قياس صلابة من<em&gt; فيفو السابقين</em&gt; ماوس Aortas باستخدام مجهر القوة الذرية

Summary

We present detailed protocols for isolation of aortas from mouse and measurement of their elastic modulus using atomic force microscopy.

Abstract

تشنج الشرايين هو عامل خطر كبير والعلامات البيولوجية لمرض القلب والأوعية الدموية والسمة المميزة للشيخوخة. مجهر القوة الذرية (AFM) هو أداة تحليلية متعددة لوصف الخواص الميكانيكية اللزجة لمجموعة متنوعة من المواد تتراوح ما بين الصلب (البلاستيك والزجاج والمعادن، الخ) السطوح إلى خلايا في أي الركيزة. وقد استخدم على نطاق واسع لقياس صلابة من الخلايا، ولكنها أقل استخداما لقياس صلابة من aortas. في هذه الورقة، فإننا سوف تصف إجراءات استخدام AFM في وضع الاتصال لقياس خارج الجسم الحي معامل مرونة الشرايين الماوس المفرغة. وصفنا إجراءاتنا لعزل aortas الماوس، ثم تقديم معلومات مفصلة لتحليل فؤاد. وهذا يشمل إرشادات خطوة بخطوة لمحاذاة شعاع الليزر، معايرة ثابت الربيع وحساسية انحراف لجنة التحقيق AFM، والحصول على منحنيات القوة. ونحن نقدم أيضا بروتوكول مفصلة لanaly البياناتجهاز الأمن والمخابرات من منحنيات القوة.

Introduction

The biomechanical properties of arteries are a critical determinant in cardiovascular disease (CVD) and aging. Arterial stiffness, a major cholesterol independent risk factor and an indicator for the progression of CVD, increases with vascular injury, atherosclerosis, age, and diabetes^1-8. Arterial wall stiffening is associated with increased dedifferentiation, migration, and proliferation of vascular smooth muscle cells^9-12. In addition, increased arterial stiffness has been linked to enhanced macrophage adhesion¹, endothelial permeability and leukocyte transmigration¹³, and vessel wall remodeling^14,15. Thus, therapies that could prevent arterial stiffening in CVD or aging might complement currently available pharmacological interventions that treat CVD by reducing high blood cholesterol.

AFM is a powerful analytical tool used for various physical and biological applications. AFM is increasingly used to obtain the high-resolution images and characterize the biomechanical properties of soft biological samples such as tissues and cells^1,2,10,16,17 with a great degree of accuracy at nanoscale levels. A major advantage of AFM is the fact that it can be used with living cells.

This paper describes our method for measuring the elastic modulus of mouse arteries ex vivo using AFM. The described method shows how we 1) properly isolate mouse arteries (descending aorta and aortic arch) and 2) measure the elastic modulus of these tissues by AFM. Measurements of unloaded elastic moduli in arteries can help to elucidate changes in the extracellular matrix (ECM) that occur in response to vascular injury, CVD, and aging.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

وقد وافق العمل حيوان في هذه الدراسة من قبل لجان رعاية واستخدام الحيوان المؤسسي من جامعة ولاية بنسلفانيا. نفذت الطرق وفقا للمبادئ التوجيهية المعتمدة.

1. إعداد الماوس وعزل الشريان الأورطي

1. تخدير ماوس مع الكيتامين (80-100 ملغ / كلغ)، زيلازين (8-10 ملغ / كلغ) وآسيبرومازين (1-2 ملغ / كلغ) البريتونى. تأكيد التخدير مع اختبار قرصة الذيل. مرة واحدة يتم تخدير الماوس بشكل كامل، الموت ببطء الماوس عن طريق خلع عنق الرحم.
2. ضع الماوس على ظهرها ويعلقون الماوس إلى لوحة تشريح. تنظيف منطقة البطن مع 70٪ (ت / ت) مناديل الايثانول.
3. قرصة الجلد في خط منتصف وجعل شق الأولي صغير مع مقص المجهرية متوسطة الحجم في البطن. في حين الضغط على الجلد بالملقط، استخدم مقص المجهرية متوسطة الحجم لقطع الجلد والغشاء البريتوني من البطن إلى القص.
4. قطع الأضلاع على بالجانبين أوراسكوم تليكوم القابضة مع مقص المجهرية متوسطة الحجم. إزالة بعناية الرئتين والكبد مع مقص المجهرية صغيرة الحجم، وترك القلب والشريان الأورطي. نقل الماوس ولوحة تشريح لمجهر تشريح.
5. فهم الدهون المحيطة الشريان الأورطي مع ملقط صغير واستخدام مقص صغير لقطع بعناية بعيدا الدهون حول الشريان الأورطي.
6. انتزاع بلطف الشريان الأورطي مع ملقط، وجعل واحد قطع مع مقص المجهرية صغيرة الحجم في بداية الأبهر الصاعد وخفض آخر في نهاية الشريان الأورطي النازل، وذلك فوق الشريان الأورطي البطني.
7. نقل الشريان الأورطي تشريح على طبق 60 ملم تحتوي على 1X الفوسفات مخزنة المالحة (PBS، وبدون الكالسيوم والمغنيسيوم).
8. مواصلة لتشريح بعيدا أي نوع من الأنسجة الدهنية المتبقية من الشريان الأورطي باستخدام مقص صغيرة مجهرية الحجم. استخدام مقص صغير لفتح الشريان الأورطي طوليا.
9. استخدام صغيرة مقص المجهرية الحجم لقطع قطعة صغيرة (~ 2 × 4 مم) من الشريان الأورطي النازل وaortiج القوس لتحليل AFM (الشكل 1). وضع الأنسجة في طبق من البلاستيك 60 ملم وإبقائها رطبة في قطرة من برنامج تلفزيوني.

الشكل 1: صورة توضح الموقع من قطاعات مختلفة الأبهري في ماوس تم عزل الشريان الأورطي من القلب إلى الحجاب الحاجز، وكانت تستخدم جزء صغير من الشريان الأورطي النازل وقوس الأبهر لتحديد الرجوعية المرنة. شريط الحجم، 1 مم. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

2. إعداد عينات الأنسجة لقياسات AFM

1. بعناية إزالة PBS باستخدام مختبر مسح دون لمس الشريان الأورطي. تكون على يقين من أن الجانب اللمعية من الأنسجة يكون مواجها لها.
2. الغراء بلطف نهاية كل من الشريان الأورطي فتح لوحة من قبل الإضافة جي 5-10 ميكرولتر من مادة لاصقة cyanoacrylate مع طرف جل التحميل (الشكل 2).
   ملاحظة: يجب أن تحدد كمية من الغراء اللازم لنعلق بحزم الأنسجة في نهاية كل تجريبيا. ومن الأهمية بمكان أن الشريان الأورطي لا امتدت خلال هذه العملية.
3. تحقق الشريان الأورطي لاصق للتأكد من أنه ليس مطوية أو العائمة. بعد تجفيف الهواء الغراء على الشريان الأبهر (30-60 ثانية)، إضافة بلطف برنامج تلفزيوني وغمر العينة.
   ملاحظة: إعداد وAFM (الخطوات 3-5) يمكن القيام بها أثناء إعداد الأنسجة لتحليلها.

الشكل 2: كارتون من شريحة الأبهر لصقها على ثقافة صحن 60 مم باستخدام Cyanoacrylate لاصق يتم تطبيقها لاصقة cyanoacrylate إلى حافة عينة الأورطي استعدادا لقياسات AFM.كوم / ملفات / ftp_upload / 54630 / 54630fig2large.jpg "الهدف =" _ فارغة "> الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

3. تحميل والتحقيق

1. جبل حامل التحقيق السوائل على موقف الحمل التحقيق.
2. باستخدام الملقط، مرر نيتريد السيليكون AFM التحقيق (0.06 N / م ناتئ) مع طرف كروية (لقد استخدمت قطر 1-ميكرون شافي ₂ الجسيمات ولكن يمكن استخدام أحجام أكبر أيضا) على حامل التحقيق. تأكد من أن لجنة التحقيق AFM بشدة أمنت لصاحب التحقيق.
3. حرك حامل التحقيق على Z-الماسح الضوئي جبل الرأس AFM، والتأكد من أن حامل المسبار بإحكام.

4. محاذاة الليزر على التحقيق

1. فتح البرنامج AFM. اختر نوع التجربة على البرنامج؛ تجربة الفئة في الاتصال واسطة، وتجربة المجموعة إلى الاتصال الوضع في السوائل وتجربة في الاتصال الوضع في السائل. انقر فوق تحميل إكسبeriment في البرنامج؛ سوف يتحول على الليزر.
2. إضافة 3 مل من الماء المقطر إلى 50 ملم طبق أسفل الزجاج ووضع الطبق على مرحلة وحدة محاذاة الليزر. هذه الوحدة يبسط عملية تركيز شعاع الليزر على الجزء الخلفي من ناتئ.
3. جبل رئيس فؤاد في وضع رأسي على وحدة محاذاة الليزر والطاقة على وحدة ليزر محاذاة. إضافة حوالي 50 ميكرولتر من الماء المقطر لتشكيل قطرات على الطرف فؤاد.
4. باستخدام عصا التحكم، وانخفاض رئيس AFM ذلك الطرف فؤاد يجعل الاتصال مع الماء في الطبق. إذا لم يتم الاتصال بين طرف فؤاد والماء في طبق، ورفع بلطف الطبق حتى يتم الاتصال. ضبط التركيز والسطوع وموقف XY ذلك الطرف فؤاد في عرض على شاشة LCD وحدة المحاذاة.
5. ضع بقعة الليزر على طرف لجنة التحقيق AFM عن طريق ضبط المقابض المواقع ليزر للرئيس فؤاد. استخدام المقابض للكشف عن المواقع على رأسه فؤاد، وضبط طرحويتم الحصول على أيون من الثنائي الضوئي حتى القيم بين 0 و -1 الخامس للانحراف الرأسي ويتم الحصول عليها ~ 0 V للانحراف الأفقي.
6. تحقق للتأكد من يتم تكبير إشارة مبلغ الليزر. إذا لزم الأمر، كرر الخطوة 4.5 لإعادة ضبط الموقف من شعاع الليزر على الطرف فؤاد وموقف الضوئي للحصول على أقصى قدر من إشارة المبلغ.
   ملاحظة: قد يكون من الضروري إعادة التحقيق AFM على حامل مسبار للحصول على أقصى إشارة مبلغ حتى لو تكرر الخطوة 4.5.

5. معايرة انحراف الحساسية والربيع ثابت من AFM التحقيق

1. جعل الصفر على طبق ثقافة 60 ملم مع forcep وملء الطبق مع الماء المقطر. مكان الطبق الثقافة على لوحة صاحب العينة. في هذه الحالة، تركيب الطبق على XY بمحركات مرحلة المسح الضوئي للمجهر مقلوب.
2. وضع حامل لوحة المغناطيسي على الجزء العلوي من لوحة لإبقائها آمنة أثناء التصوير.
3. انقر الأسهم 'حتى' في القائمة الإنتقال على برنامج لتحريك رأسه فؤاد تصل إلى ما يقرب من أعلى موقفها لضمان تحقيق AFM لن تلمس طبق.
   ملاحظة: هذه الخطوة مهمة جدا لأنها تتجنب كسر الطرف فؤاد.
4. وضع رئيس فؤاد على المسرح المجهر.
5. استخدام المجهر التركيز على نقطة الصفر على لوحة. استخدم عصا التحكم، أو انقر فوق السهم "داون" في القائمة ملاحة، لببطء وبعناية خفض التحقيق AFM في برنامج تلفزيوني. موقف رئيس أعلى قليلا من الصفر في اللوحة.
   ملاحظة: إذا كان الموقف المبدئي للرئيس فؤاد أقرب إلى العينة، وهي المرة الانخراط ستنخفض بشكل كبير.
6. قبل الدخول، وإعادة ضبط الموقف من شعاع الليزر على الطرف فؤاد وموقف الضوئي للحصول على أقصى قدر من إشارة SUM عند الضرورة.
7. اختر نوع طرف بالنقر على تغيير التحقيق في القائمة الإعداد.
8. انقر فوق التحقق من معلمات وتعيين المعلمات: مسح الحجم إلى 0، معدل المسح إلى 1 هرتز، عينة / خط 256 وانحراف SETPOINT إلى 20 نانومتر. انقر الانخراط. ستبقى نافذة الحالة الانخراط مفتوح حتى تحقيق يجعل الاتصال مع سطح اللوحة. بعد إشراك التحقيق، انقر فوق التعلية.
9. انقر فوق الموسع الوضع في القائمة مسح شريط أدوات وتعيين المعلمات: التعلية الحجم الى ما بين 500 نانومتر و 1 ميكرون، تعلية السعر في 2 هرتز، عدد العينات إلى 256، نصيحة نصف قطرها إلى 500 نانومتر، ونسبة عينة بواسون إلى 0.5 (تفترض المواد غير أن تقاس ينضغط تماما)، نصيحة نصف زاوية إلى 0، وضع الزناد إلى عتبة النسبية والزناد إلى ما بين 20 و 100 نانومتر.
10. انقر المنحدر المستمر في القائمة تعلية شريط الأدوات لobtaفي منحنى القوة على لوحة (الشكل 3A). في هذا المنحنى قوة، تعيين القناة 1 إلى خطأ انحراف.
    ملاحظة: سيسمح هذا البرنامج لرسم بياني النتائج على النحو انحراف العمودي مقابل موقف ض.
    1. انقر في نهايات اليسار أو اليمين من منحنى القوة واسحب المؤشر لتشمل المنطقة خطية من منحنى القوة (الشكل 3A، متقطع الخطوط الحمراء). استخدام هذين الخطين للاحتفال حدود المنطقة منحدر أن يكون لائقا مع خط مستقيم.
11. اختر التعلية في شريط الأدوات ثم انقر فوق تحديث الحساسية. تسجيل القيمة وكرر هذه الخطوة أربع مرات أكثر. اختر معايرة في شريط الأدوات ثم انقر الكاشف. مساهمة قيمة متوسط من القياسات خمسة في مربع انحراف الحساسية.
12. انقر سحب 2-3 مرات لرفع رأسه فؤاد. هذه الخطوة مهمة لمنعالتفاعل بين طرف فؤاد ولوحة أثناء عملية ضبط الحرارية. انقر اللحن الحرارية في شريط الأدوات.
13. تعيين الحراري المدى اللحن من 1-100 كيلو هرتز (يمكن الحصول على هذه المعلومات من كتالوج الشركة المصنعة) وانحراف الحساسية تصحيح إلى 1،144 لالكابولي على شكل حرف V و1،106 لالكابولي مستطيلة.
14. في القائمة اللحن الحرارية، انقر فوق الحصول على البيانات للحصول على منحنى لحن الحراري (الشكل 3B). باستخدام برنامج AFM، تحطمت مكان خطوط حمراء على أي من جانبي منحنى (كما هو موضح في الشكل 3B) عن طريق سحب الماوس في من على حافة الرسم البياني لتحديد حدود للتركيب. حدد إما Lorentzian (الهواء) أو نموذج بسيط المذبذب متناسق (السائل) اعتمادا على أفضل يناسب البيانات.
15. انقر صالح البيانات، ثم احسب الربيع K وحفظ هذه القيمة. إعادة الجفت ربيع المعايرة المستمرة عدة مرات، واستخدام متوسط ​​قيمة. انقر سحب عدة مرات.
16. إزالة الرأس AFM من مرحلة المجهر ووضعه على وحدة المحاذاة. إزالة طبق من المرحلة المجهر.

الشكل 3: منحنيات القوة AFM المستخدمة في معايرة AFM تحقيقات. (أ) منحنى القوة AFM التمثيلي (منحنى المعايرة). الجزء تمديد منحنى القوة بين الأحمر العمودي متقطع تم استخدام خطوط لتحديد حساسية ناتئ انحراف. (ب) بسيطة مذبذب التوافقي مناسبا الرسم البياني المستخدمة لحساب ثابت ربيع ناتئ كما هو موضح سابقا ^(20). الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الحمار = "jove_title"> 6. قياس مرونة معامل على الشرايين الفأر فيفو السابقين

1. ضع صحن الثقافة 60 ملم تحتوي على أنسجة الأبهري على المسرح المجهر، وتأمين لوحة مع حامل لوحة المغناطيسي.
2. وضع رئيس فؤاد على المسرح المجهر. تأكد من أن لجنة التحقيق AFM لا يجعل الاتصال مع الشريان الأورطي ولكن بلطف يجعل الاتصال مع برنامج تلفزيوني، وتشكل الغضروف المفصلي. إذا لزم الأمر، وضع رئيس فؤاد على وحدة التنسيق وانقر تسحب حتى يكون هناك ما يكفي من إزالة لمنع الاتصال، ثم وضع رأسه فؤاد على المسرح المجهر.
3. فوق التنقل. باستخدام عصا التحكم أو النقر على 'داون السهم، وانخفاض ببطء التحقيق AFM لتحديد موقع ناتئ فوق الشريان الأورطي. ضبط الموقف الضوئي باستخدام المقابض للكشف عن المواقع على رأسه فؤاد إذا لزم الأمر.
4. انقر فوق إشراك السماح للتعزية لاجراء اتصالات مع الشريان الأورطي.
5. مرة واحدة فيوتشارك الشريان الأورطي، وضمان أن مركز بيزو مستقر وفوق المنحدر. إذا كان مركز بيزو يتذبذب، وهذا قد يكون نتيجة لمشاركة كاذبة. سحب التحقيق وزيادة إزاحة رأسية من الليزر على الثنائي الضوئي بزيادات صغيرة (~ 0.5 V) وإعادة الانخراط.
   1. أيضا، إذا كان التحقيق هو أعلى بكثير من سطح العينة، يدويا خفض التحقيق أقرب إلى سطح العينة قبل إعادة المشاركة. إذا كانت الخطوات السابقة لا تقضي على التقلبات، حاول تبادل التحقيق.
6. تعيين تعلية الحجم إلى 3 ميكرون، ووضع الزناد لنسبي وعتبة الزناد إلى 100 نانومتر، وفوق التعلية مستمر. نلاحظ أن نقطة الاتصال بين التحقيق والعينة يحدث في حوالي المركز إلى أقل ¾ من دورة Z المنحدر. إن لم يكن لوحظ هذا، فك الارتباط من العينة، وضبط حجم التعلية حسب الحاجة، وإعادة الانخراط العينة.
7. انقر مجهر في شريط القوائم ومن ثم الانخراط إعدادات. تغيير SPM سحب إلى 30 ميكرون. انقر المنحدر المستمر في القائمة تعلية شريط الأدوات.
8. بعد مراقبة منحنى القوة، انقر فوق التقاط في شريط القوائم ومن ثم التقاط اسم الملف. أدخل اسم الملف المطلوب مع نهاية "0.000" (وهذا سوف يسمح الملفات التي استولت إضافية لزيادة في عدد أقصاه 1). اختر-مجلد معين وحفظ البيانات.
9. انقر فوق التقاط في القائمة التقاط شريط الأدوات. انقر سحب ثم انتقل. استخدام المقود أو ضوابط البرمجيات لوضع ناتئ على منطقة أخرى من الشريان الأبهر (بجانب نقطة قياس في البداية، وانظر الشكل 4).
10. انقر الانخراط، التعلية، والمنحدر مستمر، على التوالي. بعد مراقبة منحنى القوة، انقر فوق إيقاف ومن ثم القبض.
11. كرر الخطوات من 6،9-6،10. القبض على 5 على الأقل القياسات في منطقة كما هو مبين في الشكل (4) ملاحظة: نحن عادة جمع 15-25 منحنيات القوة 3-5 مواقع مختلفة في كل الأنسجة كما هو مبين في الشكل (4)، على التوالي.

. الشكل 4: كارتون من الكابولي الاقتراب والطعج الأنسجة (منطقة 1) ويتكرر هذا قياس AFM تصل إلى 15-25 مرة 3-5 مواقع مختلفة (مناطق 1-5) في كل شريان للحصول على صلابة من مجمل عينة الأنسجة. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

تحليل 7. البيانات

1. فتح قوة برمجيات تحليل منحنى.
2. CLإك البحث والمفتوحة في شريط القوائم، وانقر مرتين على الملف المراد تحليلها.
3. انقر فوق تعديل معلمات القوة في القائمة أدوات للتحقق من حساسية انحراف، ونسبة الربيع المستمر، نصيحة الشعاع، وتلميح نصف زاوية وبواسون. لتغيير الاختيار المعلمات في المربع المجاور له وأدخل القيم الصحيحة في العمود قيمة جديدة. ثم انقر فوق تنفيذ.
4. إذا منحنيات القوة صاخبة، انقر فوق عربة النقل تصفية وتحديد مدخلات للاتجاه لتمديد، متوسط نقاط إلى 3 وبحث الترتيب ل0 ^عشر. انقر فوق تنفيذ لضمان سلاسة البيانات.
5. انقر الأساس تصحيح في شريط القوائم وتحديد مدخلات للاتجاه لتمديد، وحدات مؤامرة لقوة، نوع من الانفصال، تصحيح بالدفع إلى 1 ^الحادي وتوسيع الأساس المصدر لتوسيع. ضبط خطوط زرقاء منقطة الرأسية ليشمل الجزء المسطح من منحنى القوة وثم انقر فوق تنفيذ.
6. انقر المسافة البادئة في القائمة شريط الأدوات وتحديد المدخلات لالمنحنى النشط لمدد، أسلوب صالح إلى نقطة الاتصال القائم، نقطة الاتصال خوارزمية لعلاج متغير صالح كما، وتشمل قوة الالتصاق لا، قوة ماكس صالح الحدود إلى 30٪، القوة مين صالح الحدود ل 0٪ وتناسب نموذج لالهرتزية (كروية).
   ملاحظة: في قياساتنا، التصاق كبير بين طرف وعينة (أ انحراف سلبي للتعزية في منحنى التراجع) ونادرا ما لوحظ. في الحالات التي لوحظ هذا الالتصاق، والنموذج المناسب (DMT أو JKR) يجب أن تستخدم لتحليل ^18،19.
7. حفظ قيم معامل يونغ. تحليل (مطاط) معامل يونغ من كل من 3- 5 مناطق (منحنيات 5 القوة في المنطقة) التي اتخذت على مسافة صغيرة من بعضها البعض كما هو مبين في الشكل (4).
   ملاحظة: لإزالة القطع الأثرية، واستبعاد الرجوعية يونغ> 100 كيلو باسكال (عادة ~ 10٪ من إجمالي القياسات) من التحليل.
8. حساب قيمة متوسط ​​معامل يونغ لكل من 3-5 المناطق (التي تم قياسها) واستخدام هذه القيم لحساب معامل المرونة يعني لالشريان الأورطي ككل.
   ملاحظة: لا يقل عن 3 وأكثر من ذلك في كثير من الأحيان 4 - تستخدم 6 aortas الفردية للحصول على تقييم دقيق لتصلب الشرايين. يتم رسم النتائج النهائية كما يعني + ووزارة شؤون المرأة من "ن" تجارب مستقلة. فإن العدد الدقيق للaortas لزم الأمر، بالطبع، يعتمد على مستوى من الدقة اللازمة.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

النتائج

ويبين الشكل 5A صورة النقيض مرحلة من الشريان الأورطي النازل (الصدر) من العمر 6 أشهر، الذكور C57BL / 6 الماوس. ناتئ فؤاد في مكان مباشرة فوق الأنسجة وجاهزة للتسنن. الأرقام 5B و5C تظهر منحنيات القوة التمثيلية التي حصلت عليها AFM المسافة البادئة في وض...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

فؤاد المسافة البادئة يمكن استخدامها لتوصيف صلابة (معامل المرونة) من الخلايا والأنسجة. في هذه الورقة، ونحن نقدم تفصيلا بروتوكولات خطوة بخطوة لعزل الشريان الأورطي النازل وقوس الأبهر في الماوس وتحديد الرجوعية المرنة من هذه المناطق الشرايين خارج الحي. نحن الآن تلخ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
BioScope Catalyst AFM system	Bruker
Nikon Eclipse TE 200 inverted microscope	Nikon Instruments
Silicon nitride AFM probe	Novascan Technologies	PT.SI02.SN.1	0.06 N/m cantilever; 1 µm SiO2 particle
Dumont #5 forceps	Fine Science Tools	11251-10	See section 1.4
Dumont #5SF forceps	Fine Science Tools	11252-00	See section 1.8
Fine Scissors-ToughCut	Fine Science Tools	14058-11	See section 1.4 (medium sized)
Vannas-Tübingen spring scissors	Fine Science Tools	15008-08	See section 1.6 (small sized)
60 mm TC-treated cell culture dish	Corning	353004
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline, 1x	Corning	21-031-CM	Without calcium and magnesium
Krazy Glue instant all purpose liquid	Krazy Glue	KG58548R	See section 2.2
Gel-loading tips, 1 - 200 µl	Fisher	02-707-139	See section 2.2
Tip Tweezers	Electron Microscopy Sciences	78092-CP	See section 3.2
50-mm, clear wall glass bottom dishes	TED PELLA	14027-20	See section 4.4