmak nasıl burada göstermek. Bu adım, saf fotoreseptör kültürleri elde etmek çok önemlidir. Bizim diseksiyon protokolü RPE hücreleri tarafından kontaminasyon çok olası hale getirir. Büyük zorluklardan biri bölümüne doğru iç ve dış retina gerekli olan retinanın düzleşme olduğunu. retinanın kesit kemirgenler gibi küçük çaplı retina iyi ve bu çap güncel mevcut malzeme ile teknik bir kısıtlamadır. Retina bir örnek üzerinde uygulama için, biyolojik olarak anlamlı bir deney başlamadan önce önerilir. Bu mRNA ve protein, her iki ekspresyon çalışma yapmak üzere malzeme kullanılarak, kültürlenmiş fotoreseptör hücrelerinin elde edilen temsili sonuçlar yöntemini açıklamaktadır. İfade çalışmaları da sezeryan üzerinde alternatif olarak yapılabilirns lazer yakalama mikro-kesim ile elde edilen, ama kültürleri en vibratome kesitlerinin kullanılarak gerçekleştirilir. Biz tam bir farklı strateji ile mikrodiseksiyon lazer tekniği kullanılmış olabilir. Ama, kültür için mikrodiseksiyon aparatı ile fotoreseptör tabakası toplamak, bu fiksatif önlemek için gerekli olacak ve bu anlamlı mevcut metodoloji karmaşık hale olacaktır. Biz retinitis pigmentosa modellerinde fotoreseptör dejenerasyonu sırasında vibratome bölümlerde gen ve protein ifade kinetik incelemeyi amaçlayan bir protokol geliştiriyoruz. Biz protokol ayrıntılı açıklaması retina biyoloji alanındaki araştırmacılara yararlı olabilir, ve en başta proteomik ve metabolomic çalışmalar için inanıyoruz.

Retina omurgalılar arasında korunmuş mimarisi vardır, merkezi sinir sisteminin bir parçasıdır. nöral retina nöronlar gelen ışığın, gözün arkasındaki retina pigment epiteli (RPE) ile yakın temas içinde fotoreseptör tabakası için en uzak olan, tabakalar halinde düzenlenmiştir. Çubuk ve koni photorecptors foton yakalama opsin duyarlı moleküller güveniyor ışığa duyarlı hücreler vardır. Bu moleküller, RPE 1 yönünde işaret fotoreseptör dış kesiminde bulunan, hücresel bir yapıya disk membranları üzerine sarılmaktadır. Genellikle çok erken fotoreseptör dejenerasyonlar durumlarında etkilenir bu yapı,% 10, her gün oranında yenilenir. yani söz konusu iç tabaka fotoreseptör, çift kutuplu, amakrin ve yatay hücrelerde olarak ganglion hücrelerinde alınan sinyal hesaplamak diğer nöronların çoğunu içerir. Onların akson ile bu sonOptik sinir olan bir kiriş oluşturur. Bu katman hücreleri, iç pleksiform tabakası 2 dışında bulunduğunda biyologlar vadeli yerinden amacrine hücrelerini kullandık o kadar korunmuş olduğunu. Nöronların Katmanlar radyal Müller glial hücreler bir armatürün içinde dağıtılır. Bipolar hücreler ganglion hücrelerinin fotoreseptörleri bağlantı. Bunlar, dış pleksiform katman ve iç pleksiform katman arasında yer alır. ganglion hücrelerinin iki kutuplu hücreler ile bağlantılı olarak iç pleksiform tabakasını oluşturur. amacrin hücreler iki kutuplu hücreler ve gangliyon hücreleri arasındaki iç pleksiform tabakasındaki bulunan ilişki hücre olarak adlandırılmaktadır. dış pleksiform tabakasını yatay hücreleri içerir. Merkezi sinir sisteminin nöronal tabakaların Bu yararlı düzenleme bir vibratome kullanarak düz monte retina dilme iç hücre tabakasından fotoreseptör tabakasının ayrılmasına izin verir. Başlangıçta, bu teknik, aktarma için fotoreseptörleri izole etmek için kullanılmıştırrd1 farede insan retinitis pigmentosa (RP) 3&#39;ün bir model göz splantation. rd1 fare çubuk-spesifik fosfodiesteraz p alt-birimi için kodlayan Pde6b geninde bir resesif mutasyonu taşır. İnsanlarda 4 RP bu gen sonucu Resesif mutasyonlar. Çubuk fotoreseptör dejenere sonra, hasta gece görüş kaybeder, ve, mutasyona uğramış gen ifade ikinci adım olarak dejenere yok şaşırtıcı koni fotoreseptör. Kozalak renkli görme ve görme keskinliği için gerekli olduğundan, hastalar giderek kör olur ve hastalık için etkili bir tedavi henüz gelişmemiştir. Vahşi tip fare, konakçı fare koni dejenerasyonu fotoreseptör tabaka aşılanmasıyla, 3,5 geciktirilir. çubuklar ve iki kutuplu hücreler arasındaki sinaptik bağlantı sadece r belirli bir aşamasında elde edilebilir, çünkü rod-koni dejeneratif modelinde kayıp çubuklar nakli ile ikame edilmiş olabilirNRL ifade 6 başlangıcı ile işaretlenmiş etinal gelişme. Fotoreseptörlerin tabakası RPE ve fotoreseptör kalan, koni sadece% 3 tekabül dış retina arasında, çubuk-az rd1 retinanın alt-retinal cerrahi alanda tarafından tanıtıldı. İki hafta ameliyat sonrası, normal bir fotoreseptör tabakası ile nakledilen hayvandan koni% 40, ya da sahte-işletilen hayvan iç retina hücrelerinin normal bir tabaka ile nakledilen hayvan kıyasla hayatta. koni hayatta kalma topografisi, yayılmış, aşılanmış dokunun pozisyonunda bulunan mutasyona uğramış retinanın, tüm yüzey üzerinde bir koruyucu etki yayılabilir molekül 7 bağlı olduğunu gösterir. Sonra, koruyucu etkisi çubuklar 8,9 ile proteinin sekresyonunu alır hale geldiğini doğrulamak için, bir ko-kültür sistemi olarak koşullandırılmış kültür ortamları kullanmışlardır. Biz bu proteinin expre olacağını varsayımındaolmayan bir hücre özerk bir şekilde 10 çubuklar koruyucu sinyal kaybı ile ikincil koni dejenerasyon tetikleyecek hastalığın ilk aşamasında kendi ölüm çubuklar tarafından ve sürekli ve özellikle popülasyonunda ifade. Çünkü primatlarda koni aracılı merkezi görme önemi bu varsayılan protein RP için son derece alakalı tedavi aracı olacaktır. RP konileri korunması teorik 11 kör olmak, dünya çapında 1,5 milyon hastanın toplam önleyecektir. Bir retina cDNA kütüphanesinden 12 Çubuk türetilmiş Koni Canlılık Faktörü (RdCVF) kodlayan bir cDNA&#39;nın belirlenmesi için yüksek içerik tarama yaklaşımı ve bir koni zenginleştirilmiş kültür modeli kullandık. RdCVF, ilginç bir şekilde, redoks homeostazı 13 yer alan, söz konusu tioredoksin proteinleri için kodlayan genin homolog olan NXNL1 geninin splayslanmış ürünüdür. genin ikinci eklenmiş bir ürün RdCVFL hedefine oksidatif d karşı Tau proteini koruyan bir enzimdir14 Amage. RdCVF İdaresi koni ikincil dejenerasyonu ve bir resesif onların görme fonksiyonunun kaybı ve RP 12,15 baskın modelini önler. Bu, yenilikçi tedavi stratejisinin 16 iki önemli yönlerini gösterir. İlk olarak, bir gen, bağımsız bir şekilde, RP vakaların çoğunda uygulanabilir. İkincisi, rekabet faktörü aksine CNTF, RdCVF sağkalım görme fonksiyonunun 17 bakım ile ilişkilidir. Fonksiyonel etkisinin olmaması RP hastalara 18 CNTF&#39;nin yönetiminin klinik yarar yokluğu nedeni açıklayabilir. RdCVF in vitro koni kurtarma RdCVF bağışıklık sistemindeki 12 inhibe beri çubuk ve koni arasındaki önemli yaşam sinyalinin bir büyük olasılıkla. Buna ek olarak, çubuk-türevli koni canlılığı geninin bozulması, oksidatif stres 19 disfonksiyon ve duyarlılık fotoseptör yol açar. kullanımıfotoreseptör tabakası RdCVF belirlenmesi kökeni ve nörodejeneratif hastalıklar 20 katılan yeni redoks sinyali olduğunu. Bu yazıda izole etmek ve fotoreseptör tabakadan kültür hücreleri RdCVF bölgesinin aktivitesinin karakterize edilmesi için kullanılan bir protokol açıklar. fotoreseptör 5-7 gün 21 kültür içinde muhafaza edilebilir. Bu teknik aynı zamanda fotoreseptör spesifik genlerin ekspresyonunu incelemek için kullanılabilir.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="984">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:319px;"><a name="RANGE!A1:D28">Name of Material / Equipment</a></td>
			<td style="width:167px;">Company</td>
			<td style="width:131px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:368px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cytidine 5&#8242;-diphosphocholin*</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C0256</td>
			<td>4.7 &#181;M Cytidine 5&#8242;-diphosphocholin</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cytidine 5&#8242;-diphosphoethanolamine*</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C0456</td>
			<td>2.7 &#181;M Cytidine 5&#8242;-diphosphoethanolamine</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Linole&#239;c acid/ bovine serum albumin (BSA)*</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>L8384</td>
			<td>100 &#181;g/ml linole&#239;c acid/ bovine serum albumin (BSA)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Triiodo-L-thyronine*</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T6397</td>
			<td>0.03 &#181;M Triiodo-L-thyronine</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">96-wells plate</td>
			<td>Greiner bio-one</td>
			<td>655-095</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Binocular microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>MZ-75</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="26">
			<td height="26" style="height:26px;">CO2 independent (CO2-i)</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>18045054</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">DMEM</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>41966029</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Forceps n&#176;5 Dumont</td>
			<td>Bionic</td>
			<td>11254-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Gelatin from porcin skin type A</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G2500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">GeneChip&#160;</td>
			<td>Affymetrix</td>
			<td>U74v2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Gentamicin solution</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>15710049</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Hydrocortison*</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>H0888</td>
			<td>0.55 &#181;M hydrocortison</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Insulin* (I)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I1884 (ITS)</td>
			<td>0.86 &#181;M insulin (I)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Papain</td>
			<td>Worthington-biochem</td>
			<td>WOLS03124</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Poly-D-Lysine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P-6407</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Progesterone*</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P7556&#160;</td>
			<td>2.0 &#181;M progesterone</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Prostaglandin*</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P5172</td>
			<td>0.28 &#181;M prostaglandin</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Putrescine*</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P5780</td>
			<td>&#160;182 &#181;M putrescine</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Scalpel Albion</td>
			<td>EMS</td>
			<td>72000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Scissor&#160;</td>
			<td>Moria</td>
			<td>15396-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sodium Pyruvate*</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S8636</td>
			<td>1 mM sodium pyruvate</td>
		</tr>
		<tr height="26">
			<td height="26" style="height:26px;">Sodium Selenite* (S)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I1884 (ITS)</td>
			<td>0.29 &#181;M Na2SeO3&#160;&#160; (S)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Taurine*</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T8691</td>
			<td>3 mM taurine</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Transferrin* (T)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I1884 (ITS)</td>
			<td>0.07 &#181;M transferrin (T)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Vibratome apparatus</td>
			<td>Leica</td>
			<td>VT1000-S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;"></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">* Supplements</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

vibratome sectioning mouse retina to prepare photoreceptor cultures

Retina ışığın yönünü dikkate retina en uzak kısmında retina pigmente epitel ile, fotoreseptör gelen katmanlar nöronlar ile temas halinde her iki çubuklar ve koniler mimarisi düzenledi santral sinir sisteminin bir parçasıdır ve En yakın mesafe ganglion hücreleri. Bu mimari vibratome kesit tarafından fotoreseptör tabakasının ayrılmasına izin verir. 8 gün yaşlı bir fare disseke nöral retina düz gömülü aşağı bakacak% 20 jelatin fotoreseptör tabakasının bir dilimin üstüne% 4 jelatin. Bir Vibratome ve iki ucu keskin jilet kullanarak, 100 mikron kalınlığında iç retina kesilir. Bu bölüm, gangliyon hücreleri ve özellikle iki kutuplu hücreler üzerindeki iç katman içermektedir. Fotoreseptörleri içeren dış retina 200 mikron kurtarıldı önce 15 mikron bir aracı bölümü atılır. jelatin, 37 ° C&#39;de ısıtma ile ayrılmaktadır. Dış tabakanın adet doğmuş iyileşmesini olan37 ° C&#39;de 20 dakika boyunca aktive edilmiş papain 2 birimleri ile Ringer çözeltisi 500 ul monte edilir. Reaksiyon Dulbecco Modifiye Edilmiş Eagle Ortamı (DMEM) içinde 500 ul% 10 fetal dana serumu (FCS) eklenerek durdurulur, DNAz I daha sonra 25 adet serum çıkarmak için oda sıcaklığında santrfuj birkaç kez yıkanır ilave edilir ve hücreler içinde tekrar süspansiyon haline getirilmiştir 500 DMEM ul / cm2, 1 x 10 5 hücre tohumlanır. in vitro olarak 5 gün büyütülür ve bunların canlılığı ölü / canlı deney kullanılarak atılır. Kültür saflığı ilk deney sırasında mikroskop altında incelenmesi ile belirlenir. saflık sonra tohumlama ve histolojik slayt üzerinde hücreleri tespit ve bir tavşan poliklonal anti-SAG, bir fotoreseptör işaretleyici ve fare monoklonal anti-RHO, bir çubuk fotoreseptör spesifik marker kullanarak analiz tarafından onaylanmıştır. Seçenek olarak ise, fotoreseptör (% 97 çubuklar) geni veya protein ifadesi analizi için ve nakli için de kullanılabilir.

Yanı sıra, transplantasyon, fotoreseptör tabakalar da fotoreseptör kültürleri 12,22 yapmak için tohum hücreleri tarafından hücre sinyalini incelemek için kullanılmıştır. Ek olarak, gen ekspresyonu ve sirkadyen ritim 23,24 incelemek için kullanılır. Bu% 5 Şekil 1E CO2 (bir kuluçka makinesi içinde 37 ° C&#39;de 5 gün boyunca hücrelerin FCS yokluğunda fotoreseptör kültürleri hazırlamak için doğum sonrası 8. günde, vahşi tip fare hücre fotoreseptör tabakadır ve korumuştur ). Hücreler daha sonra% 4 paraformadehid kullanılarak bekletilir ve daha sonra her iki fare monoklonal anti-RHO antikor tedarikçi tarafından sunulan yöntemler kullanılarak imünositokimyasal analizler için devam edildi (1: 250, Millipore Mab5316) veya tavşan poliklonal anti-SAG (1: 200, cömert Igal Gery ve David Hicks) hediye. Bu kullanılan anti-RHO ve anti-SAG (her ne kadar, anti-SAG etiket koniler ve çubuklar) anti-SAG, anti-RHO daha önceki bir marker olması nedeniyle. cel oranıAnti-RHO antikoru pozitif mı, anti-SAG antikorları (Şekil 2) için pozitif daha düşüktür. Bu SAG, çubuk arrestin da retinanın doğum sonrası olgunlaşma sırasında, SAG ifadesi olduğunu önceler gerçeği ile alternatif izole katmanda fotoreseptör% 3 yapmak, ya da koni tarafından ifade gerçeği ile açıklanabilir RHO&#39;da 25,26 arasında. fotoreseptör RNA CsCI ultrasantrifüj 27 kullanılarak hazırlandı ve fare DNA yonga dizisi hibridize edildi 35 gün arası hayvanların doğal tipte, retina ve beyin fotoreseptör göre, spesifik gen ekspresyonunu izlemek için kullanıldı. Beyin (Şekil 3A) ile karşılaştırıldığında rodopsin için haberci (Rho), S-arrestin (SAG) ve koni transdusin (Gnat2) retinada spesifik olarak ifade edilmiştir. sentezleme kapsar tüm retinada fotoreseptör daha tabakası (PR) göze çarpmaktadırİç retina tabakası bu genler fotoreseptör tarafından gerçekten ifade gösteren. Gnat2 için Rho SAG ile karşılaştırıldığında görece sentezleme İzole fotoreseptör tabaka içinde ihtiva edilen koni tarafından ifade edildiğini göstermektedir. Bütün retina göre fotoreseptör tabakada recoverin ifadesi (Rcvrn) (Şekil 3B) artar. fotoreseptör tabakası, aynı zamanda RHO ve GNAT2 antikor tedarikçi tarafından sağlanan yöntemleri takip ederek Western blotting ile ekspresyonunu izlemek ve iç retina tabakasının (Şekil 4) tespit etmek için kullanıldı. Bütün retinada ve doğum sonrası 35 günlük rd1 fare retina sırasıyla RHO ve GNAT2 28, çubuk ve koni belirteçleri olmaması dikkat edin. <img alt="Şekil 1," src="/files/ftp_upload/51954/51954fig1highres.jpg" /> Fisaat&#39;in 1. fare retinanın vibratome kesit şematik görünümü. Vibratome bıçak ile iç retina (A) jelatin dilim aşağı bakacak fotoreseptör düz monte retina montajı. (B) Bölüm. Dış retina (C) Bölüm jelatin ekledi. (D) Kontrol fotoreseptör tabakasının izolasyonundan sonra retina fragmanı kenarında fotoreseptör varlığı. Yeşil floresan için kullanılan ölçek çubuğu beyaz ışık mikroskobu kullanılmaktadır. fotoreseptör resmin kenarında yer almaktadır. (E) Yetiştirme fotoreseptör hücreleri (post-beş gün). (F) Panel E. Yükseköğretim büyütme <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/51954/51954fig2highres.jpg" width="550" /> Fare fotoreseptör kültüründe RHO ve SAG Şekil 2. Diferansiyel ifadesi. Çekirdek (A) boyanması (mavi), (B) SAG boyama (yeşil), (C) RHO boyama (kırmızı). (D) görüntü birleşti. SAG boyama önceki RHO boyama daha ifade olduğundan, yalnızca iki hücre çift SAG ve RHO (bkz *) etiketli. Ölçek çubuğu:. 23 mikron <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51954/51954fig2highres.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için burayı tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/51954/51954fig3highres.jpg" /> Beyin ve bütün retina otuz beş gün arası vahşi tip hayvanların fotoreseptör üç gen ekspresyonunun 3. Karşılaştırma Şekil. (A), rodopsin (Rho), S-arrestin (SAG) ve koni transdusin (Gnat2). (B) Kalbindin (eden: calb1) ve Recoverin (Rcvrn). Veri göreceli ifade olarak gösterilir. göreceli ifade bir ekspresyon değerdirKBaSS (http://kbass.institut-vision.org/KBaSS/) bilgi veritabanında mevcut yazılım Sağlam Çok dizi Ortalama (RMA) ile normaliszation sonra mikroarray verileri elde. <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/51954/51954fig4highres.jpg" width="400" /> Iç retina ve doğum sonrası gün 35. ACTB, beta de rd1 fare retinada onların ifade doğum sonrası gün 35 Yokluğunda bir yabani tip retina dış retina RHO ve GNAT2 Şekil 4. İfade aktin. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51954/51954fig4highres.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <!-- Repeat of the materials table
<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> Malzeme / Ekipman Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog Numarası </td><td>Yorumlar / Açıklama </td></tr><tr><td> Sitidin 5&#39;-diphosphocholin * </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> C0256 </td><td> 4.7 uM sitidin, 5&#39;-diphosphocholin </td></tr><tr><td> Sitidin 5&#39;-diphosphoethanolamine * </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> C0456 </td><td> 2.7 uM sitidin, 5&#39;-diphosphoethanolamine </td></tr><tr><td> Linoleik asit / sığır serum albümini (BSA) * </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> L8384 </td><td> 100 ug / ml, linoleik asit / sığır serum albümini (BSA) </td></tr><tr><td> Triiyodo-L-tironin * </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> T6397 </td><td> 0.03 uM triiyodo-L-tironin </td></tr><tr><td> 96-kuyu plaka </td><td> Greiner Bio-on </td><td> 655-095 </td><td></td></tr><tr><td> Binoküler mikroskop </td><td> Leica </td><td> MZ-75 </td><td></td></tr><tr><td> CO 2 bağımsız (CO 2 i) </td><td> Hayat Technologies </td><td> 18045054 </td><td></td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Life Technologies </td><td> 41966029 </td><td></td></tr><tr><td> Forseps N 5 Dumont ° </td><td> Biyonik </td><td> 11254-20 </td><td></td></tr><tr><td> Porcin cilt tipi A Jelatin </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> G2500 </td><td></td></tr><tr><td> GeneChip </td><td> Affymetrix </td><td> U74v2 </td><td></td></tr><tr><td> Gentamisin çözümü </td><td> Life Technologies </td><td> 15710049 </td><td></td></tr><tr><td> Hydrocortison * </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> H0888 </td><td> 0.55 uM hydrocortison </td></tr><tr><td> İnsülin * (I) &#39;e </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> I1884 (ITS) </td><td> 0.86 uM insülini (I) &#39;e </td></tr><tr><td> Papain </td><td> Worthington-biyokimya </td><td> WOLS03124 </td><td></td></tr><tr><td> Poli-D-Lisin </td><td> Sigma-AIdrich </td><td>P-6407 </td><td></td></tr><tr><td> Progesteron * </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> P7556 </td><td> 2.0 uM progesteron </td></tr><tr><td> Prostaglandin * </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> P5172 </td><td> 0.28 uM prostaglandin </td></tr><tr><td> Putressin * </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> P5780 </td><td> 182 uM putressin </td></tr><tr><td> Neşter Albion </td><td> EMS </td><td> 72000 </td><td></td></tr><tr><td> Makasla kesmek </td><td> Moria </td><td> 15396-00 </td><td></td></tr><tr><td> Sodyum Piruvat * </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> S8636 </td><td> 1 mM sodyum piruvat </td></tr><tr><td> Sodyum Selenit *, (S) </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> I1884 (ITS) </td><td> 0.29 uM Na 2 SEO 3 (S) </td></tr><tr><td> Taurin * </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> T8691 </td><td> 3mM taurin </td></tr><tr><td&gt; Transferin * (T) </td><td> Sigma-AIdrich </td><td> I1884 (ITS) </td><td> 0.07 uM transferin (T) </td></tr><tr><td> Vibratome Cihaz </td><td> Leica </td><td> VT1000 S </td><td></td></tr><tr><td> * Takviyeler </td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table> Tablo 1: Spesifik malzeme ve ekipmanları en kullanıldı. -&gt;

Watch this Scientific Journal Video about Vibratome Sectioning Mouse Retina to Prepare Photoreceptor Cultures at JoVE.com

Vibratome Sectioning Mouse Retina to Prepare Photoreceptor Cultures

8 gün yaşlı bir fare Sinir retina% 4 jelatin bloğunun üstünde olduğunu. Vibratome ile fotoreseptör tabakası (200 um), izole edildikten sonra, fotoreseptör kültür mekanik ve enzimatik ayrışma sonrasında tohumlanır. fotoreseptör moleküler ve biyokimyasal analizler ya da transplantasyon için kullanılabilir.

Vibratome Kesit Fare Retina fotoreseptör Kültürler hazırlayın

The retina is a part of the central nervous system that has organized architecture, with neurons in layers from the photoreceptors, both rods and cones in ...

vibratome-sectioning-mouse-retina-to-prepare-photoreceptor-cultures

Research

JoVE Journal

Neuroscience

16.7K Görüntüleme.  UMR_S 968, Institut de la Vision.  8 gün yaşlı bir fare Sinir retina% 4 jelatin bloğunun üstünde olduğunu. Vibratome ile fotoreseptör tabakası (200 um), izole edildikten sonra, fotoreseptör kültür mekanik ve enzimatik ayrışma sonrasında tohumlanır. fotoreseptör moleküler ve biyokimyasal analizler ya da transplantasyon için kullanılabilir. 

Video: Vibratome Sectioning Mouse Retina to Prepare Photoreceptor Cultures

Multiple-mouse Neuroanatomical Magnetic Resonance Imaging

The field of mouse phenotyping with magnetic resonance imaging (MRI) is rapidly growing, motivated by the need for improved tools for characterizing and evaluating mouse models of human disease. MRI is an excellent modality for investigating genetically altered animals. It is capable of whole brain coverage, can be used in vivo, and provides multiple contrast mechanisms for investigating different aspects of neuranatomy and physiology. The advent of high-field scanners along with the ability to scan multiple mice simultaneously allows for rapid phenotyping of novel mutations.
Effective mouse MRI studies require attention to many aspects of experiment design. In this article, we will describe general methods to acquire quality images for mouse phenotyping using a system that images mice concurrently in shielded transmit/receive radio frequency (RF) coils in a common magnet (Bock et al., 2003). We focus particularly on anatomical phenotyping, an important and accessible application that has shown a high potential for impact in many mouse models at our imaging centre. Before we can provide the detailed steps to acquire such images, there are important practical considerations for both in vivo brain imaging (Dazai et al., 2004) and ex vivo brain imaging (Spring et al., 2007) that should be noted. These are discussed below.

Magnetic resonance imaging (MRI) has become an increasingly popular tool for examining the phenotype of genetically altered mice. This article illustrates the methods necessary to achieve high-throughput phenotyping of genetically altered mice using multiple-mouse MRI.

Çoklu-fare nöroanatomik Manyetik Rezonans Görüntüleme

The field of mouse phenotyping with magnetic resonance imaging (MRI) is rapidly growing, motivated by the need for improved tools for characterizing and ...

Nörobilim

Preparation of Living Isolated Vertebrate Photoreceptor Cells for Fluorescence Imaging

In the vertebrate retina, phototransduction, the conversion of light to an electrical signal, is carried out by the rod and cone photoreceptor cells1-4. Rod photoreceptors are responsible for vision in dim light, cones in bright light. Phototransduction takes place in the outer segment of the photoreceptor cell, a specialized compartment that contains a high concentration of visual pigment, the primary light detector. The visual pigment is composed of a chromophore, 11-cis retinal, attached to a protein, opsin. A photon absorbed by the visual pigment isomerizes the chromophore from 11-cis to all-trans. This photoisomerization brings about a conformational change in the visual pigment that 
initiates a cascade of reactions culminating in a change in membrane potential, and bringing about the transduction of the light stimulus to an electrical signal. The 
recovery of the cell from light stimulation involves the deactivation of the intermediates activated by light, and the reestablishment of the membrane potential. Ca2+ modulates the activity of several of the enzymes involved in phototransduction, and its concentration is reduced upon light stimulation. In this way, Ca2+ plays an important role in the recovery of the cell from light stimulation and its adaptation to background light.
Another essential part of the recovery process is the regeneration of the visual pigment that has been destroyed during light-detection by the 
photoisomerization of its 11-cis chromophore to all-trans5-7. This regeneration begins with the release of all-trans retinal by 
the photoactivated pigment, leaving behind the apo-protein opsin. The released all-trans retinal is rapidly reduced in a reaction utilizing NADPH to all-
trans retinol, and opsin combines with fresh 11-cis retinal brought into the outer segment to reform the visual pigment. All-trans retinol is 
then transferred out of the outer segment and into neighboring cells by the specialized carrier Interphotoreceptor Retinoid Binding Protein (IRBP).
Fluorescence imaging of single photoreceptor cells can be used to study their physiology and cell biology. Ca2+-sensitive fluorescent dyes can be used to examine in detail the interplay between outer 
segment Ca2+ changes and response to light8-12 as well as the role of inner segment Ca2+ stores in Ca2+ homeostasis13,14. 
Fluorescent dyes can also be used for measuring Mg2+ concentration15, pH, and as tracers of aqueous and membrane compartments16. 
Finally, the intrinsic fluorescence of all-trans retinol (vitamin A) can be used to monitor the kinetics of its formation and removal in single 
photoreceptor cells17-19.

A method is described for the preparation of single living photoreceptor cells from different vertebrate species for fluorescence imaging. The method can be used to image the fluorescence of endogenous fluorophores, such as NADH or vitamin A, or that of exogenously added fluorescent dyes sensitive to Ca2+ or other factors.

Floresans Görüntüleme Living İzole Omurgalı fotoreseptör hücrelerinin hazırlanması

In the vertebrate retina, phototransduction, the conversion of light to an electrical signal, is carried out by the rod and cone photoreceptor cells1-4.  ...

Vibratome Sectioning for Enhanced Preservation of the Cytoarchitecture of the Mammalian Organ of Corti

The mammalian organ of Corti is a highly ordered cellular mosaic of mechanosensory hair and nonsensory supporting cells (reviewed in 1,2).Visualization of this cellular mosaic often requires that the organ of Corti is cross-sectioned. In particular, the nonsensory pillar and Deiters' cells, whose nuclei are located basally with respect to the hair cells, cannot be visualized without cross-sectioning the organ of Corti. However, the delicate cytoarchitecture of the mammalian organ of Corti, including the fine cytoplasmic processes of the pillar and Deiters' cells, is difficult to preserve by routine histological procedures such as paraffin and cryo-sectioning, which are compatible with standard immunohistochemical staining techniques.
Here I describe a simple and robust procedure consisting of vibratome sectioning of the cochlea, immunohistochemical staining of these vibratome sections in whole mount, followed by confocal microscopy. This procedure has been used widely for immunhistochemical analysis of multiple organs, including the mouse limb bud, zebrafish gut, liver, pancreas, and heart (see 3-6 for selected examples). In addition, this procedure was sucessful for both imaging and quantitificaton of pillar cell number in mutant and control organs of Corti in both embryos and adult mice 7. This method, however, is currently not widely used to examine the mammalian organ of Corti. The potential for this procedure to both provide enhanced preservation of the fine cytoarchitecture of the adult organ of Corti and allow for quantification of various cell types is described.

A simple procedure of vibratome sectioning the organ of Corti, followed by immunohistochemistry and confocal microscopy is described. This procedure allows for improved preservation of the fine cytoarchitecture of the mammalian organ of Corti, and consequently allows for accurate quantification of cell types.

Corti Memeli Organ hücre mimarisini Gelişmiş Koruma için Vibratome Kesit

The mammalian organ of Corti is a highly ordered cellular mosaic of mechanosensory hair and nonsensory supporting cells (reviewed in 1,2).Visualization of ...

In vivo Electroporation of Developing Mouse Retina

The functional characterization of genes expressed during mammalian retinal development remains a significant challenge. Gene targeting to generate constitutive or conditional loss of function knockouts remains cost and labor intensive, as well as time consuming. Adding to these challenges, retina expressed genes may have essential roles outside the retina leading to unintended confounds when using a knockout approach. Furthermore, the ability to ectopically express a gene in a gain of function experiment can be extremely valuable when attempting to identify a role in cell fate specification and/or terminal differentiation.
We present a method for the rapid and efficient incorporation of DNA plasmids into the neonatal mouse retina by electroporation. The application of short electrical impulses above a certain field strength results in a transient increase in plasma membrane permeability, facilitating the transfer of material across the membrane 1,2,3,4. Groundbreaking work demonstrated that electroporation could be utilized as a method of gene transfer into mammalian cells by inducing the formation of hydrophilic plasma membrane pores allowing the passage of highly charged DNA through the lipid bilayer 5. Continuous technical development has resulted in the viability of electroporation as a method for in vivo gene transfer in multiple mouse tissues including the retina, the method for which is described herein 6, 7, 8, 9, 10. 
DNA solution is injected into the subretinal space so that DNA is placed between the retinal pigmented epithelium and retina of the neonatal (P0) mouse and electrical pulses are applied using a tweezer electrode. The lateral placement of the eyes in the mouse allows for the easy orientation of the tweezer electrode to the necessary negative pole-DNA-retina-positive pole alignment. Extensive incorporation and expression of transferred genes can be identified by postnatal day 2 (P2). Due to the lack of significant lateral migration of cells in the retina, electroporated and non-electroporated regions are generated. Non-electroporated regions may serve as internal histological controls where appropriate. 
Retinal electroporation can be used to express a gene under a ubiquitous promoter, such as CAG, or to disrupt gene function using shRNA constructs or Cre-recombinase. More targeted expression can be achieved by designing constructs with cell specific gene promoters. Visualization of electroporated cells is achieved using bicistronic constructs expressing GFP or by co-electroporating a GFP expression construct. Furthermore, multiple constructs may be electroporated for the study of combinatorial gene effects or simultaneous gain and loss of function of different genes. Retinal electroporation may also be utilized for the analysis of genomic cis-regulatory elements by generating appropriate expression constructs and deletion mutants. Such experiments can be used to identify cis-regulatory regions sufficient or required for cell specific gene expression 11. Potential experiments are limited only by construct availability.

In vivo Electroporation of Developing Mouse Retina

A method for the incorporation of plasmid DNA into murine retinal cells for the purpose of performing either gain- or loss of function studies in vivo is presented. This method capitalizes on the transient increase in permeability of cell plasma membranes induced by the application of an external electrical field.

Gelişmekte olan Fare Retina in vivo Elektroporasyon olarak

The functional characterization of genes expressed during mammalian retinal development remains a significant challenge.  Gene targeting to generate ...

Transretinal ERG Recordings from Mouse Retina: Rod and Cone Photoresponses

There are two distinct classes of image-forming photoreceptors in the vertebrate retina: rods and cones. Rods are able to detect single photons of light whereas cones operate continuously under rapidly changing bright light conditions. Absorption of light by rod- and cone-specific visual pigments in the outer segments of photoreceptors triggers a phototransduction cascade that eventually leads to closure of cyclic nucleotide-gated channels on the plasma membrane and cell hyperpolarization. This light-induced change in membrane current and potential can be registered as a photoresponse, by either classical suction electrode recording technique1,2 or by transretinal electroretinogram recordings (ERG) from isolated retinas with pharmacologically blocked postsynaptic response components3-5. The latter method allows drug-accessible long-lasting recordings from mouse photoreceptors and is particularly useful for obtaining stable photoresponses from the scarce and fragile mouse cones. In the case of cones, such experiments can be performed both in dark-adapted conditions and following intense illumination that bleaches essentially all visual pigment, to monitor the process of cone photosensitivity recovery during dark adaptation6,7. In this video, we will show how to perform rod- and M/L-cone-driven transretinal recordings from dark-adapted mouse retina. Rod recordings will be carried out using retina of wild type (C57Bl/6) mice. For simplicity, cone recordings will be obtained from genetically modified rod transducin &alpha;-subunit knockout (T&alpha;-/-) mice which lack rod signaling8.

We describe a relatively simple method of transretinal electroretinogram (ERG) recordings for obtaining rod and cone photoresponses from intact mouse retina. This approach takes advantage of the block of synaptic transmission from photoreceptors to isolate their light responses and record them using field electrodes placed across the isolated flat-mounted retina.

Fare Retina gelen Transretinal ERG Kayıtlar: Rod ve Koni Photoresponses

There are two distinct classes of image-forming photoreceptors in the vertebrate retina: rods and cones. Rods are able to detect single photons of light ...

Whole Mount Immunofluorescent Staining of the Neonatal Mouse Retina to Investigate Angiogenesis In vivo

Angiogenesis is the complex process of new blood vessel formation defined by the sprouting of new blood vessels from a pre-existing vessel network. Angiogenesis plays a key role not only in normal development of organs and tissues, but also in many diseases in which blood vessel formation is dysregulated, such as cancer, blindness and ischemic diseases. In adult life, blood vessels are generally quiescent so angiogenesis is an important target for novel drug development to try and regulate new vessel formation specifically in disease. In order to better understand angiogenesis and to develop appropriate strategies to regulate it, models are required that accurately reflect the different biological steps that are involved. The mouse neonatal retina provides an excellent model of angiogenesis because arteries, veins and capillaries develop to form a vascular plexus during the first week after birth. This model also has the advantage of having a two-dimensional (2D) structure making analysis straightforward compared with the complex 3D anatomy of other vascular networks. By analyzing the retinal vascular plexus at different times after birth, it is possible to observe the various stages of angiogenesis under the microscope. This article demonstrates a straightforward procedure for analyzing the vasculature of a mouse retina using fluorescent staining with isolectin and vascular specific antibodies.

Whole Mount Immunofluorescent Staining of the Neonatal Mouse Retina to Investigate Angiogenesis In vivo

The neonatal murine retina provides a well characterized physiological model of angiogenesis, which permits investigations of the roles of different genes or drugs that modulate angiogenesis in an in vivo context. Immunofluorescent staining to accurately visualize the vascular plexus is pivotal to the success of these types of studies.

Anjiyogenez Araştırma Yenidoğan Fare Retina Tüm Dağı Immunofluorescent Boyama<em&gt; In vivo</em

Angiogenesis  is the complex process of new blood vessel formation defined by the sprouting  of new blood vessels from a pre-existing vessel network. ...

Assessment of Vascular Regeneration in the CNS Using the Mouse Retina

The rodent retina is perhaps the most accessible mammalian system in which to investigate neurovascular interplay within the central nervous system (CNS). It is increasingly being recognized that several neurodegenerative diseases such as Alzheimer&#8217;s, multiple sclerosis, and amyotrophic lateral sclerosis present elements of vascular compromise. In addition, the most prominent causes of blindness in pediatric and working age populations (retinopathy of prematurity and diabetic retinopathy, respectively) are characterized by vascular degeneration and failure of physiological vascular regrowth. The aim of this technical paper is to provide a detailed protocol to study CNS vascular regeneration in the retina. The method can be employed to elucidate molecular mechanisms that lead to failure of vascular growth after ischemic injury. In addition, potential therapeutic modalities to accelerate and restore healthy vascular plexuses can be explored. Findings obtained using the described approach may provide therapeutic avenues for ischemic retinopathies such as that of diabetes or prematurity and possibly benefit other vascular disorders of the CNS.

The rodent retina has long been recognized as an accessible window to the brain. In this technical paper we provide a protocol that employs the mouse model of oxygen-induced retinopathy to study the mechanisms that lead to failure of vascular regeneration within the central nervous system after ischemic injury. The described system can also be harnessed to explore strategies to promote regrowth of functional blood vessels within the retina and CNS.

Fare Retina kullanma CNS&#39;deki Vasküler Rejenerasyon Değerlendirilmesi

The rodent retina is perhaps the most accessible mammalian system in which to investigate neurovascular interplay within the central nervous system (CNS). ...

Imaging Ca2+ Dynamics in Cone Photoreceptor Axon Terminals of the Mouse Retina

Retinal cone photoreceptors (cones) serve daylight vision and are the basis of color discrimination. They are subject to degeneration, often leading to blindness in many retinal diseases. Calcium (Ca2+), a key second messenger in photoreceptor signaling and metabolism, has been proposed to be indirectly linked with photoreceptor degeneration in various animal models. Systematically studying these aspects of cone physiology and pathophysiology has been hampered by the difficulties of electrically recording from these small cells, in particular in the mouse where the retina is dominated by rod photoreceptors. To circumvent this issue, we established a two-photon Ca2+ imaging protocol using a transgenic mouse line that expresses the genetically encoded Ca2+ biosensor TN-XL exclusively in cones and can be crossbred with mouse models for photoreceptor degeneration. The protocol described here involves preparing vertical sections (&#8220;slices&#8221;) of retinas from mice and optical imaging of light stimulus-evoked changes in cone Ca2+ level. The protocol also allows &#8220;in-slice measurement&#8221; of absolute Ca2+ concentrations; as the recordings can be followed by calibration. This protocol enables studies into functional cone properties and is expected to contribute to the understanding of cone Ca2+ signaling as well as the potential involvement of Ca2+ in photoreceptor death and retinal degeneration.

Imaging Ca2+ Dynamics in Cone Photoreceptor Axon Terminals of the Mouse Retina

We describe a protocol to monitor Ca2+ dynamics in the axon terminals of cone photoreceptors using an ex-vivo&#160;slice preparation of the mouse retina. This protocol allows comprehensive studies of cone Ca2+ signaling in an important mammalian model system, the mouse.

Görüntüleme Ca<sup&gt; 2+</supFare Retina Koni fotoreseptör Akson Terminalleri içinde&gt; Dinamikleri

Retinal cone photoreceptors (cones) serve daylight vision and are the basis of color discrimination. They are subject to degeneration, often leading to ...

Preparation of Horizontal Slices of Adult Mouse Retina for Electrophysiological Studies

Vertical slice preparations are well established to study circuitry and signal transmission in the adult mammalian retina. The plane of sectioning in these preparations is perpendicular to the retinal surface, making it ideal for the study of radially oriented neurons like photoreceptors and bipolar cells. However, the large dendritic arbors of horizontal cells, wide-field amacrine cells, and ganglion cells are mostly truncated, leaving markedly reduced synaptic activity in these cells. Whereas ganglion cells and displaced amacrine cells can be studied in a whole-mounted preparation of the retina, horizontal cells and amacrine cells located in the inner nuclear layer are only poorly accessible for electrodes in whole retina tissue.
To achieve maximum accessibility and synaptic integrity, we developed a horizontal slice preparation of the mouse retina, and studied signal transmission at the synapse between photoreceptors and horizontal cells. Horizontal sectioning allows&#160;(1) easy and unambiguous visual identification of horizontal cell bodies for electrode targeting, and (2) preservation of the extended horizontal cell dendritic fields, as a prerequisite for intact and functional cone synaptic input to horizontal cell dendrites.
Horizontal cells from horizontal slices exhibited tonic synaptic activity in the dark, and they responded to brief flashes of light with a reduction of inward current and diminished synaptic activity. Immunocytochemical evidence indicates that almost all cones within the dendritic field of a horizontal cell establish synapses with its peripheral dendrites. The horizontal slice preparation is therefore well suited to study the physiological properties of horizontally extended retinal neurons as well as sensory signal transmission and integration across selected synapses.

We developed a horizontal slice preparation of the adult mammalian retina with the plane of sectioning parallel to the retinal surface. Dendritic fields of nonradially oriented retinal neurons were not truncated, allowing the study of signal processing with patch-clamp and imaging techniques.

Elektrofizyolojik Çalışmalar Yetişkin Fare Retina Yatay Dilimleri hazırlanması

Vertical slice preparations are well established to study circuitry and signal transmission in the adult mammalian retina. The plane of sectioning in ...

Long-Term, Serum-Free Cultivation of Organotypic Mouse Retina Explants with Intact Retinal Pigment Epithelium

In ophthalmic research, there is a strong need for in vitro models of the neuroretina. Here, we present a detailed protocol for organotypic culturing of the mouse neuroretina&#160;with intact retinal pigment epithelium (RPE). Depending on the research question, retinas can be isolated from wild-type animals or from disease models, to study, for instance, diabetic retinopathy or hereditary retinal degeneration. Eyes from early postnatal day 2&#8211;9 animals are enucleated under aseptic conditions. They are partially digested in proteinase K to allow for a detachment of the choroid from the RPE. Under the stereoscope, a small incision is made in the cornea creating two edges from where the choroid and sclera can be gently peeled off from the RPE and neuroretina. The lens is then removed, and the eyecup is cut in four points to give it a four-wedged shape resembling a clover leaf. The tissue is finally transferred in a hanging drop into a cell culture insert holding a polycarbonate culturing membrane. The cultures are then maintained in R16 medium, without serum or antibiotics, under entirely defined conditions, with a medium change every second day.
The procedure described enables the isolation of the retina and the preservation of its normal physiological and histotypic context for culturing periods of at least 2 weeks. These features make organotypic retinal explant cultures an excellent model with high predictive value, for studies into retinal development, disease mechanisms, and electrophysiology, while also enabling pharmacological screening.

The protocol describes organotypic explants of mouse neuroretina, cultivated together with its retinal pigment epithelium (RPE), in R16 defined medium, free of serum and antibiotics. This method is relatively simple to perform, less expensive, and time-consuming when compared to in vivo experiments, and can be adapted to numerous experimental applications.

Sağlam Retina Pigment Epitel ile Organotipik Fare Retina Eksplantlarının Uzun Süreli, Serumsuz Ekimi

In ophthalmic research, there is a strong need for in vitro models of the neuroretina. Here, we present a detailed protocol for organotypic culturing of ...