A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Method Article
يهدف هذا البروتوكول إلى صفيحة التجميعات المنصهرة الظهرية البطنية بثبات على مصفوفات متعددة الأقطاب الكهربائية لنمذجة الصرع في المختبر.
عضيات الدماغ البشري هي هياكل ثلاثية الأبعاد (3D) مشتقة من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات (hPSCs) التي تلخص جوانب نمو دماغ الجنين. يولد اندماج الظهرية مع عضيات الدماغ البطنية المحددة إقليميا في المختبر تجمعات ، والتي تحتوي على دوائر دقيقة متكاملة وظيفيا مع الخلايا العصبية المثيرة والمثبطة. نظرا لتعقيدها الهيكلي وتنوع عدد الخلايا العصبية ، أصبحت التجميعات أداة مفيدة في المختبر لدراسة نشاط الشبكة الشاذ. تعمل تسجيلات المصفوفة متعددة الأقطاب الكهربائية (MEA) كطريقة لالتقاط إمكانات المجال الكهربائي والمسامير وديناميكيات الشبكة الطولية من مجموعة من الخلايا العصبية دون المساس بسلامة غشاء الخلية. ومع ذلك ، فإن التصاق التجميعات على الأقطاب الكهربائية للتسجيلات طويلة المدى قد يكون أمرا صعبا نظرا لحجمها الكبير ومساحة سطح التلامس المحدودة مع الأقطاب الكهربائية. هنا ، نوضح طريقة للوحة التجميعات على ألواح MEA لتسجيل النشاط الفيزيولوجي الكهربي على مدى شهرين. على الرغم من أن البروتوكول الحالي يستخدم العضيات القشرية البشرية ، إلا أنه يمكن تكييفه على نطاق واسع مع العضيات المتمايزة لنمذجة مناطق الدماغ الأخرى. ينشئ هذا البروتوكول اختبارا قويا وطوليا للفيزيولوجيا الكهربية لدراسة تطوير شبكة عصبية ، وهذه المنصة لديها القدرة على استخدامها في فحص الأدوية للتطور العلاجي في الصرع.
عضيات الدماغ المشتقة من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات (hPSC) هي هياكل ثلاثية الأبعاد ذاتية التنظيم مكانيا تعكس بنية الأنسجة ومسارات النمو في الجسم الحي. وهي تتكون من أنواع متعددة من الخلايا ، بما في ذلك الأسلاف (الخلايا الظهارية العصبية ، الخلايا الدبقية الشعاعية ، الأسلاف العصبية ، الأسلاف الدبقية) ، الخلايا العصبية (الخلايا العصبية المثيرة الشبيهة بالقشرة والخلايا العصبية الداخلية المثبطة) ، والخلايا الدبقية (الخلايا النجمية والخلايا الدبقية قليلة التغصن) 1،2. تمثل التجميعات الجيل التالي من عضيات الدماغ ، القادرة على دمج مناطق دماغية متعددة و / أو سلالات الخلايا في ثقافة ثلاثية الأبعاد. إنها توفر أداة مفيدة لنمذجة الروابط بين مناطق الدماغ المختلفة التي تشبه نظيراتها في الجسم الحي ، والتقاط التفاعلات بين الخلايا العصبية والخلايا النجمية لتقليد الشبكات العصبية الناضجة والمعقدة بشكل أفضل ، ودراسة تجميع الدوائر العصبية. لذلك ، أصبحت التجميعات أداة مستخدمة على نطاق واسع لتلخيص السمات المميزة للفيزيولوجيا المرضية للصرع ، حيث تكون التدابير الوظيفية ضرورية لاستجواب الشبكات العصبية الشاذة التي قد تكمن وراء سببالمرض 3،4،5،6.
لنمذجة التفاعلات بين الخلايا العصبية الجلوتامية القشرية والخلايا العصبية الداخلية GABAergic ، طورت عدة مجموعات عضيات منفصلة تشبه الدماغ الظهري والبطني ثم دمجتها معا في مجموعة متعددة المناطق7،8،9،10. هنا ، تم تطبيق بروتوكول ثقافة التجميع الموصوف سابقا مع أنواع فرعية عصبية محددةإقليميا 9. ومع ذلك ، فإن الحاجز المهم هو عدم وجود فحوصات وظيفية قابلة للتكرار لمراقبة نشاط الشبكة العصبية أثناء النمو العصبي. تسفر العديد من الاختبارات الوظيفية للشبكات في العضيات عن نتائج ذات تباين كبير بين دفعات التمايز وخطوط الخلايا. تعمل التقنيات التي تنطوي على تقطيع أو تفكيك العضيات على تغيير شبكاتها المتأصلة عن طريق قطع الاتصال المشبكي8.
توفر المصفوفات متعددة الأقطاب الكهربائية (MEA) عرضا واسع النطاق لنشاط الشبكة بمرور الوقت بدقة زمنية عالية لتوصيف الخصائص الفيزيولوجية الكهربية للعضيات دون تعطيل ظروف الثقافة أو سلامة غشاءالخلية 11. بالمقارنة مع الفيزيولوجيا الكهربية لمشبك التصحيح ، تتيح MEA الحصول على بيانات عالية الإنتاجية بناء على مجموعات كبيرة من الخلايا العصبية بدلا من الخلايا المفردة. تختلف منصات MEA في كثافة أقطاب كهربائية ، مما يلبي الاحتياجات المختلفة في أبحاث العضوية فيالدماغ 12. تسجل الأنظمة المستخدمة على نطاق واسع ، كما هو موضح في هذا البروتوكول ، من 8 إلى 64 قطبا كهربائيا لكل بئر13،14،15. تتيح الاتفاقات البيئية المتعددة الأطراف عالية الكثافة التي تصل إلى 26,400 قطب كهربائي لكل بئر زيادة الدقة المكانية والزمانية ، والقياس الكمي لسرعة انتشار جهد الفعل ، والجمع بين التحفيز البصريالوراثي 14 ، 16 ، 17. لذلك ، تعمل MEA كأداة قوية لنمذجة الصرع في المختبر ونموذج انتقالي لفحص الأدوية المضادة للنوبات.
يتمثل أحد التحديات الرئيسية في تثبيت التجميعات كبيرة الحجم على سطح معدني كاره للماء للتسجيلات طويلة المدى. يحدد هذا البروتوكول منهجية مفصلة لطلاء التجميعات السليمة على ألواح MEA للتسجيل الطولي طويل المدى جنبا إلى جنب مع المقايسات الدوائية. تشمل المزايا الفريدة للبروتوكول الارتباط المستقر للتجميعات بسطح القطب الكهربائي دون فقدان النشاط الكهربائي ، واستخدام الوسائط القاعدية الفيزيولوجية العصبية المتاحة تجاريا لتسريع نضج الشبكة الوظيفية بعد الطلاء ، وجدوى إجراء فحوصات وظيفية نهائية مثل العلاج بالعقاقير ، والتطبيق الواسع على العضيات التي تم إنشاؤها باستخدام بروتوكولات أخرى خاصة بالمنطقة.
الهدف هو توفير اختبار وظيفي بدقة زمنية عالية للتحقيق في نشاط الشبكة ، وفحص التغييرات الخاصة بالمرض ، واختبار الأدوية ذات الإمكانات العلاجية في الصرع. يتم توفير تعليمات الفيديو لأكثر الخطوات تحديا لهذا البروتوكول ، حيث توضح تقنيات تجميعات الطلاء على ألواح MEA ، بالإضافة إلى التسجيلات التمثيلية من هذه الثقافات.
تم إجراء جميع الإجراءات التجريبية الموضحة أدناه وفقا للمبادئ التوجيهية الأخلاقية لمجلس المراجعة المؤسسية لكلية الطب بجامعة ميشيغان ولجنة الإشراف على أبحاث الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات. تم اشتقاق خطوط iPSC المستخدمة في هذا البروتوكول والتجارب التمثيلية من الخلايا الليفية القلفة البشرية التي تم الحصول عليها من مصدر تجاري. يتم سرد تفاصيل خطوط الخلايا والكواشف والمعدات المستخدمة في هذه الدراسة في جدول المواد.
1. اشتقاق عضيات الدماغ الخاصة بالمصير من iPSCs
ملاحظة: يحتوي هذا البروتوكول على معلومات لإعداد 3 آبار في لوحة زراعة الآبار الصغيرة من 5 آبار ملتقية (~ 85٪) من صفيحة مكونة من 6 آبار. يختلف بروتوكول صيانة iPSC وفقا لخطوط الخلايا.
2. وضع العلامات الفيروسية وتوليد التجمعات
ملاحظة: يوصى باستخدام الملصقات الفيروسية7،9للتعرف على هوية كل عضو خاص بالمنطقة في مجموعة وتعيين نشاط الفيزيولوجيا الكهربية من أقطاب كهربائية محددة إلى مناطق التجميع. من الأفضل أن يتم طلاء عضو واحد فقط لكل بئر MEA. يمكن أن ينطبق هذا البروتوكول أيضا على الطلاء العضوي الفردي.
3. وضع التجميعات على ألواح MEA المعالجة مسبقا
ملاحظة: يستغرق الأمر 4 أيام على الأقل لإكمال إجراءات تحضير السطح لألواح MEA قبل تجميعات الطلاء. لتوفير الوقت ، يمكن إجراء دمج العضيات الظهرية والبطنية (أي الخطوة 2.9) والمعالجة المسبقة ل MEA بالتوازي.
4. تسجيل MEA وتحليل البيانات
5. الفحص الدوائي النهائي وإعادة تدوير الألواح
ملاحظة: يمكن إجراء فحوصات العلاج بالعقاقير بعد أن تنضج التجميعات بدرجة كافية ويصل النشاط الكهربائي إلى ذروته. يجب إجراء تسجيل نشاط خط الأساس / ما قبل العلاج ونشاط ما بعد العلاج في نفس اليوم.
تم طلاء التجمعات الظهرية البطنية البشرية على صفيحة MEA مكونة من 6 آبار (ن = 6 لكل تمايز ، 3 تمايز) ، مع احتواء كل بئر على 64 قطبا كهربائيا (الشكل 2 أ). تم توصيل تسعة من أصل عشرة مجموعات مخططة للتسجيل الطولي بإحكام بالأقطاب الكهربائية لأكثر من 50 ي?...
تم استخدام الطرق المستندة إلى MEA للتسجيلات الفيزيولوجية الكهربية لنشاط الشبكة في التجمعات المشتقة من iPSC للنمذجة المختبرية للصرع22،23. هذه المنصة المقترحة التي تدمج الوصلات المشبكية المثيرة والمثبطة لديها القدرة على معالجة آليات فرط ...
ليس لدى أصحاب البلاغ أي إفصاحات ذات صلة.
تم دعم هذه المخطوطة من قبل R01NS127829 NIH / NINDS (LTD). تم إنشاء الشكل 1 باستخدام biorender.com.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
10 cm Corning Non TC-treated culture dishes | Corning | 08-772-32 | For suspension culture on the shaker |
100 mL Beaker | Fisher Scientific | FB100100 | |
100% Ethanol | Fisher Scientific | BP28184-4L | |
2-Mercaptoethanol (β-ME) | Thermo Fisher | 21985023 | Working concentration 100 μM |
48-well cell culture plate | Fisher Scientific | 50-202-140 | |
6-well cell culture plate | Fisher Scientific | 07-200-83 | |
Aggrewell 800 | Fisher Scientific | 501974754 | |
Allegra X-14R Refrigerated Centrifuge | Beckman Coulter | BE-AX14R | |
Allopregnanolone | Cayman | 16930 | Suspended 5mg into DMSO to get 1 mM stock solution. Aliquot and freeze at −80 °C. Dilute at 1:10,000 for use. Working concentration 100 nM. |
Automated cell counter | Thermo Fisher | AMQAX2000 | |
Axion CytoView MEA 6-well plates | Axion Biosystems | M384-tMEA-6B | |
Axion Maestro MEA platform | Axion Biosystems | Maestro | With temp environmental control |
B-27 supplement (regular, with Vitamin A) | Thermo Fisher | 21985023 | |
B-27 supplement (without Vitamin A) | Thermo Fisher | 12587010 | |
Basement membrane matrix- Geltrex | Thermo Fisher | A1569601 | |
Bead bath | Fisher Scientific | 10-876-001 | Isotemp |
Benchtop inverted microscope | Olympus | CKX53 | Kept in laminar flow clean bench |
Bicuculline | Sigma-Aldrich | 14340 | Working concentration 10 μM |
Bleach | CLOROX | 67619-26 | |
Borate buffer 20x | Thermo Fisher | 28341 | Working concentration at 1x |
BrainPhys media | StemCell Technologies | 5790 | |
Cell dissociation reagent (StemPro Accutase) | Thermo Fisher | A1110501 | |
Celltron orbital shaker | HT-Infors | I69222 | |
Detergent/enzyme (Terg-A-Zyme) | Sigma-Aldrich | Z273287 | Working concentration 1% m/v |
DMEM/F12 + HEPES/L-Glutamine | Thermo Fisher | 113300 | |
DMSO | Sigma-Aldrich | 67685 | |
Dorsomorphin | Sigma-Aldrich | P5499 | Dissolve 5mg into DMSO to get 10 mM stock solution. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:2000 for use. (working concentration 5 μM) |
D-PBS w/o calcium or magnesium | Thermo Fisher | 14190144 | |
Glial cell line-derived neurotrophic (GDNF) | Peprotech | 450-10 | Dissolve 100 μg in 1mL of PBS to 100 μg/mL. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:5000 for use. (working concentration 20 ng/mL). |
GlutaMAX supplement | Thermo Fisher | 35050061 | |
Hemacytometer | Election Microscopy Sciences | 63510-20 | |
HEPES | Thermo Fisher | 15630080 | |
Heraguard ECO Clean Bench | Thermo Fisher | 51029692 | |
Humidity controlled cell culture incubator | Thermo Fisher | 370 | set to 37 °C, 5% CO2 |
IWP-2 | Selleckchem | S7085 | Aliquot and freeze at −80 °C. It will precipitate if thawed at room temp. Frozen aliquots should be placed directly into 37 °C before use. |
Knockout serum replacement (KOSR) | Thermo Fisher | 10828010 | |
mTeSRplus (medium + supplements) | StemCell Technologies | 100-0276 | cGMP, stabilized feeder-free medium for human iPSC cells |
N2 supplement | Thermo Fisher | 17502048 | |
Neurobasal A | Thermo Fisher | 21103049 | |
Non-essential amino acids (NEAA) | Thermo Fisher | 11140050 | |
NT3 | Peprotech | 450-03 | Dissolve 100 μg in 1mL of PBS to 100 μg/mL. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:5000 for use. (working concentration 20 ng/mL). |
NuFF Human neonatal foreskin fibroblasts | MTI-GlobalStem | GSC-3002 | |
Parafilm | PARAFILM | P7793 | |
Penicilin/Streptomycin | Thermo Fisher | 15140122 | |
Pipette (P10, P200, P1000) | Eppendorf | EP4926000034 | Autoclaved cut P1000 tips for organoid collection |
Poly (Ethyleneimine) (PEI) | Sigma-Aldrich | P3143 | Dilute stock in sterile borate buffer. Working concentration 0.07%. See details in manuscript. |
Recombinant human epidermal growth factor (EGF) | R&D Systems | 236-EG-200 | Suspended in PBS. Aliquot and freeze at -20 °C. |
Recombinant Human fibroblast growth factor (FGF)-basic | Peprotech | 100-18B | Suspended in PBS. Aliquot and freeze at -20 °C. |
Recombinant human-brain-derived neurotrophic factor (BDNF) | Peprotech | 450-02 | Centrifuge briefly before reconstitution. Dissolve 100 μg in 1 mL of PBS to 100 μg/mL. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:5000 for use. (working concentration 20 ng/mL). |
Retinoic acid (RA) | Sigma-Aldrich | R2625 | Dissolve 100 mg into 3.3 mL of DMSO to get 100 mM stock solution. Aliquot the stock 100 μL/tube and freeze at −80 °C. Take 200 μL of 100 mM stock and dilute 10x (add 1.8 mL of DMSO) to make 10 mM stock. Aliquot 50 μL/tube and store at −80 °C. Dilute at 1:100,000 for use. (working concentration 100 nM). |
ROCK inhibitor Y-27632 | Tocris | 1254 | 1:200 from 10 mM stock |
SAG (smoothened agonist) | Selleckchem | S7779 | Aliquot and freeze at −80 °C. Stock concentration 1mM. Use at 1:10,000 dilution (working concentration 100 nM). |
SB-431542 | Tocris | 1614 | Dissolve 5mg into 1.3 mL of DMSO to get 10 mM stock solution. Aliquot and freeze at −80 °C. Dilute at 1:1000 for use. (working concentration 10 μM) |
Serological pipette filler | Fisher Scientific | 14-387-166 | |
Steriflip vacuum tube top filter | Sigma-Aldrich | SE1M179M6 | |
Sterile cell culture hoods | Baker Company | SG-600 | |
Trypan blue solution (0.4%) | Thermo Fisher | 15250061 | |
Trypsin-EDTA (0.25%) | Thermo Fisher | 25200056 | |
Zoom stereomicroscope | Olympus | SZ61/SZ51 | Kept in laminar flow clean bench |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved