JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

وضع العلامات النظائر مستقرة الببتيدات بواسطة dimethylation الاختزالية (وضع العلامات ريدي) هي استراتيجية غير مكلفة السريع لدقيقة الشامل القائم على البروتينات الطيف الكمي. نحن هنا لشرح طريقة قوية لإعداد وتحليل مخاليط البروتين باستخدام نهج ريدي التي يمكن تطبيقها على ما يقرب من أي نوع العينة.

Abstract

وضع العلامات النظائر مستقرة الببتيدات بواسطة dimethylation الاختزالية (وضع العلامات ريدي) هو وسيلة لقياس بدقة الفروق بين البروتين التعبير العينات باستخدام مطياف الكتلة. يتم تنفيذ وسم ريدي باستخدام إما العادية (الضوء) أو بالديوتيريوم (الثقيلة) أشكال الفورمالديهايد والصوديوم cyanoborohydride إضافة إلى اثنين من مجموعات الميثيل إلى كل أمين الحرة. نحن هنا يبرهن على وجود بروتوكول قوية لوضع العلامات وريدي مقارنة كمية من خليط من البروتين المعقدة. يتم هضمها عينات البروتين للمقارنة في الببتيدات، وصفت لتنفيذ إما خفيفة أو ثقيلة الميثيل به، مختلطة، وشارك في تحليل من قبل LC-MS/MS. وكميا وفرة البروتين النسبية بمقارنة المناطق الذروة ايون اللوني من الإصدارات الثقيلة والخفيفة وصفت من الببتيد المكونة المستخرجة من كامل أطياف MS. الطريقة الموضحة هنا يشمل إعداد عينة من عكس المرحلة استخراج المرحلة الصلبة، ووضع العلامات ريدي على عمود من الببتيدات، الببتيد تجزئة من قبل القس درجة الحموضة الأساسيةersed المرحلة (BPRP) اللوني، وStageTip تنقية الببتيد. نحن نناقش مزايا وقيود وضع العلامات ريدي فيما يتعلق بأساليب أخرى لإدماج النظائر مستقرة. نسلط الضوء تطبيقات جديدة باستخدام الوسم ريدي كوسيلة سريعة وغير مكلفة، ودقيقة للمقارنة بين تركيزات البروتين في أي نوع تقريبا من العينة.

Introduction

قياس الاختلافات تركيز العديد من البروتينات المعقدة بين العينات هو التحدي الرئيسي في البروتينات. على نحو متزايد، ويجري ذلك عن طريق وضع العلامات البروتينات في كل عينة مع العلامات النظائر المختلفة، والجمع بين العينات، واستخدام مطياف الكتلة لقياس الاختلافات التركيز. توجد عدة طرق لوضع العلامات النظائر مستقرة من البروتينات والببتيدات 15 N وضع العلامات 1 و 2 SILAC إدخال تسميات النظائر عملية الأيض في الجسم الحي، في حين ICAT 3، 4 iTRAQ، والحد من dimethylation 5 إضافة علامات النظائر مستقرة بعد استخراج البروتين والهضم. بين هذه الأساليب، dimethylation الاختزالية (وضع العلامات ريدي) تكتسب شعبية باعتبارها، طريقة استنساخه غير مكلفة لتحديد الاختلافات تركيز البروتين في أي نوع تقريبا من العينة.

ويشمل وضع العلامات ريدي الببتيدات التفاعل مع الفورمالديهايد لتشكيل قاعدة شيف، الذي يتم تخفيض ثمبواسطة cyanoborohydride. رد الفعل هذا dimethylates المجموعات الأمينية الحرة على N-تيرميني والجانب يسين سلاسل وmonomethylates prolines N-محطة. بروتوكول الموصوفة هنا methylates الببتيدات في نموذج 1 مع "النور" التسمية باستخدام الكواشف مع ذرات الهيدروجين في توزيع النظائر الطبيعية وعينة 2 مع تسمية "الثقيل" باستخدام الفورمالدهيد بالديوتيريوم وcyanoborohydride (الشكل 1). كل مجموعة أمينية dimethylated على نتائج الببتيد في الفرق الجماعية لل6.0377 دا بين الضوء والأشكال الثقيلة، والذي يعمل على التمييز بين الشكلين باستخدام مطياف الكتلة. على وجه التحديد، وكميا فرة الببتيد النسبية كنسبة من MS1 استخراج المناطق اللوني ايون (MS1 نسبة المساحة الذروة) من الضوء والنسخة الثقيلة لكل زوج الببتيد أيون. يتم احتساب الوفرة النسبية للبروتين مثل نسبة المساحة الذروة MS1 متوسط ​​بين جميع الببتيدات في البروتين. في هذا التقرير، وصفنا بروتوكول قوية للسلوكجي ريدي التجارب وضع العلامات من قبل LC-MS/MS يتضمن عكس المرحلة الببتيد المرحلة الصلبة استخراج، ووضع العلامات ريدي على العمود، الببتيد تجزئة بواسطة الرقم الهيدروجيني الأساسية المرحلة (BPRP) اللوني عكسه، وتنقية مخاليط الببتيد باستخدام StageTips (الشكل 2) . نحن نناقش مزايا والقيود المفروضة على استخدام الوسم ريدي لالبروتيوميات الكمي.

Protocol

ملاحظة: هذه الطريقة تم وصفها سابقا 12.

1. عزل بروتين

إعداد 1 ملغ من البروتين الخلوية من قبل خلايا lysing، ويفضل عن طريق الطرق الفيزيائية مثل الصحافة الفرنسية، وحبة الضرب، أو صوتنة. تجنب بوساطة الليزوزيم الخلية تحلل لأن الانزيم سوف نخلط قياسات مطياف الكتلة.

2. الهطول TCA من البروتينات

إضافة 1 حجم حمض الخليك ثلاثي الكلور (TCA) لبروتين 4 مجلدات والبرد على الجليد لمدة 10 دقيقة لترسيب البروتينات. أجهزة الطرد المركزي في 12،000 x ج لمدة 5 دقائق في 4 درجات مئوية وإزالة طاف. resuspend الكرية في 1 مل من الجليد الباردة الأسيتون وأجهزة الطرد المركزي في 12،000 x ج لمدة 5 دقائق في 4 درجات مئوية. إزالة طاف وعكس أنبوب على مقاعد البدلاء لتجفيف بيليه لمدة 15 دقيقة. الكريات متجر البروتين في -80 درجة مئوية.

3. بروتينات والحد من السندات ثاني كبريتيد

إعادةتعليق البروتينات إلى ~ 2 ملغ / مل في 500 ميكرولتر العازلة وتمسخ التخفيض (إما 4 أو M اليوريا 3٪ SDS في 50 ملي HEPES الرقم الهيدروجيني 8.5، 5 ملي DTT). اختياريا، وتشمل مثبطات الأنزيم البروتيني في المخزن المؤقت. احتضان البروتينات لمدة 30 دقيقة عند 56 درجة مئوية، تليها 10 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.

4. Aklylate الحرة المجموعات سلفهيدريل لتعطيل لا رجعة فيه ثاني كبريتيد تشكيل بوند

إعداد الطازجة 0.3 M iodoacetamide في الماء. تنبيه! Iodoacetamide عالية السمية. إضافة 25 ميكرولتر 0.3 M iodoacetamide (15 ملي تركيز النهائي) إلى 500 ميكرولتر البروتين واحتضان لمدة 20 دقيقة في الظلام في درجة حرارة الغرفة. إخماد iodoacetamide بإضافة 10 ميكرولتر من 300 ملي DTT (5 ملي تركيز النهائي DTT). تخزين البروتينات الألكيلية في -80 درجة مئوية.

5. الهضم من البروتين

TCA يعجل البروتينات (كما هو موضح في الخطوة 2) و resuspend في 1 مل من 50 ملي HEPES (الرقم الهيدروجيني 8.2)، 1 M اليوريا. إعداد محلول المخزون من الليزيل endoproteinبورصة عمان (ليز-C) في الماء بتركيز 2 ميكروغرام / ميكرولتر وإضافة 5 ميكرولتر إلى حل البروتين. احتضان الخليط لمدة 16 ساعة في درجة حرارة الغرفة. ضمان تركيز النهائي ليز-C هو 10 نانوغرام / ميكرولتر ونسبة البروتين إلى LysC (ث / ث) هو 1/50 و 1/200. في resuspend 20 ميكروغرام التسلسل الصف التربسين في 40 ميكرولتر من 50 ملي حمض الخليك، إضافة 5 ميكرولتر (10 ميكروغرام التربسين) إلى ليز-C هضم، واحتضان لمدة 6 ساعة عند 37 درجة مئوية. استخدام نفس تركيز الأنزيم البروتيني والبروتيني نسب إلى البروتين لليز-C كما تستخدم لالتربسين.

6. عكس المرحلة الببتيد استخراج

  1. يحمض الببتيدات بإضافة حمض trifluoroacetic (TFA) إلى تركيز النهائي من 0.5٪ (الرقم الهيدروجيني ≈ 2). إرفاق العمود C18 إلى مشعب الاستخراج. استخدام أعلى معدل تدفق ممكن لجميع الخطوات ما عدا التحميل وشطف من الببتيدات.
  2. العمود الرطب مع 6 مل أسيتونتريل (ACN). غسل العمود مع 6 مل 80٪ ACN، TFA 0.1٪، ثم تتوازن مع 6 مل 0.1٪ TFA. لا تسمح للالعمود لتجف بين الخطوات.
  3. وقف الضغط فراغ وتحميل 500 ميكروغرام من الببتيدات على العمود بمعدل تدفق ما يقرب من 1 مل / دقيقة. مرة واحدة وقد الببتيدات منضم إلى عمود، إعادة تشغيل فراغ ويغسل مع 6 مل 0.1٪ TFA، ثم مع 3 مل من حمض الستريك العازلة (0.09 M حمض الستريك، 0.23 M نا 2 هبو 4، ودرجة الحموضة 5.5).
    ملاحظة: يمكن أن توصف كميات الببتيد العالي ولكن يجب أن يكون العمود C18 قدرة ملزمة على الأقل شقين أعلى من كمية الببتيد لتجنب فقدان العينة.

7. في عمود الببتيد وصفها من قبل انتقاصية Dimethylation (ريدي وصفها)

تنفيذ هذه الخطوة تحت غطاء الكيميائية كما يتم تحريرها سيانيد الهيدروجين في تركيز منخفض أثناء عملية وضع العلامات.

  1. إعداد 12 مل من "النور" و "الثقيل" مخازن ريدي لميثيلات الأمينات الحرة الببتيد. يتكون عازلة ريدي ضوء 0.8٪ الفورمالديهايد و0.12 M cyanoborohydride الصوديوم تحمل الهيدروجين في الEIR توزيع النظائر الطبيعية في المنطقة العازلة حامض الستريك. يتكون عازلة ريدي الثقيلة من 0.8٪ الفورمالديهايد بالديوتيريوم و0.12 M بالديوتيريوم cyanoborohydride الصوديوم العازلة في حامض الستريك.
  2. احتضان عمود يحتوي على الببتيدات بإضافة 10 مل إما خفيفة أو ثقيلة عازلة ريدي إلى الأعمدة التي تحتوي على الببتيد في معدل التدفق من 1 مل / دقيقة، وتكرار لضمان وضع العلامات كاملة. غسل العمود مع 6 مل 0.1٪ TFA ثم مع حمض الخليك 1 مل 0.5٪.
  3. وقف فراغ وأزل الببتيدات وصفت الأولى مع 1 مل 40٪ ACN، حمض الخليك 0.5٪، ثم مع 1 مل 80٪ ACN، حمض الخليك 0.5٪ باستخدام معدل تدفق ما يقرب من 0.5 مل / دقيقة. إذا رغبت في ذلك، وقياس كفاءة التوسيم العينات الفردية عن طريق قياس الطيف الكتلي قبل خلط العينات الثقيلة والخفيفة (انظر "نتائج الممثل"). مزيج 1:01 عينات الببتيد الثقيلة والخفيفة التي تحمل علامات ليكون كميا بواسطة مطياف الكتلة.

8. خليط الببتيد منفصلة بواسطة الحموضة بسيطة عكس المرحلة (BPRP) اللوني

الرقم الهيدروجيني الأساسية عكس المرحلة (BPRP) اللوني للفصل بين خليط الببتيد إلى كسور متعددة، التي يتم تحليلها بشكل مستقل من قبل LC-MS/MS لزيادة التغطية بروتيوم.

  1. يجزئ الخليط الببتيد على عمود C18-HPLC عن طريق تطبيق التدرج في زيادة تركيز ACN في 10 ملي بيكربونات الأمونيوم (الرقم الهيدروجيني 8). تبدأ مع 5٪ (ت / ت) ACN لمدة 5 دقائق، وزيادة إلى 35٪ في ACN 60 دقيقة، ثم إلى 90٪ في ACN 1 دقيقة. الإبقاء على ACN 90٪ ​​لمدة 4 دقائق قبل تخفيض ACN إلى 5٪ لإعادة توازن-العمود لمدة 9 دقائق. جمع 96 أجزاء من حجم مساو في لوحة 96 جيدا (A1 إلى H12). رصد تجزئة باستخدام كاشف الأشعة فوق البنفسجية في 220 نانومتر بينما الببتيدات ويبلغ حجمه قبالة العمود (10-70 دقيقة لظروف وصفها هنا).
  2. الجمع بين الكسور من الآبار A1، C1، E1، وG1 (جزء A1)، من الآبار B1، D1، F1، وH1 (جزء B1)، من الآبار A2، C2، E2، وG2 (جزء A2) وفقا لذلك ل المتبقية الكسور. إزالة solvenر باستخدام جهاز للطرد المركزي فراغ. الببتيدات في resuspend من الكسور A1، B2، A3، B4، A5، B6، A7، B8، A9، B10، A11، و B12 في 130 ميكرولتر من 1٪ M urea/0.5 TFA وتنقية باستخدام StageTips كما هو موضح في الخطوة 9. مخزن الكسور B1، A2، B3، A4، B5، A6، B7، A8، B9، A10، B11، وA12 في -20 درجة مئوية.

9. تنقية الببتيدات التي كتبها stop الذهاب واستخراج (StageTips)

إعداد C18-7 StageTip microcolumns بواسطة التعبئة 200 ميكرولتر ماصة نصائح مع اثنين من C18 الأقراص مع القطر الداخلي (ID) من 1.07 مم. وضع المرحلة نصائح في أنابيب إيبندورف. استخدام ميكروسنتريفوج نصائح لغسل مع 130 ميكرولتر من الميثانول، ثم 130 UL 80٪ ACN، حمض الخليك 0.5٪. تتوازن مع 130 ميكرولتر StageTips TFA 0.1٪. نقل خليط الببتيد لStageTips ويغسل مع 130 ميكرولتر 0.1٪ TFA، ثم 40 ميكرولتر 0.1٪ TFA، ثم 40 ميكرولتر 0.5٪ حامض الخليك. أزل الببتيدات الأولى مع 20 ميكرولتر 40٪ ACN، حمض الخليك 0.5٪، ثم 20 ميكرولتر 80٪ ACN، حمض الخليك 0.5٪. الجمع بين eluates لالثاني الجافة عن طريق الترشيح فراغ.

10. LC-MS/MS Microcapillary

  1. حل الببتيدات في 1-5 ميكرولتر حمض الفورميك 5٪، 5٪ ACN إلى تركيز من حوالي 1 ميكروغرام / ميكرولتر. حل ~ 1 ميكروغرام الببتيدات على 100 ميكرون × 20 سم العمود تطبيق المرحلة HPLC مع التدرج من 6-22٪ في ACN حمض الفورميك 0.125٪ عكس C18-أكثر من 75 أو 100 دقيقة بمعدل تدفق 300 ~ NL / دقيقة.
  2. تحديد الببتيدات باستخدام LTQ Orbitrap VELOS 12 أو ما شابه ذلك السائل منصة الطيف اللوني الشامل مع مطياف الكتلة توفير درجة عالية من الدقة ودقة عالية الشامل. تعمل مطياف الكتلة في وضع تعتمد على البيانات مع كامل MS الفحص (قرار من 60،000) المكتسبة في محلل Orbitrap. توليد فخ ايون الخطي MS / MS الأطياف ل20 الأيونات الأكثر وفرة في الكشف عن MS الطيف الكامل. تعيين التلقائي السيطرة (AGC) الأهداف إلى 1 × 10 6 لMS كاملة و 2،000 لMS / MS. تعيين الحد الأقصى مرات تراكم أيون إلى 1،000 مللي ثانيةلMS و 150 ميللي ثانية للMS / MS. استبعاد مجزأة أيونات الببتيد السلائف من مزيد من التحديد من MS / MS ل20-60 ثانية.

11. MS / MS الحصول على البيانات

تحديد الببتيدات من خلال مقارنة MS / MS الأطياف ملفات RAW إلى قاعدة بيانات النظري مع خوارزمية مثل SEQUEST 8 باستخدام هذه المعايير (الجدول 1).

الجدول 1. الببتيد قاعدة بيانات البحث معلمات.

معلمات العامة الهضم زيتية تماما مع ما يصل الى 2 غاب الانشقاقات
25 جزء في المليون أيون السلائف التسامح
1.0 دا جزء أيون التسامح
تعديلات ثابت +57.02146 دا على السيستين، carboxyamidomethylation
+28.03130 دا على يسين والببتيد N-محطة، والتسمية dimethylation ضوء
تعديلات ديناميكية +15.99491 دا على ميثيونين، والأكسدة
+6.03766 دا على يسين والببتيد N-محطة، والتسمية dimethylation الثقيلة
  1. مرشح الببتيدات إلى 1٪ في معدل اكتشاف كاذبة مع أسلوب مثل 9 استراتيجية الهدف شرك باستخدام قاعدة بيانات للإطارات القراءة المفتوحة في التوجهات الفعلية وعكسه.

12. الببتيد الكمي

حساب مجالات أزواج الثقيلة والخفيفة من MS1 استخراج أيون الاستشرابية (مناطق ذروة MS1) والببتيد إشارة إلى الضوضاء (S / N) النسب 10. وتشمل أزواج الببتيد فقط عندما متوسطها إشارة إلى أمة الإسلامنسبة حد ذاته هو فوق الخامسة. قياس الوفرة النسبية من الببتيد في اثنين من العينات ونسبة MS1 مناطق ذروة الإصدارات الثقيلة والخفيفة من نفس الببتيد (MS1 نسبة المساحة الذروة). حساب تركيزات البروتين النسبية بأنه نسبة منطقة ذروة MS1 وسيطة لجميع الببتيدات في البروتين.

النتائج

قمنا بتقييم دقة، والدقة، واستنساخ لوضع العلامات ريدي باستخدام خميرة الخباز وكلوستريديوم phytofermentans لست] خلية كاملة. نحن كميا لأول مرة ريدي كفاءة وسم مزيج من C. phytofermentans لست] البروتين من السليلوز (المسمى الثقيلة، H) والجلوكوز (التسمية ضوء، L) الثقافات. عندما تمت ت...

Discussion

عدة نقاط تجعل وضع العلامات النظائر مستقرة الببتيدات باستخدام dimethylation الاختزالية (وضع العلامات ريدي) وسيلة جذابة للالبروتيوميات الكمية: الكواشف غير مكلفة وضع العلامات (تكلف الكواشف أقل من 1 دولار لكل عينة)، ومعدل رد فعل سريع (~ 10 دقيقة)، وغياب المنتجات الجانبية، وارتفا...

Disclosures

الكتاب تعلن أي المصالح المالية المتنافسة أو الصراعات الأخرى ذات الاهتمام.

Acknowledgements

We thank SP Gygi and GM Church for help and guidance. This work was supported by a CNRS chaire d'excellence to ACT.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Trichloroacetic acidSigma-AldrichT9159protein precipitation
AcetoneSigma-Aldrich650501protein precipitation
Sodium dodecyl sulfateSigma-Aldrich71736denature, reduce protein
Sodium hydroxideSigma-AldrichS8045denature, reduce protein
DL-DithiothreitolSigma-Aldrich43816denature, reduce, alkylate protein
Protease Inhibitor Complete Mini CocktailRoche4693124001denature, reduce protein
IodoacetamideSigma-AldrichI6125alkylate protein
HEPESSigma-AldrichH7523resuspend, extract, label protein
Calcium chlorideSigma-AldrichC5670resuspend protein
Lysyl EndoproteaseWako Chemicals129-02541protein digestion
Sequencing grade trypsinPromegaV5111protein digestion
Acetic acidSigma-Aldrich320099protein digestion
Trifluoroacetic acidSigma-Aldrich299537Reversed-phase peptide extraction
tC18 Sep-Pak C18 cartridgesWatersWAT054960Reversed-phase peptide extraction
Extraction manifoldWatersWAT200609Reversed-phase peptide extraction
AcetonitrileSigma-Aldrich14261various
FormaldehydeSigma-Aldrich252549“light” peptide labeling
CyanoborohydrideSigma-Aldrich71435“light” peptide labeling
Deuterated formaldehydeSigma-Aldrich492620“heavy” peptide labeling
Sodium cyanoborodeuterideCDN isotopesD-1797“heavy” peptide labeling
MESSigma-AldrichM3671peptide labeling
C18-HPLC column (4.6 x 250 mm, 5 µm particle size)Agilent770450-902basic pH reversed-phase chromatography
Formic acidSigma-Aldrich399388various
C18 Empore Disks3M14-386-3 STAGE tips
MethanolSigma-Aldrich494437STAGE tips

References

  1. Washburn, M. P., Ulaszek, R., Deciu, C., Schieltz, D. M., Yates III, J. R. Analysis of quantitative proteomic data generated via multidimensional protein identification technology. Analytical chemistry. 74 (7), 1650-1657 (2002).
  2. Ong, S. -. E., Blagoev, B., et al. Stable isotope labeling by amino acids in cell culture, SILAC, as a simple and accurate approach to expression proteomics. Molecular & cellular proteomics: MCP. 1 (5), 376-386 (2002).
  3. Gygi, S. P., Rist, B., Gerber, S. A., Turecek, F., Gelb, M. H., Aebersold, R. Quantitative analysis of complex protein mixtures using isotope-coded affinity tags. Nature biotechnology. 17 (10), 994-999 (1999).
  4. Ross, P. L., et al. Multiplexed protein quantitation in Saccharomyces cerevisiae using amine-reactive isobaric tagging reagents. Molecular & cellular proteomics: MCP. 3 (12), 1154-1169 (2004).
  5. Hsu, J. -. L., Huang, S. -. Y., Chow, N. -. H., Chen, S. -. H. Stable-isotope dimethyl labeling for quantitative proteomics. Analytical Chemistry. 75 (24), 6843-6852 (2003).
  6. Chick, J. M., Haynes, P. A., Molloy, M. P., Bjellqvist, B., Baker, M. S., Len, A. C. L. Characterization of the rat liver membrane proteome using peptide immobilized pH gradient isoelectric focusing. Journal of Proteome Research. 7 (3), 1036-1045 (2008).
  7. Rappsilber, J., Ishihama, Y., Mann, M. Stop and go extraction tips for matrix-assisted laser desorption/ionization, nanoelectrospray, and LC/MS sample pretreatment in proteomics. Analytical chemistry. 75 (3), 663-670 (2003).
  8. Eng, J. K., McCormack, A. L., Yates III, J. R. An approach to correlate tandem mass spectral data of peptides with amino acid sequences in a protein database. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 5 (11), 976-989 (1994).
  9. Elias, J. E., Gygi, S. P. Target-decoy search strategy for increased confidence in large-scale protein identifications by mass spectrometry. Nature methods. 4 (3), 207-214 (2007).
  10. Bakalarski, C. E., et al. The impact of peptide abundance and dynamic range on stable-isotope-based quantitative proteomic analyses. Journal of Proteome Research. 7 (11), 4756-4765 (2008).
  11. Wilson-Grady, J. T., Haas, W., Gygi, S. P. Quantitative comparison of the fasted and re-fed mouse liver phosphoproteomes using lower pH reductive dimethylation. Methods (San Diego, Calif.). , (2013).
  12. Tolonen, A. C., Haas, W., Chilaka, A. C., Aach, J., Gygi, S. P., Church, G. M. Proteome-wide systems analysis of a cellulosic biofuel-producing microbe. Molecular Systems Biology. 7, 461 (2011).
  13. Tolonen, A. C., Chilaka, A. C., Church, G. M. Targeted gene inactivation in Clostridium phytofermentans shows that cellulose degradation requires the family 9 hydrolase Cphy3367. Molecular Microbiology. 74 (6), 1300-1313 (2009).
  14. Munoz, J., et al. The quantitative proteomes of human-induced pluripotent stem cells and embryonic stem cells. Molecular systems biology. 7, 550 (2011).
  15. Kovanich, D., Cappadona, S., Raijmakers, R., Mohammed, S., Scholten, A., Heck, A. J. R. Applications of stable isotope dimethyl labeling in quantitative proteomics. Analytical and bioanalytical chemistry. 404 (4), 991-1009 (2012).
  16. McAlister, G. C., et al. Increasing the multiplexing capacity of TMTs using reporter ion isotopologues with isobaric masses. Analytical chemistry. 84 (17), 7469-7478 (2012).
  17. Boersema, P. J., Aye, T. T., Van Veen, T. A. B., Heck, A. J. R., Mohammed, S. Triplex protein quantification based on stable isotope labeling by peptide dimethylation applied to cell and tissue lysates. Proteomics. 8 (22), 4624-4632 (2008).
  18. Wu, Y., et al. Five-plex isotope dimethyl labeling for quantitative proteomics. Chemical communications (Cambridge, England). , (2014).
  19. Boersema, P. J., Raijmakers, R., Lemeer, S., Mohammed, S., Heck, A. J. R. Multiplex peptide stable isotope dimethyl labeling for quantitative proteomics. Nature Protocols. 4 (4), 484-494 (2009).
  20. She, Y. -. M., Rosu-Myles, M., Walrond, L., Cyr, T. D. Quantification of protein isoforms in mesenchymal stem cells by reductive dimethylation of lysines in intact proteins. Proteomics. 12 (3), 369-379 (2012).
  21. Chen, S. -. H., Chen, C. -. R., Chen, S. -. H., Li, D. -. T., Hsu, J. -. L. Improved N(α)-acetylated Peptide Enrichment Following Dimethyl Labeling and SCX. Journal of proteome research. 12 (7), 3277-3287 (2013).
  22. Sun, Z., et al. Capture and Dimethyl Labeling of Glycopeptides on Hydrazide Beads for Quantitative Glycoproteomics Analysis. Analytical Chemistry. 84 (20), 8452-8456 (2012).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

89 dimethylation LC MS MS

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved