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我们最近确定视网膜毛细血管硬化是与糖尿病相关的视网膜功能障碍的新范式。该协议详细阐述了从视网膜内皮培养物中分离小鼠视网膜毛细血管和内皮下基质的步骤,然后描述了使用原子力显微镜的刚度测量技术。
视网膜毛细血管变性是糖尿病视网膜病变 (DR) 早期阶段的临床标志。我们最近的研究表明,糖尿病诱导的视网膜毛细血管硬化在炎症介导的视网膜毛细血管变性中起着至关重要且以前未被认识的因果关系。视网膜毛细血管硬度的增加是由于赖氨酰氧化酶的过表达,赖氨酰氧化酶是一种交联和硬化内皮下基质的酶。由于在早期解决 DR 有望预防或减缓 DR 进展和相关的视力丧失,因此内皮下基质和毛细血管僵硬是早期 DR 管理的相关和新型治疗靶点。此外,直接测量视网膜毛细血管硬度可以作为开发新成像技术的关键临床前验证步骤,用于对动物和人类受试者的视网膜毛细血管硬度进行无创评估。考虑到这一观点,我们在这里提供了使用原子力显微镜对小鼠视网膜毛细血管和内皮下基质进行隔离和刚度测量的详细方案。
视网膜毛细血管对于维持视网膜稳态和视觉功能至关重要。事实上,他们在早期糖尿病中的退化与糖尿病视网膜病变 (DR) 威胁视力并发症的发展密切相关,DR 是一种影响近 40% 的糖尿病患者的微血管疾病1。血管炎症对 DR 中的视网膜毛细血管变性有显著影响。过去的研究表明,异常的分子和生化线索在糖尿病诱导的视网膜血管炎症中起重要作用 2,3。然而,最近的工作引入了一种 DR 发病机制的新范式,该范式将视网膜毛细血管硬化确定为视网膜血管炎症和变性的关键但以前未被认识的决定因素 4,5,6。
具体来说,糖尿病诱导的视网膜毛细血管硬度增加是由视网膜内皮细胞 (EC) 中胶原蛋白交联酶赖氨酰氧化酶 (LOX) 的上调引起的,这会使内皮下基质(基底膜)变硬4,5,6。反过来,基质硬化使覆盖的视网膜 EC 变硬(由于机....
所有动物手术均按照视觉与眼科学研究协会 (ARVO) 关于在眼科和视觉研究中使用动物的声明进行,并经加州大学洛杉矶分校机构动物和护理使用委员会 (IACUC;协议编号 ARC-2020-030)(OLAW 机构动物福利保证编号 A3196-01)批准。使用从体重 ~25 g(糖尿病小鼠)和 ~32 g(非糖尿病小鼠)的成年(20 周龄)雄性 C57BL/6J 小鼠中分离的视网膜毛细血管执行了以下方案;Jackson Laboratory)。
1. 分离小鼠视网膜毛细血管以进行 AFM 刚度测量(第 1-4 天)
注意:该协议在最近的一项研究4 中报告,详细介绍了小鼠眼的摘除和轻度固定、视网膜分离和胰蛋白酶消化,以及随后将所得视网膜脉管系统安装在显微镜载玻片上用于 AFM 刚度测量。
小鼠视网膜毛细血管
离体视网膜毛细血管的 AFM 刚度测量涉及样品处理步骤,这些步骤可能会破坏其机械结构完整性。为了防止这种情况,从而确保 AFM 测量的可行性、可靠性和可重复性,在血管分离之前,将去核的眼睛在 4°C 下在 5% 福尔马林中固定过夜。这种温和的固定方案具有福尔马林浓度降低、固定温度低、固定时间有限且无角膜穿刺的特点,旨在最大限度地减少化学固定?.......
AFM 已广泛用于测量较大血管(如主动脉和动脉)的疾病相关硬度变化16。这些发现有助于确定内皮力学生物学在心血管并发症(如动脉粥样硬化17)中的作用。基于这些发现,我们已经开始研究以前未被认识的内皮力学生物学在早期 DR 视网膜微血管病变发展中的作用。然而,这一追求的成功取决于对糖尿病诱导的视网膜毛细血管硬度变化的准确测量。最近的研?.......
作者没有什么可披露的。
这项工作得到了美国国家眼科研究所/NIH 赠款 R01EY028242(对 K.G.)、防盲研究/国际视网膜研究基金会 AMD 创新研究方法催化剂奖(对 K.G.)、来自 WM Keck 基金会的 Stephen Ryan 黄斑研究倡议 (RIMR) 特别赠款(对 Doheny 眼科研究所),以及 Ursula Mandel 奖学金和加州大学洛杉矶分校研究生委员会多元化奖学金(对 I.S.T.)。这项工作还得到了 Research to Prevent Blindness, Inc. 对加州大学洛杉矶分校眼科的无限制资助的支持。本文中的内容完全由作者负责,并不一定代表美国国立卫生研究院的官方观点。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Retinal Capillary Isolation | |||
0.22 µm PVDF syringe filter | Merck Millipore | SLGVM33RS | Low Protein Binding Durapore |
10X Dulbecco's Phosphate Buffered Saline without calcium % magnesium | Corning | 20-031-CV | Final concentration 1X, pH 7.4 |
12-well plate | Falcon Corning | 353043 | |
15 mL centrifuge tube | Corning | 430791 | Rnase-Dnase-free, Nonpyrogenic |
20 mL Luer-Lok TIP syringe | BD | 302830 | |
5 3/4 inch Disposable Borosilicate Glass/Non-sterile Pasteur pipette | FisherBrand | 13-678-20A | |
60x15 mm Tissue Culture Dish | Falcon Corning | 353002 | |
6-well plate | Falcon Corning | 353046 | |
Aqua-Hold 2 Pap - 13 mL Pen | Scientific Device Laboratory | 9804-02 | |
Blade holder | X-ACTO | ||
Carbon Steel Surgical Blade #10 | Bard-Parker | 371110 | |
Dental Wax | Electron Microscopy Sciences | 50-949-027 | |
Dissecting microscope | Am-scope | ||
Formalin solution, neutral buffered, 10% | Millipore Sigma | HT501128-4L | Final concentration 5% (v/v) |
Kimwipes - wiper tissue | Kimtech Science | 34133 | |
Micro spatula | Fine Science Tools | 10089-11 | |
Orbital Shaker | Lab Genius | SK-O180 | |
PELCO Economy #7 Stainless Steel 115mm Tweezer | Ted Pella, Inc. | 5667 | |
Phase contrast microscope | Nikon TS2 | ||
Purifier Logic+ Class II, Type A2 Biosafety Cabinet | Labconco | 302380001 | |
Safe-Lock microcentrifuge tubes 2 mL | Eppendorf | 22363352 | |
Stereoscope | AmScope | SM-3 Series Zoom Trinocular Stereomicroscope 3.5X-90X | |
Superfrost Plus microscopy slide - White tab - Pre-cleaned - 25x75x1.0 mm | FisherBrand | 1255015 | |
Tris Buffer, 0.1M solution, pH 7.4 - Biotechnology Grade | VWR | E553-500ML | pH 8 for trypsin solution |
Trypsin 1:250 powder Tissue Culture Grade | VWR | VWRV0458-25G | 10 % (w/v) trypsin solution |
Water Molecular Biology Grade | Corning | 46-000-CM | |
Subendothelial Matrix | |||
10X PBS | Corning | 20-031-CV | |
1X PBS with calcium and magnesium | Thermo Fisher Scientific | 14040-117 | pH 7.4 |
Ammonium hydroxide | Sigma-Aldrich | 338818 | |
Ascorbic Acid | Sigma-Aldrich | A4034 | |
Collagen IV antibody | Novus Biologicals | NBP1-26549 | |
DNase I | Qiagen | 79254 | |
Ethanolamine | Sigma-Aldrich | 398136 | |
Fibronectin antibody | Sigma-Aldrich | F6140 | |
Fluoromount | Invitrogen-Thermo Fisher Scientific | 00-4958-02 | |
Gelatin | Sigma-Aldrich | G1890 | |
Glass coverslips (12mm) | Fisher | 12-541-000 | |
Glutaraldehyde | Electron microscopy Sciences | 16220 | |
Human retinal endothelial cells (HREC) | Cell Systems Corp | ACBRI 181 | |
MCDB131 medium | Corning | 15-100-CV | |
Mouse retinal endothelial cells (mREC) | Cell Biologics | C57-6065 | |
Triton X-100 | Thermo Fisher Scientific | BP151-100 | |
Trypsin | Gibco-Thermo Fisher Scientific | 25200-056 | |
AFM Measurement | |||
1 µm Probe | Bruker | SAA-SPH-1UM | A 19 micron tall hemispherical probe with 1 micron end radius, Spring constant 0.25N/m |
70 nm LC probe | Bruker | PFQNM-LC-V2 | A 19 micron tall hemispherical probe with 70nm end radius, Spring constant 0.1N/m |
camera | XCAM family | Toupcam | 1080P HDMI |
Desktop to run the camera | Asus | Asus desktop | Intel i5-6600 CPU , 8GB RAM |
Dish holder for coverslip | Cellvis | D29-14-1.5-N | 29mm glass bottom dish with 14 mm micro-well |
Nanowizard 4 | Bruker | Nanowizard 4 | Bioscience atomic force microscope mounted on an optical microscope for sensitive measurement of the mechanostructural properties (stiffness and topography) of soft biological samples |
Phase contrast micrscope | Zeiss | Axiovert 200 | Inverted microscope with 10X objective |
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