A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
لقد حددنا مؤخرا تصلب الشعيرات الدموية في شبكية العين كنموذج جديد لضعف الشبكية المرتبط بمرض السكري. يوضح هذا البروتوكول خطوات عزل الشعيرات الدموية في شبكية الفأر والمصفوفة تحت البطانية من مزارع بطانة الشبكية ، متبوعا بوصف لتقنية قياس الصلابة باستخدام مجهر القوة الذرية.
التنكس الشعري الشبكي هو السمة المميزة السريرية للمراحل المبكرة من اعتلال الشبكية السكري (DR). كشفت دراساتنا الحديثة أن تصلب الشعيرات الدموية في الشبكية الناجم عن مرض السكري يلعب دورا سببيا حاسما وغير معترف به سابقا في تنكس الشعيرات الدموية في الشبكية بوساطة الالتهاب. تنتج الزيادة في تصلب الشعيرات الدموية في شبكية العين عن الإفراط في التعبير عن أوكسيديز الليسيل ، وهو إنزيم يتشابك ويقوي المصفوفة تحت البطانية. نظرا لأنه من المتوقع أن يؤدي التعامل مع DR في المرحلة المبكرة إلى منع أو إبطاء تقدم DR وفقدان البصر المرتبط به ، فإن المصفوفة تحت البطانية ، وتصلب الشعيرات الدموية تمثل أهدافا علاجية ذات صلة وجديدة لإدارة DR المبكرة. علاوة على ذلك ، يمكن أن يكون القياس المباشر لتصلب الشعيرات الدموية في شبكية العين بمثابة خطوة حاسمة للتحقق قبل السريري لتطوير تقنيات تصوير جديدة للتقييم غير الجراحي لتصلب الشعيرات الدموية في الشبكية في والبشر. مع وضع هذا الرأي في الاعتبار ، نقدم هنا بروتوكولا مفصلا لقياس عزل وصلابة الشعيرات الدموية في شبكية الفأر والمصفوفة تحت البطانية باستخدام مجهر القوة الذرية.
الشعيرات الدموية في الشبكية ضرورية للحفاظ على توازن الشبكية والوظيفة البصرية. في الواقع ، فإن انحطاطهم في مرض السكري المبكر متورط بقوة في تطور المضاعفات التي تهدد الرؤية لاعتلال الشبكية السكري (DR) ، وهي حالة الأوعية الدموية الدقيقة التي تؤثر على ما يقرب من 40 ٪ من جميع الأفراد المصابين بداء السكري1. يساهم التهاب الأوعية الدموية بشكل كبير في تنكس الشعيرات الدموية في الشبكية في DR. أظهرت الدراسات السابقة دورا مهما للإشارات الجزيئية والكيميائية الحيوية الشاذة في التهاب الأوعية الدموية في الشبكية الناجم عن مرض السكري 2,3. ومع ذلك ، فقد قدم العمل الأخير نموذجا جديدا لت....
تم تنفيذ جميع الإجراءات الحيوانية وفقا لبيان جمعية أبحاث الرؤية وطب العيون (ARVO) لاستخدام في أبحاث العيون والرؤية وتمت الموافقة عليه من قبل اللجان المؤسسية لاستخدام والرعاية (IACUC ؛ رقم البروتوكول ARC-2020-030) في جامعة كاليفورنيا ، لوس أنجلوس (رقم ضمان رعاية لمؤسسة OLAW A3196-01). تم تنفيذ البروتوكول التالي باستخدام الشعيرات الدموية الشبكية المعزولة من الفئران البالغة (البالغة من العمر 20 أسبوعا) C57BL / 6J التي تزن ~ 25 جم (الفئران المصابة بالسكري) و ~ 32 جم (الفئران غير المصابة بالسكري. مختبر جاكسون).
1. عزل الشعيرات الدموية في شبكية الفأر لقياس صلابة AFM (الأيام 1-4)
ملاحظة: هذا البروتوكول ، ....
الشعيرات الدموية الشبكية للفأر
يتضمن قياس صلابة AFM للشعيرات الدموية الشبكية المعزولة خطوات معالجة العينات التي يمكن أن تلحق الضرر بسلامتها الميكانيكية الهيكلية. لمنع ذلك وبالتالي ضمان جدوى وموثوقية وقابلية استنساخ قياسات AFM ، يتم تثبيت العيون المنزوعة النواة في 5٪ فورمالين طو.......
تم استخدام AFM على نطاق واسع لقياس التغيرات المرتبطة بالمرض في تصلب الأوعية الكبيرة ، مثل الشريان الأورطي والشرايين16. وقد ساعدت هذه النتائج في تحديد دور البيولوجيا الميكانيكية البطانية في مضاعفات القلب والأوعية الدموية مثل تصلب الشرايين17. بناء على هذه النتائج ، ?.......
ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.
تم دعم هذا العمل من قبل المعهد الوطني للعيون / المعاهد الوطنية للصحة منحة R01EY028242 (إلى KG) ، وجائزة محفز البحث للوقاية من العمى / المؤسسة الدولية لأبحاث الشبكية لمناهج البحث المبتكرة ل AMD (إلى KG) ، ومبادرة ستيفن ريان لأبحاث البقعة الصفراء (RIMR) منحة خاصة من مؤسسة W.M. Keck (إلى معهد Doheny Eye) ، وزمالة أورسولا ماندل وزمالة التنوع في مجلس الدراسات العليا بجامعة كاليفورنيا في لوس أنجلوس (إلى I.S.T.). تم دعم هذا العمل أيضا من خلال منحة غير مقيدة من Research to Prevention Blindness، Inc. إلى قسم طب العيون في جامعة كاليفورنيا في لوس أنجلوس. المحتوى الوارد في هذه المقالة هو مسؤولية المؤلفين وحدهم ولا يمثل بالضرورة الآراء الرسمية للمعاهد الوطنية للصحة.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Retinal Capillary Isolation | |||
0.22 µm PVDF syringe filter | Merck Millipore | SLGVM33RS | Low Protein Binding Durapore |
10X Dulbecco's Phosphate Buffered Saline without calcium % magnesium | Corning | 20-031-CV | Final concentration 1X, pH 7.4 |
12-well plate | Falcon Corning | 353043 | |
15 mL centrifuge tube | Corning | 430791 | Rnase-Dnase-free, Nonpyrogenic |
20 mL Luer-Lok TIP syringe | BD | 302830 | |
5 3/4 inch Disposable Borosilicate Glass/Non-sterile Pasteur pipette | FisherBrand | 13-678-20A | |
60x15 mm Tissue Culture Dish | Falcon Corning | 353002 | |
6-well plate | Falcon Corning | 353046 | |
Aqua-Hold 2 Pap - 13 mL Pen | Scientific Device Laboratory | 9804-02 | |
Blade holder | X-ACTO | ||
Carbon Steel Surgical Blade #10 | Bard-Parker | 371110 | |
Dental Wax | Electron Microscopy Sciences | 50-949-027 | |
Dissecting microscope | Am-scope | ||
Formalin solution, neutral buffered, 10% | Millipore Sigma | HT501128-4L | Final concentration 5% (v/v) |
Kimwipes - wiper tissue | Kimtech Science | 34133 | |
Micro spatula | Fine Science Tools | 10089-11 | |
Orbital Shaker | Lab Genius | SK-O180 | |
PELCO Economy #7 Stainless Steel 115mm Tweezer | Ted Pella, Inc. | 5667 | |
Phase contrast microscope | Nikon TS2 | ||
Purifier Logic+ Class II, Type A2 Biosafety Cabinet | Labconco | 302380001 | |
Safe-Lock microcentrifuge tubes 2 mL | Eppendorf | 22363352 | |
Stereoscope | AmScope | SM-3 Series Zoom Trinocular Stereomicroscope 3.5X-90X | |
Superfrost Plus microscopy slide - White tab - Pre-cleaned - 25x75x1.0 mm | FisherBrand | 1255015 | |
Tris Buffer, 0.1M solution, pH 7.4 - Biotechnology Grade | VWR | E553-500ML | pH 8 for trypsin solution |
Trypsin 1:250 powder Tissue Culture Grade | VWR | VWRV0458-25G | 10 % (w/v) trypsin solution |
Water Molecular Biology Grade | Corning | 46-000-CM | |
Subendothelial Matrix | |||
10X PBS | Corning | 20-031-CV | |
1X PBS with calcium and magnesium | Thermo Fisher Scientific | 14040-117 | pH 7.4 |
Ammonium hydroxide | Sigma-Aldrich | 338818 | |
Ascorbic Acid | Sigma-Aldrich | A4034 | |
Collagen IV antibody | Novus Biologicals | NBP1-26549 | |
DNase I | Qiagen | 79254 | |
Ethanolamine | Sigma-Aldrich | 398136 | |
Fibronectin antibody | Sigma-Aldrich | F6140 | |
Fluoromount | Invitrogen-Thermo Fisher Scientific | 00-4958-02 | |
Gelatin | Sigma-Aldrich | G1890 | |
Glass coverslips (12mm) | Fisher | 12-541-000 | |
Glutaraldehyde | Electron microscopy Sciences | 16220 | |
Human retinal endothelial cells (HREC) | Cell Systems Corp | ACBRI 181 | |
MCDB131 medium | Corning | 15-100-CV | |
Mouse retinal endothelial cells (mREC) | Cell Biologics | C57-6065 | |
Triton X-100 | Thermo Fisher Scientific | BP151-100 | |
Trypsin | Gibco-Thermo Fisher Scientific | 25200-056 | |
AFM Measurement | |||
1 µm Probe | Bruker | SAA-SPH-1UM | A 19 micron tall hemispherical probe with 1 micron end radius, Spring constant 0.25N/m |
70 nm LC probe | Bruker | PFQNM-LC-V2 | A 19 micron tall hemispherical probe with 70nm end radius, Spring constant 0.1N/m |
camera | XCAM family | Toupcam | 1080P HDMI |
Desktop to run the camera | Asus | Asus desktop | Intel i5-6600 CPU , 8GB RAM |
Dish holder for coverslip | Cellvis | D29-14-1.5-N | 29mm glass bottom dish with 14 mm micro-well |
Nanowizard 4 | Bruker | Nanowizard 4 | Bioscience atomic force microscope mounted on an optical microscope for sensitive measurement of the mechanostructural properties (stiffness and topography) of soft biological samples |
Phase contrast micrscope | Zeiss | Axiovert 200 | Inverted microscope with 10X objective |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionExplore More Articles
This article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved